Anzina

Anzina es un género de hongos de clasificación familiar y ordinal inciertaen la subclase Ostropomycetidae . Es un género monotípico , ^{[ 2 ]} que contiene la únicaespecie de liquen crustáceo Anzina carneonivea . El liquen se encuentra principalmente en regiones montañosas de Europa y el oeste de América del Norte, donde crece en la corteza de árboles coníferos y en materia orgánica en descomposición. El nombre del género honra al botánico italiano Martino Anzi , quien describió la especie por primera vez en 1868. El género se estableció más de un siglo después, luego de que el trabajo microscópico indicara que la especie tenía un conjunto distintivo de caracteres .

La especie fue descrita por primera vez en 1868 por el botánico italiano Martino Anzi como Gyalolechia carneonivea . ^{[ 3 ]} En décadas posteriores, fue transferida a varios géneros diferentes. ^{[ 1 ]} En 1877 fue transferida a Secoliga por Gustav Arnold . ^{[ 4 ]} En 1881 fue trasladada nuevamente, a Lecidea por William Nylander . ^{[ 5 ]}

En 1906, el liquenólogo alemán Alexander Zahlbruckner describió Pertusaria tauriscorum . ^{[ 6 ]} Este nombre fue tratado posteriormente como sinónimo de la especie de Anzi. Zahlbruckner desconocía que su nuevo nombre se refería a la misma especie descrita anteriormente por Anzi. ^{[ 5 ]} La conexión entre ambos nombres se reconoció más tarde, y se observaron similitudes morfológicas sustanciales en trabajos posteriores. ^{[ 5 ]} La especie fue posteriormente ubicada en Varicellaria por Christian Erichsen en 1936 como V.  carneonivea . Esta ubicación resultó problemática porque el talo (cuerpo del liquen) está organizado de manera diferente, lo que sugiere que la especie requería su propio género. ^{[ 5 ]}

El género Anzina fue circunscrito (delimitado formalmente) en 1982, en honor a su descubridor original, Martino Anzi. ^{[ 5 ]} Anzina comparte muchas características con Trapelia , especialmente en la estructura y función del asco. Se diferencia por carecer de engrosamiento de la pared en la punta del asco y por tener un anillo amiloide (que se tiñe con yodo) distintivo en la capa interna de la pared. En conjunto, estas diferencias morfológicas y las características de las esporas justificaron el tratamiento de Anzina como un género monotípico independiente . ^{[ 5 ]}

También se describió una segunda variedad , A.  carneonivea var. tetraspora , que se distingue principalmente por ascas que contienen consistentemente cuatro esporas y que se presenta específicamente en Rhododendron ferrugineum en ambientes alpinos. ^{[ 5 ]}

El género Anzina , representado por la única especie Anzina carneonivea , es un liquen crustáceo que forma manchas blanco grisáceas sobre la corteza, madera en descomposición, hojarasca y musgos muertos. La mayor parte del talo se desarrolla dentro del sustrato en lugar de en su superficie (principalmente endoxílico), y puede coalescer formando manchas de hasta varios decímetros cuadrados. Cuando crece sobre cojines de musgo muerto, el liquen queda parcialmente oculto por las hojas persistentes del musgo. Bajo el microscopio, los talos bien desarrollados forman "nidos" discretos de unos 40 micrómetros (μm) de diámetro. El fotobionte (alga simbionte) es la especie de alga verde Asterochloris phycobiontica (orden Chlorococcales ). Ha sido aislada y cultivada a partir de varios sitios alpinos suizos; las poblaciones que habitan en madera y en musgo utilizan el mismo fotobionte. ^{[ 5 ]}

