Articulo de referencia

Determinación de las constantes de equilibrio

Las constantes de equilibrio se determinan para cuantificar los equilibrios químicos . Cuando una constante de equilibrio K se expresa como un cociente de concentración, K = [ S...

Las constantes de equilibrio se determinan para cuantificar los equilibrios químicos . Cuando una constante de equilibrio K se expresa como un cociente de concentración,

K=[S]σ[T]τ[A]α[B]β{\displaystyle K={\frac {\mathrm {[S]} ^{\sigma }\mathrm {[T]} ^{\tau }\cdots }{\mathrm {[A]} ^{\alpha }\mathrm {[B]} ^{\beta }\cdots }}}

Se presupone que el cociente de actividad es constante. Para que esta suposición sea válida, las constantes de equilibrio deben determinarse en un medio de fuerza iónica relativamente alta . Cuando esto no sea posible, debe considerarse la posible variación de la actividad.

La expresión de equilibrio anterior depende de las concentraciones [A], [B], etc., de las especies químicas en equilibrio. El valor de la constante de equilibrio se puede determinar si se puede medir cualquiera de estas concentraciones. El procedimiento general consiste en medir la concentración en cuestión para una serie de soluciones con concentraciones analíticas conocidas de los reactivos. Normalmente, se realiza una titulación con uno o más reactivos en el recipiente de titulación y uno o más reactivos en la bureta. Conociendo las concentraciones analíticas iniciales de los reactivos en el recipiente de reacción y en la bureta, se pueden obtener todas las concentraciones analíticas en función del volumen (o masa) de titulante añadido.

Las constantes de equilibrio pueden obtenerse ajustando los datos experimentales a un modelo químico del sistema en equilibrio.

Métodos experimentales

Existen cuatro métodos experimentales principales. Para métodos menos comunes, véase Rossotti y Rossotti. [ 1 ] En todos los casos, el rango puede ampliarse utilizando el método de competencia . Un ejemplo de la aplicación de este método se encuentra en el cianuro de paladio(II) .

Mediciones potenciométricas

La concentración libre [A] o la actividad {A} de una especie A se mide mediante un electrodo selectivo de iones, como el electrodo de vidrio . Si el electrodo se calibra utilizando patrones de actividad, se supone que la ecuación de Nernst se aplica en la forma

mi=mi0+RTnorteFln{A}{\displaystyle E=E^{0}+{\frac {RT}{nF}}\ln \mathrm {\{A\}} }

donde E 0 es el potencial de electrodo estándar . Cuando se utilizan soluciones tampón de pH conocido para la calibración, la lectura del medidor será un pH.

pagH=norteFRT(mi0mi){\displaystyle \mathrm {pH} ={\frac {nF}{RT}}\left(E^{0}-E\right)}

A 298  K, 1  unidad de pH es aproximadamente igual a 59  mV. [ 2 ]

Cuando el electrodo se calibra con soluciones de concentración conocida, por ejemplo mediante una titulación ácido fuerte-base fuerte, se asume una ecuación de Nernst modificada.

mi=mi0+sregistro10[A]{\displaystyle E=E^{0}+s\log _{10}\mathrm {[A]} }

donde s es un factor de pendiente empírico. Se puede preparar una solución de concentración conocida de iones hidrógeno estandarizando un ácido fuerte con bórax . También se puede utilizar ácido clorhídrico de punto de ebullición constante como patrón primario para la concentración de iones hidrógeno.

Alcance y limitaciones

El electrodo más utilizado es el de vidrio, que es selectivo para el ion hidrógeno. Este es adecuado para todos los equilibrios ácido-base . Los valores de log 10 β entre aproximadamente 2 y 11 se pueden medir directamente mediante titulación potenciométrica utilizando un electrodo de vidrio . Este enorme rango de valores de constante de estabilidad (aproximadamente 100 a 10 11 ) es posible gracias a la respuesta logarítmica del electrodo. Las limitaciones surgen porque la ecuación de Nernst deja de ser válida a pH muy bajos o muy altos.

Cuando se utiliza un electrodo de vidrio para obtener las mediciones de las que dependen las constantes de equilibrio calculadas, la precisión de los parámetros calculados se ve limitada por efectos secundarios como la variación de los potenciales de unión líquida en el electrodo. En la práctica, es prácticamente imposible obtener una precisión para log β mejor que ±0,001.

Mediciones espectrofotométricas

Absorbancia

Se supone que se aplica la ley de Beer-Lambert .

A=lεdo{\displaystyle A=l\sum {\varepsilon c}}

donde l es la longitud del camino óptico, ε es la absorbancia molar por unidad de longitud de camino y c es la concentración. Más de una especie puede contribuir a la absorbancia. En principio, la absorbancia se puede medir a una sola longitud de onda, pero en la práctica actual es común registrar espectros completos.

Alcance y limitaciones

Generalmente se cita un límite superior de 4 para log 10 β , que corresponde a la precisión de las mediciones, pero también depende de la intensidad del efecto. Los espectros de las especies contribuyentes deben ser claramente distintos entre sí.

Intensidad de fluorescencia (luminiscencia)

Se supone que la intensidad de la luz dispersada es una función lineal de las concentraciones de las especies.

I=φdo{\displaystyle I=\sum \varphi c}

donde φ es una constante de proporcionalidad.

Alcance y limitaciones

La magnitud de la constante φ puede ser mayor que el valor del coeficiente de extinción molar, ε, para una especie. En tal caso, el límite de detección para dicha especie será menor. A altas concentraciones de soluto, la intensidad de fluorescencia se vuelve no lineal con respecto a la concentración debido a la autoabsorción de la radiación dispersa.

mediciones de desplazamiento químico por RMN

Se supone que el intercambio químico es rápido en la escala de tiempo de la RMN. Un desplazamiento químico individual δ es el promedio ponderado por la fracción molar de los desplazamientos δ de los núcleos en las especies contribuyentes.

