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secuenciación del exoma

Flujo de trabajo de la secuenciación del exoma: parte 1. La secuenciación del exoma , también conocida como secuenciación del exoma completo ( WES ), es una técnica genómica par...

Flujo de trabajo de la secuenciación del exoma: Parte 1.
Flujo de trabajo de la secuenciación del exoma: parte 1.

La secuenciación del exoma , también conocida como secuenciación del exoma completo ( WES ), es una técnica genómica para secuenciar todas las regiones codificantes de proteínas de los genes en un genoma (conocido como exoma ). [ 1 ] Consta de dos pasos: el primero es seleccionar solo el subconjunto de ADN que codifica proteínas . Estas regiones se conocen como exones ; los humanos tienen alrededor de 180 000 exones , que constituyen aproximadamente el 1 % del genoma humano , o aproximadamente 30 millones de pares de bases . El segundo paso es secuenciar el ADN exónico utilizando cualquier tecnología de secuenciación de ADN de alto rendimiento . [ 2 ]

El objetivo de este enfoque es identificar variantes genéticas que alteran las secuencias de proteínas, y hacerlo a un costo mucho menor que la secuenciación del genoma completo . Dado que estas variantes pueden ser responsables tanto de enfermedades mendelianas como de enfermedades poligénicas comunes , como la enfermedad de Alzheimer , la secuenciación del exoma completo se ha aplicado tanto en la investigación académica como en el diagnóstico clínico.

Flujo de trabajo de la secuenciación del exoma: Parte 2.
Flujo de trabajo de la secuenciación del exoma: parte 2.

Motivación y comparación con otros enfoques

La secuenciación del exoma es especialmente eficaz en el estudio de enfermedades mendelianas raras , porque es una forma eficiente de identificar las variantes genéticas en todos los genes de un individuo. Estas enfermedades suelen estar causadas por variantes genéticas muy raras que solo están presentes en un número reducido de individuos; [ 3 ] por el contrario, técnicas como los microarrays de SNP solo pueden detectar variantes genéticas compartidas que son comunes a muchos individuos en la población general. [ 4 ] Además, debido a que las variantes que causan enfermedades graves tienen muchas más probabilidades (aunque no exclusivamente) de estar en la secuencia codificante de proteínas, [ 5 ] [ 6 ] centrarse en este 1 % cuesta mucho menos que la secuenciación del genoma completo , pero aun así detecta un alto rendimiento de variantes relevantes.

En el pasado, las pruebas genéticas clínicas se elegían en función de la presentación clínica del paciente (es decir, se centraban en un gen o en un número reducido de genes conocidos por estar asociados a un síndrome específico ), o bien analizaban solo ciertos tipos de variación (por ejemplo, la hibridación genómica comparativa ), pero proporcionaban diagnósticos genéticos definitivos en menos de la mitad de los pacientes. [ 7 ] Actualmente, la secuenciación del exoma se utiliza cada vez más para complementar estas otras pruebas: tanto para encontrar mutaciones en genes que ya se sabe que causan enfermedades como para identificar nuevos genes comparando exomas de pacientes con características similares.

Metodología técnica

Paso 1: Estrategias de enriquecimiento de objetivos

Los métodos de enriquecimiento de dianas permiten capturar selectivamente regiones genómicas de interés a partir de una muestra de ADN antes de la secuenciación. Se han desarrollado varias estrategias de enriquecimiento de dianas desde la descripción original del método de selección genómica directa (DGS) en 2005. [ 8 ]

Aunque se han descrito muchas técnicas para la captura dirigida, solo unas pocas se han extendido para capturar exomas completos. [ 9 ] La primera estrategia de enriquecimiento de objetivos que se aplicó a la secuenciación de exomas completos fue el método de captura híbrida basado en matrices en 2007, pero la captura en solución ha ganado popularidad en los últimos años.

Captura basada en matrices

Captura en solución
Captura en solución.

