
El FeMoco ( cofactor FeMo ) o clúster M es el cofactor principal de la nitrogenasa . La nitrogenasa es la enzima que cataliza la conversión de las moléculas de nitrógeno atmosférico (N₂) en amoníaco ( NH₃ ) mediante el proceso conocido como fijación de nitrógeno . Debido a que contiene hierro y molibdeno , el cofactor se denomina FeMoco. Su estequiometría es Fe₇MoS₉C .
Estructura
El cofactor FeMo es un clúster con composición Fe 7 MoS 9 C. Este clúster puede considerarse como dos subunidades compuestas por un clúster Fe 4 S 3 ( sulfuro de hierro(III) ) y un clúster MoFe 3 S 3. Los dos clústeres están unidos por tres ligandos de sulfuro y un átomo de carbono puente. El hierro (Fe) único está anclado a la proteína por una cisteína . También está unido a tres sulfuros, lo que resulta en una geometría molecular tetraédrica . Los seis centros de Fe adicionales en el clúster están unidos cada uno a tres sulfuros. Estos seis centros internos de Fe definen una disposición prismática trigonal alrededor de un centro de carburo central. El molibdeno está unido a tres sulfuros y está anclado a la proteína por el grupo imidazol de un residuo de histidina. También unido al Mo hay un cofactor homocitrato bidentado , lo que da lugar a una geometría octaédrica. [ 2 ] El análisis cristalográfico de la proteína MoFe reveló inicialmente la geometría y la composición química de FeMoco, [ 3 ] [ 4 ] [ 5 ] posteriormente confirmadas por estudios de estructura fina de absorción de rayos X extendida (EXAFS). [ 6 ] Las distancias Fe-S, Fe-Fe y Fe-Mo se determinaron en 2,32, 2,64 y 2,73 Å respectivamente. [ 6 ]
Biosíntesis
La biosíntesis de FeMoco es un proceso complejo que requiere varios productos génicos Nif , específicamente los de nifS, nifQ, nifB, nifE, nifN, nifV, nifH, nifD y nifK (expresados como las proteínas NifS, NifU, etc.). Se propone que el ensamblaje de FeMoco se inicia mediante NifS y NifU, que movilizan Fe y sulfuro en pequeños fragmentos [Fe₄S₄ ] . Un par de estos fragmentos (clúster K) se transfieren al andamio NifB y se organizan en un clúster L Fe₇MoS₉C antes de su transferencia a la proteína NifEN (codificada por nifE y nifN) y su posterior reorganización antes de su entrega a la proteína MoFe. [ 7 ] [ 8 ]
En la biosíntesis intervienen otros factores. Por ejemplo, NifV es la homocitrato sintasa que suministra homocitrato a FeMoco. Se ha propuesto que NifV, un factor proteico, participa en el almacenamiento y/o la movilización de Mo. La proteína Fe actúa como donante de electrones para la proteína MoFe. Estos factores biosintéticos han sido dilucidados y caracterizados, confirmándose sus funciones y secuencia exactas mediante análisis bioquímicos, espectroscópicos y estructurales.
Identidad del átomo central
Las tres proteínas que desempeñan un papel directo en la síntesis del clúster M son NifH, NifEN y NifB. La proteína NifB es responsable del ensamblaje del núcleo Fe-S del cofactor; un proceso que implica la unión de dos clústeres [4Fe-4S]. NifB pertenece a la superfamilia de enzimas SAM (S-adenosil-L-metionina). Durante la biosíntesis del cofactor FeMo, NifB y su cofactor SAM participan directamente en la inserción de un átomo de carbono en el centro del complejo Fe-S. Un equivalente de SAM dona un grupo metilo , que se convierte en el carburo intersticial del clúster M. El grupo metilo de SAM se moviliza mediante la eliminación radicalaria de un H por un radical 5'-desoxiadenosina (5'-dA·). Presumiblemente, se forma un radical –CH2· transitorio que posteriormente se incorpora al clúster metálico formando una especie de carburo Fe 6 . El carbono intersticial permanece asociado con el cofactor FeMo después de la inserción en la nitrogenasa, [ 9 ] La naturaleza del átomo central en FeMoco como una especie de carbono fue identificada en 2011. [ 5 ] [ 10 ] El enfoque para la identificación se basó en una combinación de marcaje 13 C/ 15 N y espectroscopia EPR pulsada , así como estudios cristalográficos de rayos X a resolución atómica completa. [ 5 ] Adicionalmente, se utilizó difractometría de rayos X para verificar que había un átomo de carbono central en el medio del cofactor FeMo y los estudios de espectroscopia de emisión de rayos X mostraron que el átomo central era carbono debido a la transición 2p→1s carbono-hierro. [ 10 ] El uso de cristalografía de rayos X mostró que mientras el cofactor FeMo no está en su forma catalítica, el carbono mantiene la estructura rígida, lo que ayuda a describir la reactividad de la nitrogenasa.