δ¯=incógnitaiδiincógnitai{\displaystyle {\bar {\delta }}={\frac {\sum x_{i}\delta _{i}}{\sum x_{i}}}}

Ejemplo: el pKa del grupo hidroxilo en el ácido cítrico se ha determinado a partir de datos de desplazamiento químico de 13C , obteniéndose un valor de 14,4. Ni la potenciometría ni la espectroscopia ultravioleta-visible pudieron utilizarse para esta determinación. [ 3 ]

Alcance y limitaciones

La precisión limitada de las mediciones de desplazamiento químico también impone un límite superior de aproximadamente 4 en log 10 β . Limitado a sistemas diamagnéticos. La RMN de 1H  no se puede utilizar con soluciones de compuestos en 1 H 2 O.

mediciones calorimétricas

La medición simultánea de K y ΔH para aductos 1:1 se realiza habitualmente mediante calorimetría de titulación isotérmica . La extensión a sistemas más complejos está limitada por la disponibilidad de software adecuado.

Alcance y limitaciones

Actualmente no se dispone de pruebas suficientes.

El método de competición

El método de competencia puede utilizarse cuando el valor de una constante de estabilidad es demasiado elevado para ser determinado mediante un método directo. Fue empleado por primera vez por Schwarzenbach para determinar las constantes de estabilidad de complejos de EDTA con iones metálicos.

Para simplificar, consideremos la determinación de la constante de estabilidad.KAB{\displaystyle K_{AB}}de un complejo binario, AB , de un reactivo A con otro reactivo B.

KAB=[AB][A][B]{\displaystyle K_{AB}={\frac {[AB]}{[A][B]}}}

donde [X] representa la concentración, en equilibrio, de una especie X en una solución de composición dada.

Se elige un ligando C que forma un complejo más débil con A. La constante de estabilidad, K AC , es lo suficientemente pequeña como para ser determinada por un método directo. Por ejemplo, en el caso de los complejos de EDTA, A es un ion metálico y C puede ser una poliamina como la dietilentriamina .

KAdo=[Ado][A][do]{\displaystyle K_{AC}={\frac {[AC]}{[A][C]}}}

La constante de estabilidad, K, para la reacción de competencia

Ado+BAB+do{\displaystyle AC+B\leftrightharpoons AB+C}

puede expresarse como

K=[AB][do][Ado][B]{\displaystyle K={\frac {[AB][C]}{[AC][B]}}}

Resulta que

KAB=K×KAdo{\displaystyle K_{AB}=K\times K_{AC}}

donde K es la constante de estabilidad para la reacción de competencia. Por lo tanto, el valor de la constante de estabilidadKAB{\displaystyle K_{AB}}pueden derivarse de los valores de K determinados experimentalmente yKAdo{\displaystyle K_{AC}}.

Métodos computacionales

Se supone que los datos experimentales recopilados comprenden un conjunto de puntos de datos. En cada punto de datos i, se conocen las concentraciones analíticas de los reactivos, TA ( i), TB(i), etc., junto con una magnitud medida, yi , que depende de una o más de estas concentraciones analíticas . Un procedimiento computacional general tiene cuatro componentes principales:

  1. Definición de un modelo químico de los equilibrios
  2. Cálculo de las concentraciones de todas las especies químicas en cada solución.
  3. Refinamiento de las constantes de equilibrio
  4. Selección de modelos

El valor de la constante de equilibrio para la formación de un complejo 1:1, como una especie huésped-anfitrión, se puede calcular con una aplicación de hoja de cálculo dedicada, Bindfit: [ 4 ] En este caso, el paso 2 se puede realizar con un procedimiento no iterativo y se puede utilizar la rutina preprogramada Solver para el paso 3.

El modelo químico

El modelo químico consta de un conjunto de especies químicas presentes en la disolución, tanto los reactivos añadidos a la mezcla de reacción como las especies complejas formadas a partir de ellos. Denominando los reactivos con las letras A, B, etc., cada especie compleja se especifica mediante los coeficientes estequiométricos que relacionan la combinación particular de reactivos que la forman.

pagA+qBApagBq{\displaystyle {\ce {{{\mathit {p}}A}+{\mathit {q}}B\cdots <=>A_{\mathit {p}}B_{\mathit {q}}\cdots }}}:βpagq=[ApagBq][A]pag[B]q{\displaystyle \beta _{pq\cdots }={\frac {[{\ce {A}}_{p}{\ce {B}}_{q}\cdots ]}{[{\ce {A}}]^{p}[{\ce {B}}]^{q}\cdots }}}

Al utilizar programas informáticos de propósito general, es habitual emplear constantes de asociación acumulativas , como se muestra arriba. Las cargas eléctricas no se muestran en expresiones generales como esta y, a menudo, se omiten en expresiones específicas para simplificar la notación. De hecho, las cargas eléctricas no influyen en los procesos de equilibrio, salvo por el requisito de neutralidad eléctrica global en todos los sistemas.

En las soluciones acuosas, las concentraciones de protones (iones hidronio) e iones hidróxido están limitadas por la autodisociación del agua.

H2OH++OH{\displaystyle {\ce {H2O <=> H+ + OH-}}}:KW=[H+][OH][H2O]{\displaystyle K_{\mathrm {W} }^{'}={\frac {[H^{+}][OH^{-}]}{[H_{2}O]}}}

En soluciones diluidas, se supone que la concentración de agua es constante, por lo que la expresión de equilibrio se escribe en forma del producto iónico del agua.

KW=[H+][OH]{\displaystyle K_{\mathrm {W} }={\ce {[H+]}}[{\ce {OH-}}]\,}

Cuando tanto H + como OH deben considerarse como reactivos, uno de ellos se elimina del modelo especificando que su concentración se derive de la concentración del otro. Por lo general, la concentración del ion hidróxido viene dada por

[OH]=KW[H+]{\displaystyle [{\ce {OH-}}]={\frac {K_{{\ce {W}}}}{[{\ce {H+}}]}}\,}

En este caso, la constante de equilibrio para la formación de hidróxido tiene coeficientes estequiométricos de -1 con respecto al protón y cero con respecto a los demás reactivos. Esto tiene implicaciones importantes para todos los equilibrios de protonación en solución acuosa y, en particular, para las constantes de hidrólisis .