Los microarrays contienen oligonucleótidos monocatenarios con secuencias del genoma humano que cubren la región de interés fijada a la superficie. El ADN genómico se fragmenta para formar fragmentos bicatenarios. Estos fragmentos se reparan en sus extremos para producir extremos romos y se les añaden adaptadores con secuencias de cebado universales. Dichos fragmentos se hibridan con los oligonucleótidos del microarray. Los fragmentos no hibridados se eliminan mediante lavado y se eluyen los fragmentos deseados. Posteriormente, los fragmentos se amplifican mediante PCR . [ 10 ] [ 11 ]

Roche NimbleGen fue la primera en tomar la tecnología DGS original [ 8 ] y adaptarla para la secuenciación de próxima generación. Desarrollaron el Sequence Capture Human Exome 2.1M Array para capturar aproximadamente 180 000 exones codificantes. [ 12 ] Este método ahorra tiempo y es rentable en comparación con los métodos basados ​​en PCR. El Agilent Capture Array y el array de hibridación genómica comparativa son otros métodos que se pueden utilizar para la captura híbrida de secuencias objetivo. Las limitaciones de esta técnica incluyen la necesidad de hardware costoso, así como una cantidad relativamente grande de ADN. [ 13 ]

Captura en solución

Para capturar regiones genómicas de interés mediante captura en solución, se sintetiza un conjunto de oligonucleótidos personalizados (sondas) que se hibridan en solución con una muestra de ADN genómico fragmentado. Las sondas (marcadas con microesferas) se hibridan selectivamente con las regiones genómicas de interés. Posteriormente, las microesferas (que ahora contienen los fragmentos de ADN de interés) se pueden separar y lavar para eliminar el material sobrante. A continuación, se retiran las microesferas y se secuencian los fragmentos genómicos , lo que permite la secuenciación selectiva de regiones genómicas de interés (por ejemplo, exones).

Este método se desarrolló para mejorar el método de enriquecimiento de secuencias objetivo mediante captura por hibridación. En la captura en solución (a diferencia de la captura híbrida), hay un exceso de sondas dirigidas a las regiones de interés sobre la cantidad de plantilla requerida. [ 13 ] El tamaño óptimo de la secuencia objetivo es de aproximadamente 3,5 megabases y proporciona una excelente cobertura de secuencia de las regiones objetivo. El método preferido depende de varios factores, entre ellos: el número de pares de bases en la región de interés, la demanda de lecturas en la secuencia objetivo, el equipo disponible, etc. [ 14 ]

Paso 2: Secuenciación

Existen numerosas plataformas de secuenciación de nueva generación (NGS) posteriores a las metodologías clásicas de secuenciación de Sanger. Otras plataformas incluyen el secuenciador Roche 454 y los sistemas SOLiD de Life Technologies , el Ion Torrent de Life Technologies y el Illumina Genome Analyzer II (ya descatalogado) de Illumina, así como los instrumentos posteriores de las series MiSeq, HiSeq y NovaSeq de Illumina, todos los cuales pueden utilizarse para la secuenciación masiva en paralelo del exoma. Estos sistemas NGS de "lectura corta" son especialmente adecuados para analizar numerosos fragmentos relativamente cortos de secuencia de ADN, como los que se encuentran en los exones humanos.

Comparación con otras tecnologías

Existen diversas tecnologías disponibles para identificar variantes genéticas. Cada tecnología presenta ventajas y desventajas en términos técnicos y financieros. Dos de estas tecnologías son los microarrays y la secuenciación del genoma completo .

Genotipado basado en microarrays

Los microarrays utilizan sondas de hibridación para evaluar la prevalencia de secuencias de ADN conocidas, por lo que no pueden utilizarse para identificar cambios genéticos inesperados. [ 13 ] En cambio, las tecnologías de secuenciación de alto rendimiento utilizadas en la secuenciación del exoma proporcionan directamente las secuencias de nucleótidos del ADN en los miles de loci exónicos analizados. [ 15 ] Por lo tanto, la secuenciación del exoma completo (WES) aborda algunas de las limitaciones actuales de los microarrays de genotipado por hibridación .