Los propágulos asexuales se producen en picnidios (estructuras diminutas en forma de matraz) de 90–160  μm de diámetro. Los picnidios jóvenes tienen un ostíolo (abertura ) puntiforme , que a menudo se agranda notablemente con la edad; se asientan sobre la superficie del sustrato o ligeramente por encima de ella. Los conidióforos se desarrollan a partir de células conidiógenas intercalares, produciendo conidios en forma de varilla ( esporas asexuales ) (aproximadamente 3,5–4,5 × 0,7 μm) tanto en sustratos de madera como de musgo. La reproducción sexual ocurre en apotecios , que son abundantes (típicamente de 120–300 μm de diámetro) y aparecen individualmente o en grupos. Los discos son de color naranja pálido a naranja con una superficie himenial mayormente lisa , y pueden formarse apotecios "multidisco" cuando se forman varios primordios separados (cuerpos fructíferos en desarrollo) dentro del mismo nido. El excípulo , el tejido del borde que rodea el disco, está poco desarrollado y consta de una fina capa de células muy próximas entre sí. Los ascos son algo cilíndricos. Su punta (ápice) no está engrosada y reacciona débilmente al amiloide (tinción con yodo). La pared interna del asco presenta un anillo amiloide apical cubierto por material amiloide, y el asco se abre mediante una corta hendidura apical; funcionalmente es unitunicado (funciona como un saco de pared simple). La pared del asco tiene un grosor de unos 300 nanómetros y una densidad electrónica intermedia. ^{[ 5 ]}   

Las ascosporas suelen ser bicelulares (raramente tricelulares o tetracelulares), elipsoidales o estrechamente elipsoidales, de paredes delgadas e incoloras en su madurez; bajo el microscopio óptico están rodeadas por un halo irregular de hasta aproximadamente 1  μm de espesor. El tamaño de las esporas varía según el sustrato. En Rhododendron , las esporas suelen tener entre 13 y 17  μm de largo y entre 4 y 6  μm de ancho, con casos excepcionales que varían entre aproximadamente 13  μm y 21  μm de largo y hasta 7  μm de ancho. En restos vegetales, generalmente tienen entre 11 y 16  μm de largo y entre 4 y 7  μm de ancho, con casos excepcionales que varían hasta aproximadamente 11  μm y hasta 18,5  μm de largo. En madera muerta, suelen tener entre 11 y 16  μm de largo y entre 5 y 6  μm de ancho, con máximos ocasionales de alrededor de 15,5  μm de largo y 7,4  μm de ancho. En pruebas puntuales estándar , el talo produce una reacción C+ (roja) distintiva y una reacción K+ (amarilla) débil, lo que concuerda con la presencia de ácido girofórico junto con trazas de ácido lecanórico y una sustancia adicional no identificada. ^{[ 5 ]}

Inicialmente se creía que Anzina carneonivea estaba restringida a Europa, pero se encontraba ampliamente distribuida en las zonas subalpinas de los Alpes y en los bosques boreales de Escandinavia . ^{[ 5 ]} Hallazgos más recientes extienden su distribución a Norteamérica. ^{[ 7 ]} La especie crece sobre corteza, madera en descomposición, restos de plantas y, especialmente, musgos muertos . Su aparente rareza en colecciones antiguas puede reflejar su crecimiento críptico, con gran parte del talo desarrollándose dentro del sustrato (endoxílico) y a menudo apareciendo bajo la cubierta de musgo, más que una verdadera escasez. ^{[ 5 ]}

En Europa, es más frecuente en entornos alpinos y montanos , con poblaciones registradas en Suiza, Austria, el norte de Italia, Finlandia, Noruega y Suecia. En los Alpes se encuentra aproximadamente entre 1400 y 2280  m sobre el nivel del mar, especialmente cerca del límite del bosque subalpino. ^{[ 5 ]} Crece tanto en la corteza de coníferas , particularmente Picea abies (abeto rojo), Pinus mugo (pino de montaña) y Pinus cembra (pino cembro), como en materia orgánica en descomposición en estos ecosistemas montanos . En los bosques boreales escandinavos ocupa sustratos similares y se asocia frecuentemente con microhábitats ricos en musgo , creciendo a menudo sobre especies muertas de Polytrichum y otros briófitos . ^{[ 5 ]}

El primer registro norteamericano proviene de un bosque de coníferas de gran altitud en el sur de la Columbia Británica , donde la especie fue recolectada en la cuenca del río Cheakamus , por encima del extremo superior del monte Whistler , a unos 1900  m de altitud. Este registro amplía el rango conocido y sugiere que A.  carneonivea podría tener una distribución circumboreal más amplia de lo que se creía anteriormente. ^{[ 7 ]} Anzina carneonivea var. tetraspora permanece más restringida, documentada en Rhododendron ferrugineum en sitios alpinos austriacos entre 1820 y 2150  m, aunque futuros estudios podrían revelar poblaciones adicionales. ^{[ 5 ]}