Es bastante común omitir del modelo aquellas especies cuyas concentraciones se consideran insignificantes. Por ejemplo, se suele asumir que no existe interacción entre los reactivos y/o complejos y el electrolito utilizado para mantener una fuerza iónica constante o el tampón utilizado para mantener un pH constante. Estas suposiciones pueden o no estar justificadas. Asimismo, se asume implícitamente que no hay otras especies complejas presentes. Cuando se ignoran erróneamente los complejos, se introduce un error sistemático en los cálculos.

Los valores de la constante de equilibrio se suelen estimar inicialmente tomando como referencia fuentes de datos .

Cálculos de especiación

Un cálculo de especiación consiste en calcular las concentraciones de todas las especies en un sistema en equilibrio, conociendo las concentraciones analíticas, T A , T B , etc., de los reactivos A , B , etc. Esto implica resolver un conjunto de ecuaciones no lineales de balance de masa.

TA=[A]+1,nortekpagβpagq[A]pag[B]qTB=[B]+1,nortekqβpagq[A]pag[B]qmitdo.{\displaystyle {\begin{aligned}{\ce {T_{A}}}&=[{\ce {A}}]+\sum _{1,nk}p\beta _{pq\cdots }[{\ce {A}}]^{p}[{\ce {B}}]^{q}\cdots \\{\ce {T_{B}}}&=[{\ce {B}}]+\sum _{1,nk}q\beta _{pq\cdots }[{\ce {A}}]^{p}[{\ce {B}}]^{q}\cdots \\etc.\end{aligned}}}

para las concentraciones libres [A], [B], etc. Cuando se mide el pH (o la fem equivalente, E), la concentración libre de iones de hidrógeno, [H], se obtiene a partir del valor medido como

[H]=10pagH{\displaystyle [\mathrm {H} ]=10^{-\mathrm {pH} }}o[H]=minorteFRT(mimi0){\displaystyle [\mathrm {H} ]=e^{\mathrm {{-{\frac {nF}{RT}}}(EE^{0})} }}

y solo se calculan las concentraciones libres de los demás reactivos. Las concentraciones de los complejos se derivan de las concentraciones libres mediante el modelo químico.

Algunos autores [ 5 ] [ 6 ] incluyen los términos de reactivos libres en las sumas declarando constantes β de identidad (unidad) para las cuales los coeficientes estequiométricos son 1 para el reactivo en cuestión y cero para todos los demás reactivos. Por ejemplo, con 2 reactivos, las ecuaciones de balance de masa adoptan la forma más simple.

TA=0,nortekpagβpagq[A]pag[B]qTB=0,nortekqβpagq[A]pag[B]q{\displaystyle {\begin{aligned}T_{\ce {A}}&=\sum _{0,nk}p\beta _{pq}[{\ce {A}}]^{p}[{\ce {B}}]^{q}\\[4pt]T_{\ce {B}}&=\sum _{0,nk}q\beta _{pq}[{\ce {A}}]^{p}[{\ce {B}}]^{q}\\\end{aligned}}}
β10=β01=1{\displaystyle \beta _{10}=\beta _{01}=1}

De esta forma, todas las especies químicas, incluidos los reactivos libres , se tratan de la misma manera, ya que se han formado a partir de la combinación de reactivos que se especifica mediante los coeficientes estequiométricos.

En un sistema de titulación, las concentraciones analíticas de los reactivos en cada punto de titulación se obtienen a partir de las condiciones iniciales, las concentraciones y los volúmenes de la bureta. La concentración analítica (total) de un reactivo R en el i -ésimo punto de titulación viene dada por

TR=R0+vi[R]v0+vi{\displaystyle T_{{\ce {R}}}={\frac {{\ce {R}}_{0}+v_{i}{\ce {[R]}}}{v_{0}+v_{i}}}}

donde R₀ es la cantidad inicial de R en el recipiente de titulación, v₀ es el volumen inicial, [R] es la concentración de R en la bureta y vᵢ es el volumen añadido. La concentración en la bureta de un reactivo que no está presente en ella se considera cero.

En general, resolver estas ecuaciones no lineales representa un desafío formidable debido al amplio rango de variación de las concentraciones libres. Inicialmente, se deben estimar los valores de las concentraciones libres. Posteriormente, estos valores se refinan, generalmente mediante iteraciones de Newton-Raphson . Se pueden refinar los logaritmos de las concentraciones libres en lugar de las concentraciones libres mismas. El refinamiento de los logaritmos de las concentraciones libres tiene la ventaja adicional de imponer automáticamente una restricción de no negatividad a las concentraciones libres. Una vez calculadas las concentraciones de los reactivos libres, se derivan las concentraciones de los complejos y las constantes de equilibrio.

Cabe señalar que las concentraciones de reactivos libres pueden considerarse parámetros implícitos en el proceso de ajuste de la constante de equilibrio. En este contexto, los valores de las concentraciones libres se ven limitados al imponer que se apliquen las condiciones de balance de masa en todas las etapas del proceso.

Refinamiento de la constante de equilibrio

El objetivo del proceso de refinamiento es encontrar valores de constante de equilibrio que proporcionen el mejor ajuste a los datos experimentales. Esto generalmente se logra minimizando una función objetivo , U , mediante el método de mínimos cuadrados no lineales . Primero, los residuos se definen como

ri=yiobservaciónyicálculo{\displaystyle r_{i}=y_{i}^{\text{obs}}-y_{i}^{\text{calc}}}

Entonces, la función objetivo más general viene dada por

U=ijriWijrj{\displaystyle U=\sum _{i}\sum _{j}r_{i}W_{ij}r_{j}\,}

La matriz de ponderaciones, W , debería ser, idealmente, la inversa de la matriz de varianza-covarianza de las observaciones. Es raro que esto se conozca. Sin embargo, cuando se conoce, el valor esperado de U es uno, lo que significa que los datos se ajustan dentro del error experimental . La mayoría de las veces solo se conocen los elementos diagonales, en cuyo caso la función objetivo se simplifica a

U=iWiiri2{\displaystyle U=\sum _{i}W_{ii}r_{i}^{2}}

con W ij = 0 cuando ji . A menudo se utilizan pesos unitarios, W ii = 1 , pero, en ese caso, el valor esperado de U es la raíz cuadrática media de los errores experimentales.