Si bien la secuenciación del exoma es más costosa por muestra que las tecnologías basadas en hibridación, su costo ha ido disminuyendo debido a la bajada de costos y al aumento del rendimiento de la secuenciación del genoma completo .

Secuenciación del genoma completo

La secuenciación del exoma solo puede identificar las variantes que se encuentran en la región codificante de los genes que afectan la función de las proteínas. No puede identificar las variantes estructurales y no codificantes asociadas con la enfermedad, que se pueden encontrar utilizando otros métodos como la secuenciación del genoma completo . [ 2 ] Aún queda el 99 % del genoma humano que no se cubre con la secuenciación del exoma, y ​​esta permite secuenciar porciones del genoma en al menos 20 veces más muestras en comparación con la secuenciación del genoma completo. [ 2 ] Para la traslación de variantes raras identificadas a la clínica, el tamaño de la muestra y la capacidad de interpretar los resultados para proporcionar un diagnóstico clínico indican que, con el conocimiento actual en genética, existen informes de uso de la secuenciación del exoma para ayudar al diagnóstico. [ 12 ] El costo de la secuenciación del exoma suele ser menor que el de la secuenciación del genoma completo. [ 16 ]

Análisis de datos

El análisis estadístico de la gran cantidad de datos generados por los métodos de secuenciación representa un desafío. Incluso al secuenciar únicamente los exomas de los individuos, se genera una gran cantidad de datos e información de secuencia que requiere un análisis de datos considerable. Entre los desafíos asociados al análisis de estos datos se incluyen los cambios en los programas utilizados para alinear y ensamblar las lecturas de secuencia. [ 13 ] Además, las distintas tecnologías de secuenciación presentan diferentes tasas de error y generan distintas longitudes de lectura, lo que puede dificultar la comparación de resultados de diferentes plataformas de secuenciación.

Los resultados falsos positivos y falsos negativos están asociados con los enfoques de resecuenciación genómica y son problemas críticos. Se han desarrollado algunas estrategias para mejorar la calidad de los datos del exoma, tales como:

Es posible que los trastornos recesivos raros no tengan polimorfismos de un solo nucleótido (SNP) en bases de datos públicas como dbSNP . Los fenotipos recesivos más comunes tendrían más probabilidades de tener variantes causantes de la enfermedad reportadas en dbSNP. Por ejemplo, la variante más común de fibrosis quística tiene una frecuencia alélica de aproximadamente el 3% en la mayoría de las poblaciones. Excluir dichas variantes podría excluir erróneamente dichos genes de la consideración. Los genes de los trastornos recesivos suelen ser más fáciles de identificar que los de los trastornos dominantes porque es menos probable que los genes tengan más de una variante no sinónima rara. [ 2 ] El sistema que examina las variantes genéticas comunes se basa en dbSNP , que puede no tener información precisa sobre la variación de los alelos. El uso de listas de variación común de un estudio de exoma o de un individuo secuenciado a nivel genómico sería más fiable. Un desafío en este enfoque es que, a medida que aumenta el número de exomas secuenciados, dbSNP también aumentará en el número de variantes poco comunes. Será necesario desarrollar umbrales para definir las variantes comunes que es improbable que estén asociadas con un fenotipo de enfermedad. [ 15 ]

La heterogeneidad genética y la etnicidad de la población también constituyen limitaciones importantes, ya que pueden aumentar el número de falsos positivos y falsos negativos, lo que dificulta la identificación de genes candidatos . Si bien es posible flexibilizar los umbrales en presencia de heterogeneidad y etnicidad, esto también reduce la capacidad de detectar variantes. Un enfoque basado en el genotipado para identificar genes candidatos podría ser una solución para superar estas limitaciones.