La minimización se puede realizar utilizando el método de Gauss-Newton . En primer lugar, la función objetivo se linealiza aproximándola como una expansión en serie de Taylor de primer orden alrededor de un conjunto de parámetros iniciales, p .

U=U0+iUpagiδpagi{\displaystyle U=U^{0}+\sum _{i}{\frac {\partial U}{\partial p_{i}}}\delta p_{i}}

Los incrementos δ p i se suman a los parámetros iniciales correspondientes de tal manera que U sea menor que U 0 . En el mínimo las derivadas U / p i , que están simplemente relacionadas con los elementos de la matriz jacobiana , J

Jjk=yjdoaldopagk{\displaystyle J_{jk}={\frac {\partial y_{j}^{\mathrm {calc} }}{\partial p_{k}}}}

donde p k es el k -ésimo parámetro del refinamiento, son iguales a cero. Una o más constantes de equilibrio pueden ser parámetros del refinamiento. Sin embargo, las cantidades medidas (ver arriba) representadas por y no se expresan en términos de las constantes de equilibrio, sino en términos de las concentraciones de las especies, que son funciones implícitas de estos parámetros. Por lo tanto, los elementos jacobianos deben obtenerse mediante diferenciación implícita .

Los incrementos de los parámetros δ p se calculan resolviendo las ecuaciones normales , derivadas de las condiciones de que U / p = 0 en el mínimo.

(JTWJ)δpag=JTWr{\displaystyle {\left(J^{\mathrm {T} }WJ\right)\delta p=J^{\mathrm {T} }Wr}}

Los incrementos δ p se suman iterativamente a los parámetros.

pagnorte+1=pagnorte+δpag{\displaystyle \mathbf {p} ^{n+1}=\mathbf {p} ^{n}+\delta \mathbf {p} }

donde n es el número de iteración. Las concentraciones de las especies y los valores de y calc se recalculan en cada punto de datos. Las iteraciones continúan hasta que no se logra una reducción significativa de U , es decir, hasta que se cumple un criterio de convergencia. Sin embargo, si los parámetros actualizados no resultan en una disminución de la función objetivo, es decir, si se produce una divergencia, se debe modificar el cálculo del incremento. La modificación más simple consiste en utilizar una fracción, f , del incremento calculado, lo que se conoce como recorte por desplazamiento.

pagnorte+1=pagnorte+Fδpag{\displaystyle \mathbf {p} ^{n+1}=\mathbf {p} ^{n}+f\mathbf {\delta p} }

En este caso, la dirección del vector de desplazamiento, δ p , no cambia. Por otro lado, con el algoritmo de Levenberg-Marquardt más potente, el vector de desplazamiento se rota hacia la dirección de descenso más pronunciado , modificando las ecuaciones normales,

(JTWJ+λI)δpag=JTWr{\displaystyle \mathbf {\left(J^{\mathrm {T} }WJ+\lambda I\right)\delta p=J^{\mathrm {T} }Wr} }

donde λ es el parámetro de Marquardt e I es una matriz identidad. Se han propuesto otros métodos para manejar la divergencia. [ 6 ]

Surge un problema particular con los datos de RMN y espectrofotometría. Para estos últimos, la magnitud observada es la absorbancia, A , y la ley de Beer-Lambert se puede escribir como

Aλ=l(εpagq..)λdopagq..{\displaystyle A_{\lambda }=l\sum (\varepsilon _{pq..})_{\lambda }c_{pq..}}

Se puede observar que, suponiendo que se conocen las concentraciones, c, que la absorbancia, A , a una longitud de onda dada,λ{\displaystyle \lambda }y longitud del caminol{\displaystyle l}, es una función lineal de las absortividades molares, ε . Con una  longitud de trayectoria de 1 cm, en notación matricial

A=εdo{\displaystyle \mathbf {A} ={\boldsymbol {\varepsilon }}\mathbf {C} \,}

Existen dos enfoques para el cálculo de las absortividades molares desconocidas.

(1) Los valores ε se consideran parámetros de la minimización y el jacobiano se construye sobre esa base. Sin embargo, los valores ε mismos se calculan en cada paso del refinamiento mediante mínimos cuadrados lineales:
ε=(doTdo)1doTA{\displaystyle {\boldsymbol {\varepsilon }}=\mathbf {\left(C^{\mathrm {T} }C\right)^{-1}C^{\mathrm {T} }A} }
utilizando los valores refinados de las constantes de equilibrio para obtener la especiación. La matriz
(doTdo)1doT{\displaystyle \mathbf {\left(C^{T}C\right)^{-1}C^{T}} }
es un ejemplo de pseudoinversa .
Golub y Pereyra [ 7 ] mostraron cómo se puede diferenciar la pseudoinversa de manera que los incrementos de parámetros tanto para las absortividades molares como para las constantes de equilibrio se puedan calcular resolviendo las ecuaciones normales.
(2) La ley Beer-Lambert está escrita como
ελ=Aλ1do{\displaystyle \mathbf {\boldsymbol {\varepsilon }} _{\lambda }=\mathbf {A} _{\lambda }^{-1}\mathbf {C} \,}
Las absorbancias molares desconocidas de todas las especies "coloreadas" se obtienen mediante el método no iterativo de mínimos cuadrados lineales, una longitud de onda a la vez. Los cálculos se realizan una vez por cada ciclo de refinamiento, utilizando los valores de la constante de estabilidad obtenidos en dicho ciclo para calcular los valores de concentración de las especies en la matriz.do{\displaystyle \mathbf {C} }.

Errores de parámetros y correlación

En la región cercana al mínimo de la función objetivo, U , el sistema se aproxima a un sistema lineal de mínimos cuadrados, para el cual

pag=(JTWJ)1JTWyobs{\displaystyle \mathbf {p=\left(J^{\mathrm {T} }WJ\right)^{-1}J^{\mathrm {T} }Wy^{\mathrm {obs} }} }

Por lo tanto, los valores de los parámetros son combinaciones (aproximadamente) lineales de los valores de los datos observados y los errores en los parámetros, p , se pueden obtener mediante propagación de errores a partir de las observaciones, y obs , utilizando la fórmula lineal. Sea Σ y la matriz de varianza-covarianza para las observaciones y Σ p la de los parámetros . Entonces,

Σpag=(JTWJ)1JTWΣyWTJ(JTWJ)1{\displaystyle \mathbf {\Sigma ^{p}=\left(J^{\mathrm {T} }WJ\right)^{-1}J^{\mathrm {T} }W\Sigma ^{y}W^{\mathrm {T} }J(J^{\mathrm {T} }WJ)^{-1}} }

Cuando W = ( Σ y ) −1 , esto se simplifica a

Σpag=(JTWJ)1{\displaystyle \mathbf {\Sigma ^{p}=\left(J^{\mathrm {T} }WJ\right)^{-1}} }

En la mayoría de los casos, los errores en las observaciones no están correlacionados, por lo que Σ y es diagonal . Si es así, cada peso debe ser el recíproco de la varianza de la observación correspondiente. Por ejemplo, en una titulación potenciométrica , el peso en un punto de titulación, k , puede estar dado por

Wk=1σmi2+(miv)k2σv2{\displaystyle W_{k}={\frac {1}{\sigma _{E}^{2}+\left({\frac {\partial E}{\partial v}}\right)_{k}^{2}\sigma _{v}^{2}}}}

donde σ E es el error en el potencial del electrodo o pH, ( E / v)k es la pendiente de lacurva de titulaciónyσves el error en el volumen añadido.

Cuando se utilizan pesos unitarios ( W = I , p = ( J T J ) −1 J T y ) se sobreentiende que los errores experimentales no están correlacionados y son todos iguales: Σ y = σ 2 I , donde σ 2 se conoce como la varianza de una observación de peso unitario, e I es una matriz identidad . En este caso, σ 2 se aproxima mediante

σ2=Unortednortepag{\displaystyle \sigma ^{2}={\frac {U}{n_{\mathrm {d} }-n_{\mathrm {p} }}}}

donde U es el valor mínimo de la función objetivo y n d y n p son el número de datos y parámetros, respectivamente.

Σpag=Unortednortepag(JTJ)1{\displaystyle \mathbf {\Sigma ^{p}} ={\frac {U}{n_{\mathrm {d} }-n_{\mathrm {p} }}}\left(\mathbf {J} ^{\mathrm {T} }\mathbf {J} \right)^{-1}}

En todos los casos, la varianza del parámetro p i viene dada por Σ p ii y la covarianza entre los parámetros p i y p j por Σ p ij . La desviación estándar es la raíz cuadrada de la varianza. Estas estimaciones de error reflejan únicamente los errores aleatorios en las mediciones. La incertidumbre real en los parámetros es mayor debido a la presencia de errores sistemáticos , que, por definición, no pueden cuantificarse.

Tenga en cuenta que, aunque las observaciones pueden no estar correlacionadas, los parámetros siempre están correlacionados .

Constantes derivadas

Cuando se han refinado las constantes acumulativas, a menudo es útil derivar constantes por pasos a partir de ellas. El procedimiento general es escribir las expresiones que definen todas las constantes involucradas y luego igualar las concentraciones. Por ejemplo, supongamos que se desea derivar el pKa para eliminar un protón de un ácido tribásico, LH 3 , como el ácido cítrico .

L3+H+ LH2: [LH2]=β11[L3][H+]L3+2H+ LH2: [LH2]=β12[L3][H+]2L3+3H+ LH3: [LH3]=β13[L3][H+]3{\displaystyle {\begin{aligned}{\ce {L^3-}}+{\ce {H+ <=>}}\ {\ce {LH^2-}}&:\ [{\ce {LH^2-}}]=\beta _{11}[{\ce {L^3-}}][{\ce {H+}}]\\{\ce {L^3-}}+{\ce {2H+ <=>}}\ {\ce {LH2^-}}&:\ [{\ce {LH2^-}}]=\beta _{12}[{\ce {L^3-}}][{\ce {H+}}]^{2}\\{\ce {L^3-}}+{\ce {3H+ <=>}}\ {\ce {LH3}}&:\ [{\ce {LH3}}]=\beta _{13}[{\ce {L^3-}}][{\ce {H+}}]^{3}\end{aligned}}}

La constante de asociación por etapas para la formación de LH 3 viene dada por

LH2+H+LH3 ; [LH3]=K[LH2][H+]{\displaystyle {\ce {{LH2^{-}}+H+<=>LH3\ ;\quad \ [LH3]}}=K[{\ce {LH2^{-}}}][{\ce {H+}}]}

Sustituya las expresiones para las concentraciones de LH 3 y LH 2 en esta ecuación.