A diferencia del análisis de variantes comunes, el análisis de variantes raras en estudios de secuenciación del exoma completo evalúa conjuntos de variantes en lugar de variantes individuales. [ 17 ] [ 18 ] Las anotaciones funcionales predicen el efecto o la función de las variantes raras y ayudan a priorizar las variantes funcionales raras. La incorporación de estas anotaciones puede aumentar eficazmente el poder de la asociación genética del análisis de variantes raras en estudios de secuenciación del genoma completo. [ 19 ] Se han desarrollado algunos métodos y herramientas para realizar análisis de asociación de variantes raras informados funcionalmente mediante la incorporación de anotaciones funcionales para potenciar el análisis en estudios de secuenciación del exoma completo. [ 20 ] [ 21 ]

Implicaciones éticas

Las nuevas tecnologías en genómica han cambiado la forma en que los investigadores abordan tanto la investigación básica como la traslacional. Con enfoques como la secuenciación del exoma , es posible mejorar significativamente los datos generados a partir de genomas individuales, lo que ha planteado una serie de interrogantes sobre cómo gestionar la enorme cantidad de información. ¿Debería permitirse a los individuos que participan en estos estudios acceder a su información de secuenciación? ¿Debería compartirse esta información con las compañías de seguros? Estos datos pueden conducir a hallazgos inesperados y complicar la utilidad clínica y el beneficio para el paciente. Esta área de la genómica sigue siendo un desafío y los investigadores están buscando la manera de abordar estas cuestiones. [ 15 ]

Aplicaciones de la secuenciación del exoma

Mediante la secuenciación del exoma, los estudios de coste fijo pueden secuenciar muestras con una profundidad mucho mayor que la que se podría lograr con la secuenciación del genoma completo. Esta mayor profundidad hace que la secuenciación del exoma sea idónea para diversas aplicaciones que requieren la identificación fiable de variantes.

Mapeo de variantes raras en trastornos complejos

Los estudios de asociación actuales se han centrado en la variación común en todo el genoma, ya que son las más fáciles de identificar con nuestros ensayos actuales. Sin embargo, se ha descubierto que variantes causantes de enfermedades con un gran efecto se encuentran dentro de los exomas en estudios de genes candidatos y, debido a la selección negativa , se encuentran en frecuencias alélicas mucho más bajas y pueden permanecer sin tipificar en los ensayos de genotipado estándar actuales. La secuenciación del genoma completo es un método potencial para analizar variantes nuevas en todo el genoma. Sin embargo, en trastornos complejos (como el autismo ), se cree que un gran número de genes están asociados con el riesgo de enfermedad. [ 1 ] [ 22 ] Esta heterogeneidad del riesgo subyacente significa que se requieren tamaños de muestra muy grandes para el descubrimiento de genes y, por lo tanto, la secuenciación del genoma completo no es particularmente rentable. Este problema del tamaño de la muestra se alivia con el desarrollo de nuevos métodos analíticos avanzados, que mapean eficazmente los genes de la enfermedad a pesar de que las mutaciones genéticas son raras a nivel de variante. [ 22 ] Además, las variantes en las regiones codificantes se han estudiado mucho más extensamente y sus implicaciones funcionales son mucho más fáciles de derivar, lo que hace que las aplicaciones prácticas de las variantes dentro de la región del exoma objetivo sean más accesibles de inmediato.

La secuenciación del exoma para el descubrimiento de variantes genéticas raras sigue siendo un área de investigación muy activa y en constante desarrollo, y existe evidencia creciente de que se observa una carga de riesgo significativa en conjuntos de genes. Se han reportado variantes raras en el gen KRT82 en el trastorno autoinmune alopecia areata mediante secuenciación del exoma . [ 1 ]

Descubrimiento de los trastornos mendelianos

En los trastornos mendelianos de gran efecto, los hallazgos hasta el momento sugieren que una o un número muy reducido de variantes dentro de los genes codificantes subyacen a la enfermedad en su totalidad. Debido a la gravedad de estos trastornos, se presume que las pocas variantes causales son extremadamente raras o novedosas en la población, y pasarían desapercibidas en cualquier ensayo de genotipado estándar . La secuenciación del exoma proporciona una alta cobertura de variantes en las regiones codificantes, lo cual es necesario para separar las variantes verdaderas del ruido. Un modelo exitoso de descubrimiento de genes mendelianos implica el descubrimiento de variantes de novo mediante la secuenciación de tríos, donde se genotipifica a los padres y al probando.