β13[L3][H+]3=Kβ12[L3][H+]2[H+]{\displaystyle \beta _{13}[{\ce {L^3-}}][{\ce {H+}}]^{3}=K\beta _{12}[{\ce {L^3-}}][{\ce {H+}}]^{2}[{\ce {H+}}]}

De dónde

β13=Kβ12;K=β13β12{\displaystyle \beta _{13}=K\beta _{12};K={\frac {\beta _{13}}{\beta _{12}}}\,}

y dado que p K a = −log 10 1 / K su valor viene dado por

pagKa1=registro10β13registro10β12{\displaystyle {\ce {p}}K_{{\ce {a1}}}=\log _{10}\beta _{13}-\log _{10}\beta _{12}\,}
pagKa2=registro10β12registro10β11{\displaystyle {\ce {p}}K_{{\ce {a2}}}=\log _{10}\beta _{12}-\log _{10}\beta _{11}\,}
pagKa3=registro10β11{\displaystyle {\ce {p}}K_{{\ce {a3}}}=\log _{10}\beta _{11}\,}

Nótese la numeración inversa para pK y log β. Al calcular el error en la constante escalonada, debe tenerse en cuenta que las constantes acumulativas están correlacionadas . Por propagación de errores

σK2=σβ122+σβ1322σβ12σβ13ρ12,13{\displaystyle \sigma _{K}^{2}=\sigma _{\beta _{12}}^{2}+\sigma _{\beta _{13}}^{2}-2\sigma _{\beta _{12}}\sigma _{\beta _{13}}\rho _{12,13}\,}

y

σregistro10K=σKK{\displaystyle \sigma _{\log _{10}K}={\frac {\sigma _{K}}{K}}}

Selección de modelos

Una vez completado el refinamiento, se deben revisar los resultados para verificar que el modelo elegido sea aceptable. En general, un modelo es aceptable cuando los datos se ajustan dentro del margen de error experimental, pero no existe un único criterio para realizar esta evaluación. Se deben considerar los siguientes aspectos.

La función objetivo

Cuando los pesos se han derivado correctamente de estimaciones de error experimental, el valor esperado de U / n dn p es 1. [ 8 ] Por lo tanto, es muy útil estimar los errores experimentales y derivar algunos pesos razonables a partir de ellos, ya que esto es un indicador absoluto de la bondad del ajuste.

Cuando se utilizan ponderaciones unitarias, se sobreentiende que todas las observaciones tienen la misma varianza. Se espera que U / n d n p sea igual a esa varianza .

Errores de parámetros

Sería deseable que los errores en las constantes de estabilidad fueran aproximadamente proporcionales al error experimental. Por ejemplo, con datos de titulación de pH, si el pH se mide con dos decimales, los errores de log 10 β no deberían ser mucho mayores que 0,01. En trabajos exploratorios donde se desconoce de antemano la naturaleza de las especies presentes, se pueden probar y comparar varios modelos químicos diferentes. Habrá modelos donde las incertidumbres en la mejor estimación de una constante de equilibrio pueden ser algo o incluso significativamente mayores que σ pH , especialmente con aquellas constantes que rigen la formación de especies relativamente minoritarias, pero la decisión sobre qué tan grande es aceptable sigue siendo subjetiva. El proceso de decisión sobre si incluir o no equilibrios relativamente inciertos en un modelo, y para la comparación de modelos competidores en general, puede hacerse objetivo y ha sido descrito por Hamilton. [ 8 ]

Distribución de residuos

En el mínimo de U el sistema puede aproximarse a uno lineal, los residuos en el caso de pesos unitarios están relacionados con las observaciones por

r=yobsJ(JTT)1JTyobs{\displaystyle \mathbf {r=y^{\mathrm {obs} }-J\left(J^{\mathrm {T} }T\right)^{-1}J^{\mathrm {T} }y^{\mathrm {obs} }} }

La matriz simétrica e idempotente J ( J T T ) −1 J se conoce en la literatura estadística como la matriz sombrero , H . Por lo tanto,

r=(IH)yobs{\displaystyle \mathbf {r=\left(I-H\right)y^{\mathrm {obs} }} }

y

METROr=(IH)METROy(IH){\displaystyle \mathbf {M^{r}=\left(I-H\right)M^{y}\left(I-H\right)} }

donde I es la matriz identidad y M r y M y son las matrices de varianza-covarianza de los residuos y las observaciones, respectivamente. Esto demuestra que, aunque las observaciones no estén correlacionadas, los residuos siempre lo están.

El diagrama de la derecha muestra el resultado del refinamiento de las constantes de estabilidad de Ni(Gly)⁺, Ni(Gly)₂ y Ni(Gly)⁻³ ( donde GlyH = glicina ) . Los valores observados se muestran con rombos azules y las concentraciones de las especies, como porcentaje del níquel total, se superponen. Los residuos se muestran en el recuadro inferior. Estos residuos no se distribuyen de forma tan aleatoria como cabría esperar. Esto se debe a la variación de los potenciales de unión líquida y otros efectos en las interfaces vidrio/líquido. Dichos efectos son muy lentos en comparación con la velocidad a la que se establece el equilibrio.

limitaciones físicas

En los cálculos se suelen incorporar algunas restricciones físicas. Por ejemplo, todas las concentraciones de reactivos y especies libres deben tener valores positivos, y las constantes de asociación también deben tener valores positivos.

Con datos espectrofotométricos, los valores calculados de absortividad (o emisividad) molar deberían ser todos positivos. La mayoría de los programas informáticos no imponen esta restricción en los cálculos.

limitaciones químicas

Al determinar las constantes de estabilidad de los complejos metal-ligando, es práctica común fijar las constantes de protonación del ligando a valores determinados a partir de datos obtenidos de soluciones libres de metal. Las constantes de hidrólisis de los iones metálicos se fijan generalmente a valores obtenidos a partir de soluciones libres de ligando. Al determinar las constantes de estabilidad para los complejos ternarios M p A q B r, es práctica común fijar los valores de los complejos binarios correspondientes M p′ A q′ y M p′′ B q′′ a valores determinados en experimentos separados. El uso de tales restricciones reduce el número de parámetros a determinar, pero puede resultar en una subestimación de los errores calculados en los valores refinados de las constantes de estabilidad.

Otros modelos

Si el modelo no es aceptable, se deben examinar otros modelos para encontrar el que mejor se ajuste a los datos experimentales, dentro del margen de error experimental. La principal dificultad reside en las denominadas especies minoritarias. Se trata de especies cuya concentración es tan baja que su efecto sobre la magnitud medida se sitúa en o por debajo del margen de error de la medición experimental. Puede resultar imposible determinar la constante de una especie minoritaria si no existe forma de aumentar su concentración.

Principios termodinámicos de las interacciones huésped-anfitrión

La termodinámica de la interacción huésped-anfitrión puede evaluarse mediante espectroscopia de RMN, espectroscopia UV/visible y calorimetría de titulación isotérmica. [ 9 ] El análisis cuantitativo de los valores de la constante de unión proporciona información termodinámica útil.

Una constante de asociación ,Ka{\displaystyle K_{a}^{\ominus }}puede definirse mediante la expresión

Ka={HGRAMO}{H}{GRAMO}=[HGRAMO][H][GRAMO]×Γ{\displaystyle K_{a}^{\ominus }={\frac {\{HG\}}{\{H\}\{G\}}}={\frac {[HG]}{[H][G]}}\times \Gamma }

donde {HG} es la actividad termodinámica del complejo en equilibrio. {H} representa la actividad del anfitrión y {G} la actividad del huésped. Las cantidades[HGRAMO]{\displaystyle [HG]},[H]{\displaystyle [H]}y[GRAMO]{\displaystyle [G]}son las concentraciones correspondientes yΓ{\displaystyle \Gamma }es un cociente de coeficientes de actividad .

En la práctica, la constante de equilibrio se suele definir en términos de concentraciones.

Ka=[HGRAMO][H][GRAMO]{\displaystyle K_{a}={\frac {[HG]}{[H][G]}}}

Cuando se utiliza esta definición, se da por sentado que el cociente de coeficientes de actividad tiene un valor numérico de uno. Entonces parece que la constante de equilibrio,KA{\displaystyle K_{A}}tiene la dimensión 1/concentración, pero eso no puede ser cierto ya que el cambio de energía libre de Gibbs estándar,ΔGRAMO{\displaystyle \Delta G^{\ominus }}es proporcional al logaritmo deKA{\displaystyle K_{A}}.

ΔGRAMO=RTlnKA{\displaystyle \Delta G^{\ominus }=-RT\ln {K_{A}^{\ominus }}}

Esta aparente paradoja se resuelve cuando la dimensión deΓ{\displaystyle \Gamma }se define como el recíproco de la dimensión del cociente de concentraciones. La implicación es queΓ{\displaystyle \Gamma }Se considera que tiene un valor constante en todas las condiciones experimentales relevantes. Sin embargo, es práctica común asignar una dimensión, como milimoles por litro o micromoles por litro, a un valor de K que se ha determinado experimentalmente.

Un grandeKa{\displaystyle K_{a}}Este valor indica que las moléculas anfitrionas y huésped interactúan fuertemente para formar el complejo anfitrión-huésped.

Determinación de los valores de la constante de unión y la constante cinética

Complejación simple huésped-anfitrión

Cuando las moléculas anfitrionas y huésped se combinan para formar un único complejo, el equilibrio se representa como

H+GRAMOHGRAMO{\displaystyle H+G\leftrightharpoons HG}

y la constante de equilibrio, K, se define como

K=[HGRAMO][H][GRAMO]{\displaystyle K={\frac {[HG]}{[H][G]}}}

donde [X] denota la concentración de una especie química X (se supone que todos los coeficientes de actividad tienen un valor numérico de 1). Las ecuaciones de balance de masa, en cualquier punto de datos,

TH=[H]+K[H][GRAMO]{\displaystyle T_{H}=[H]+K[H][G]}
TGRAMO=[GRAMO]+K[H][GRAMO]{\displaystyle T_{G}=[G]+K[H][G]}

dóndeTGRAMO{\displaystyle T_{G}}yTH{\displaystyle T_{H}}Las concentraciones totales, del anfitrión y del huésped, se pueden reducir a una sola ecuación cuadrática en, digamos, [G] y, por lo tanto, se pueden resolver analíticamente para cualquier valor dado de K. Luego se pueden derivar las concentraciones [H] y [HG].

[H]=THTGRAMO+[GRAMO]{\displaystyle [H]=T_{H}-T_{G}+[G]}
[HGRAMO]=K[H][GRAMO]{\displaystyle [HG]=K[H][G]}

El siguiente paso en el cálculo es calcular el valor,incógnitaidoaldo{\displaystyle X_{i}^{calc}}, de una cantidad correspondiente a la cantidad observadaincógnitaiobs{\displaystyle X_{i}^{obs}}Entonces, una suma de cuadrados, U, sobre todos los puntos de datos, np, se puede definir como

U=i=1,nortepag(incógnitaiobsincógnitaidoaldo)2{\displaystyle U=\sum _{i=1,np}(X_{i}^{obs}-X_{i}^{calc})^{2}}

Esto se puede minimizar con respecto al valor de la constante de estabilidad, K, y un parámetro como el desplazamiento químico de la especie HG (datos de RMN) o su absorbancia molar (datos UV/Vis). La minimización se puede realizar en una hoja de cálculo como Excel utilizando la herramienta Solver integrada.

Este procedimiento es aplicable a aductos 1:1.

Reacción de complejación general

Para cada equilibrio que involucra un anfitrión, H, y un huésped G

pagH+qGRAMOHpagGRAMOq{\displaystyle pH+qG\leftrightharpoons H_{p}G_{q}}

la constante de equilibrio,βpagq{\displaystyle \beta _{pq}}, se define como

βpagq=[HpagGRAMOq][H]pag[GRAMO]q{\displaystyle \beta _{pq}={\frac {[H_{p}G_{q}]}{[H]^{p}[G]^{q}}}}

Los valores de las concentraciones libres,[H]{\displaystyle [H]}y[GRAMO]{\displaystyle [G]}se obtienen resolviendo las ecuaciones de balance de masa con valores conocidos o estimados para las constantes de estabilidad.