Estudios de caso

Un estudio publicado en septiembre de 2009 analizó un experimento de prueba de concepto para determinar si era posible identificar variantes genéticas causales mediante la secuenciación del exoma. Secuenciaron cuatro individuos con síndrome de Freeman-Sheldon (FSS) (OMIM 193700), un trastorno autosómico dominante poco frecuente causado por una mutación en el gen MYH3 . [ 2 ] También se secuenciaron ocho individuos del proyecto HapMap para eliminar variantes comunes e identificar el gen causal del FSS. Tras la exclusión de las variantes comunes, los autores lograron identificar MYH3 , lo que confirma que la secuenciación del exoma puede utilizarse para identificar variantes causales de trastornos poco frecuentes. [ 2 ] Este fue el primer estudio publicado que utilizó la secuenciación del exoma como método para identificar un gen causal desconocido de un trastorno mendeliano poco frecuente.

Posteriormente, otro grupo informó del diagnóstico clínico exitoso de un paciente de origen turco con sospecha de síndrome de Bartter . [ 12 ] El síndrome de Bartter es una enfermedad renal con pérdida de sal. La secuenciación del exoma reveló una mutación recesiva inesperada y bien conservada en un gen llamado SLC26A3 , que está asociado con diarrea congénita por cloruro (DCL). Este diagnóstico molecular de DCL fue confirmado por el médico remitente. Este ejemplo proporcionó una prueba de concepto del uso de la secuenciación del exoma completo como herramienta clínica en la evaluación de pacientes con enfermedades genéticas no diagnosticadas. Este informe se considera la primera aplicación de la tecnología de secuenciación de próxima generación para el diagnóstico molecular de un paciente.

Se realizó un segundo informe sobre la secuenciación del exoma de individuos con un trastorno mendeliano conocido como síndrome de Miller (MIM#263750), un trastorno raro de herencia autosómica recesiva . Se estudiaron dos hermanos y dos individuos no emparentados con síndrome de Miller. Se analizaron variantes con potencial patogénico, como mutaciones no sinónimas, sitios aceptores y donadores de empalme e inserciones o deleciones de codificación corta. [ 3 ] Dado que el síndrome de Miller es un trastorno raro, se espera que la variante causal no se haya identificado previamente. Se utilizaron estudios previos de secuenciación del exoma de polimorfismos de un solo nucleótido (SNP) comunes en bases de datos públicas de SNP para excluir aún más los genes candidatos. Tras la exclusión de estos genes, los autores encontraron mutaciones en DHODH que se compartían entre los individuos con síndrome de Miller. Cada individuo con síndrome de Miller era heterocigoto compuesto para las mutaciones de DHODH , que se heredaron ya que se encontró que cada progenitor de un individuo afectado era portador. [ 3 ]

Esta fue la primera vez que se demostró que la secuenciación del exoma identificaba un gen novedoso responsable de una enfermedad mendeliana rara. Este hallazgo tan prometedor demuestra que la secuenciación del exoma tiene el potencial de localizar genes causantes de enfermedades complejas, algo que antes no era posible debido a las limitaciones de los métodos tradicionales. La captura dirigida y la secuenciación masiva en paralelo representan una estrategia rentable, reproducible y robusta, con alta sensibilidad y especificidad para detectar variantes que provocan cambios en la codificación de proteínas en genomas humanos individuales.