TH=[H]+pagβpagq[H]pag[GRAMO]q{\displaystyle T_{H}=[H]+\sum p\beta _{pq}[H]^{p}[G]^{q}}
TGRAMO=[GRAMO]+qβpagq[H]pag[GRAMO]q{\displaystyle T_{G}=[G]+\sum q\beta _{pq}[H]^{p}[G]^{q}}

Luego, las concentraciones de cada especie compleja también se pueden calcular como[HpagGRAMOq]=βpagq[H]pag[GRAMO]q{\displaystyle [H_{p}G_{q}]=\beta _{pq}[H]^{p}[G]^{q}}La relación entre la concentración de una especie y la magnitud medida es específica de la técnica de medición, como se indica en cada sección anterior. Utilizando esta relación, el conjunto de parámetros, los valores de la constante de estabilidad y los valores de propiedades como la absortividad molar o los desplazamientos químicos específicos, pueden refinarse mediante un proceso de refinamiento de mínimos cuadrados no lineales . Para una explicación más detallada de la teoría, consulte Determinación de constantes de equilibrio. Algunos programas informáticos específicos se enumeran en Implementaciones .

Cooperación

En la cooperatividad, la unión inicial del ligando afecta la afinidad del huésped por ligandos subsiguientes. En la cooperatividad positiva, el primer evento de unión aumenta la afinidad del huésped por otro ligando. Ejemplos de cooperatividad positiva y negativa son la hemoglobina y el receptor de aspartato, respectivamente. [ 10 ]

Enlace general huésped-invitado. (1.) Enlace huésped A (2.) Enlace huésped B. (3.) Cooperatividad positiva Enlace huésped A-B. (4.) Cooperatividad negativa Enlace huésped A-B

Se han estudiado las propiedades termodinámicas de la cooperatividad con el fin de definir parámetros matemáticos que distingan la cooperatividad positiva de la negativa. La ecuación tradicional de la energía libre de Gibbs establece:ΔGRAMO=ΔHTΔS {\displaystyle \Delta G=\Delta H-T\Delta S\ }Sin embargo, para cuantificar la cooperatividad en un sistema huésped-anfitrión, es necesario considerar la energía de enlace. El esquema de la derecha muestra el enlace de A, el enlace de B, el enlace cooperativo positivo de A-B y, por último, el enlace cooperativo negativo de A-B. Por lo tanto, una forma alternativa de la ecuación de la energía libre de Gibbs sería

ΔGRAMOS=ΔGRAMOA+ΔGRAMOBΔGRAMOAB{\displaystyle \Delta G_{S}^{\circ }=\Delta G_{A}^{\circ }+\Delta G_{B}^{\circ }-\Delta G_{AB}^{\circ }}
ΔHS=ΔHA+ΔHBΔHAB{\displaystyle \Delta H_{S}^{\circ }=\Delta H_{A}^{\circ }+\Delta H_{B}^{\circ }-\Delta H_{AB}^{\circ }}
 TΔGRAMOS=TΔHA+TΔHBTΔSAB{\displaystyle \ T\Delta G_{S}^{\circ }=T\Delta H_{A}^{\circ }+T\Delta H_{B}^{\circ }-T\Delta S_{AB}^{\circ }}

dónde:

ΔGRAMOA{\displaystyle \Delta G_{A}^{\circ }}= energía libre de enlace A
ΔGRAMOB{\displaystyle \Delta G_{B}^{\circ }}= energía libre de enlace B
ΔGRAMOS{\displaystyle \Delta G_{S}^{\circ }}= energía libre de enlace para A y B unidos
ΔGRAMOAB{\displaystyle \Delta G_{AB}^{\circ }}= suma de las energías libres de enlace

Se considera que siΔGRAMOS{\displaystyle \Delta G_{S}^{\circ }}más que la suma deΔGRAMOA{\displaystyle \Delta G_{A}^{\circ }}yΔGRAMOB{\displaystyle \Delta G_{B}^{\circ }}, es positivamente cooperativo. SiΔGRAMOS{\displaystyle \Delta G_{S}^{\circ }}es menor, entonces es cooperativa negativa. [ 11 ] La química huésped-anfitrión no se limita a las interacciones receptor-ligando. También se demuestra en sistemas de pares iónicos. Dichas interacciones se estudian en un medio acuoso utilizando anfitriones organometálicos sintéticos y moléculas huésped orgánicas. Por ejemplo, un receptor policatiónico que contiene cobre (el anfitrión) se coordina con moléculas como tetracarboxilatos, tricarbalato, aspartato y acetato (los huéspedes). Este estudio ilustra que la entropía , en lugar de la entalpía, determina la energía de enlace del sistema que conduce a la cooperatividad negativa. El gran cambio en la entropía se origina por el desplazamiento de las moléculas de disolvente que rodean al ligando y al receptor. Cuando múltiples acetatos se unen al receptor, libera más moléculas de agua al entorno que un tetracarboxilato. Esto condujo a una disminución en la energía libre, lo que implica que el sistema está cooperando negativamente. [ 12 ] En un estudio similar, utilizando guanidinio y Cu(II) y huéspedes policarboxilato, se demuestra que la cooperatividad positiva está determinada en gran medida por la entalpía. [ 13 ] Además de los estudios termodinámicos, la química huésped-anfitrión también tiene aplicaciones biológicas.

Implementaciones

Algunos sistemas sencillos se prestan a cálculos con hojas de cálculo. [ 4 ] [ 14 ]

Se han publicado numerosos programas informáticos de propósito general para el cálculo de la constante de equilibrio. Véase [ 15 ] para consultar la bibliografía. Los programas más utilizados son:

Referencias

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  3. Silva, Andre MN; Kong, Xiaole; ​​Hider, Robert C. (2009). "Determinación del valor p K a del grupo hidroxilo en los α-hidroxicarboxilatos citrato, malato y lactato mediante RMN de 13 C: implicaciones para la coordinación de metales en sistemas biológicos". Biometals . 22 (5): 771– 778. doi : 10.1007/s10534-009-9224-5 . PMID 19288211 . S2CID 11615864 .  
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