Diagnóstico clínico

La secuenciación del exoma puede utilizarse para diagnosticar la causa genética de una enfermedad en un paciente. La identificación de la(s) mutación(es) del gen subyacente puede tener importantes implicaciones para los enfoques diagnósticos y terapéuticos, puede guiar la predicción de la historia natural de la enfermedad y permite realizar pruebas a los miembros de la familia en riesgo. [ 2 ] [ 3 ] [ 12 ] [ 23 ] [ 24 ] [ 25 ] Existen muchos factores que hacen que la secuenciación del exoma sea superior al análisis de un solo gen, incluyendo la capacidad de identificar mutaciones en genes que no se analizaron debido a una presentación clínica atípica [ 25 ] o la capacidad de identificar casos clínicos donde mutaciones de diferentes genes contribuyen a los diferentes fenotipos en el mismo paciente. [ 3 ]

Tras diagnosticar una causa genética de una enfermedad, esta información puede orientar la selección del tratamiento adecuado. La primera vez que esta estrategia se aplicó con éxito en la clínica fue en el tratamiento de un lactante con enfermedad inflamatoria intestinal . [ 24 ] [ 26 ] Se habían utilizado previamente varios métodos de diagnóstico convencionales, pero los resultados no pudieron explicar los síntomas del lactante. El análisis de los datos de secuenciación del exoma identificó una mutación en el gen XIAP . El conocimiento de la función de este gen guió el tratamiento del lactante, lo que condujo a un trasplante de médula ósea que curó al niño de la enfermedad. [ 24 ]

Investigadores han utilizado la secuenciación del exoma para identificar la mutación subyacente en un paciente con síndrome de Bartter y diarrea congénita por cloruro . [ 12 ] El grupo de Bilgular también utilizó la secuenciación del exoma e identificó la mutación subyacente en un paciente con malformaciones cerebrales graves, afirmando: "[Estos hallazgos] resaltan el uso de la secuenciación del exoma completo para identificar loci de enfermedades en entornos donde los métodos tradicionales han resultado desafiantes... Nuestros resultados demuestran que esta tecnología será particularmente valiosa para el descubrimiento de genes en aquellas afecciones donde el mapeo se ha visto dificultado por la heterogeneidad del locus y la incertidumbre sobre los límites de la clasificación diagnóstica, lo que apunta a un futuro brillante para su amplia aplicación en medicina". [ 23 ]

Investigadores de la Universidad de Ciudad del Cabo , Sudáfrica, utilizaron la secuenciación del exoma para descubrir la mutación genética del gen CDH2 como la causa subyacente de un trastorno genético conocido como miocardiopatía arritmogénica del ventrículo derecho (ARVC), que aumenta el riesgo de enfermedad cardíaca y paro cardíaco.

Costes comerciales

Varias empresas han ofrecido secuenciación de exoma a consumidores. Knome fue la primera en ofrecer servicios de secuenciación de exoma a consumidores , a un costo de varios miles de dólares. [ 27 ] Posteriormente, 23andMe llevó a cabo un programa piloto de WES que se anunció en septiembre de 2011 y se suspendió en 2012. Los consumidores podían obtener datos de exoma a un costo de $999. La empresa proporcionaba datos brutos y no ofrecía análisis. [ 27 ] [ 28 ] [ 29 ]

En noviembre de 2012, DNADTC, una división de Gene by Gene, comenzó a ofrecer exomas con una cobertura de 80X y un precio introductorio de $695. [ 30 ] Este precio, según el sitio web de DNADTC, es actualmente de $895. En octubre de 2013, BGI anunció una promoción para la secuenciación personal de exoma completo con una cobertura de 50X por $499. [ 31 ] En junio de 2016, Genos logró un precio aún más bajo de $399 con un exoma de consumidor con certificación CLIA de 75X secuenciado a partir de saliva. [ 32 ] [ 33 ] [ 34 ]

Una revisión de 36 estudios realizada en 2018 encontró que el costo de la secuenciación del exoma oscilaba entre 555  USD y 5169  USD, con un rendimiento diagnóstico que variaba entre el 3 % y el 79 % dependiendo de los grupos de pacientes. [ 16 ]

Véase también

Referencias

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