Propiedades electrónicas
Según el análisis mediante espectroscopia de resonancia paramagnética electrónica , el estado de reposo del cofactor FeMo tiene un estado de espín de S=3/2. Tras la reducción de un electrón, el cofactor se vuelve silencioso en la EPR. La comprensión del proceso en el que se transfiere un electrón en el aducto proteico muestra un modelo cinético más preciso del cofactor FeMo. [ 11 ] Los cálculos de la teoría del funcional de la densidad , así como el refinamiento de dispersión anómala con resolución espacial, han sugerido que el estado de oxidación formal es Mo IV -2Fe II -5Fe III -C 4− -H + , pero los estados de oxidación "verdaderos" no se han confirmado experimentalmente. [ 12 ] [ 13 ]
Unión del sustrato
Aún no se ha dilucidado la ubicación de la unión del sustrato al complejo. Se cree que los átomos de Fe más cercanos al carbono intersticial participan en la activación del sustrato, pero el molibdeno terminal también es un candidato para la fijación de nitrógeno. [ 14 ] Estudios de cristalografía de rayos X que utilizan la proteína MoFe y monóxido de carbono (CO), que es isoelectrónico al dinitrógeno, demostraron que el monóxido de carbono se une al borde Fe2-Fe6 de FeMoco. [ 15 ] Estudios adicionales mostraron la unión simultánea de dos moléculas de CO a FeMoco, proporcionando una base estructural para la química biológica de tipo Fischer-Tropsch . [ 16 ] [ 17 ] Estudios de incorporación de Se en combinación con cristalografía de rayos X resuelta en el tiempo evidenciaron importantes reordenamientos estructurales en la estructura de FeMoco tras eventos de unión del sustrato. [ 18 ]
Aislamiento
El aislamiento del cofactor FeMo de la nitrogenasa se realiza mediante sedimentación centrífuga de la nitrogenasa en la proteína MoFe y la proteína Fe. El cofactor FeMo se extrae tratando la proteína MoFe con ácidos. La primera extracción se realiza con N ,N-dimetilformamida y la segunda con una mezcla de N-metilformamida y Na₂HPO₄ antes de la sedimentación final por centrifugación. [ 19 ]
Referencias
- ↑ Einsle O, Rees DC (junio de 2020). "Enzimología estructural de las enzimas nitrogenasas" . Chemical Reviews . 120 ( 12): 4969– 5004. doi : 10.1021/acs.chemrev.0c00067 . PMC 8606229. PMID 32538623. S2CID 219703833 .
- ↑ Leigh GJ (2002). «Capítulo 5: Estructura y propiedades espectroscópicas de los cúmulos metalosulfúricos». Fijación de nitrógeno en el milenio . Ámsterdam: Elsevier Science BV, págs. 209-210 . ISBN 978-0-444-50965-9.
- ↑ Kim J, Rees DC (septiembre de 1992). "Modelos estructurales para los centros metálicos en la proteína molibdeno-hierro de la nitrogenasa". Science . 257 (5077): 1677– 1682. Bibcode : 1992Sci...257.1677K . doi : 10.1126/science.1529354 . PMID 1529354 .
- ↑ Einsle O, Tezcan FA, Andrade SL, Schmid B, Yoshida M, Howard JB, Rees DC (septiembre de 2002). "Proteína MoFe de la nitrogenasa a una resolución de 1,16 Å: un ligando central en el cofactor FeMo" (PDF) . Science . 297 (5587): 1696–1700 . Bibcode : 2002Sci...297.1696E . doi : 10.1126 /science.1073877 . PMID 12215645. S2CID 29558745 .
- 1 2 3 Reiher M, Wiebe N, Svore KM, Wecker D, Troyer M (julio de 2017). "Aclarando los mecanismos de reacción en computadoras cuánticas" . Actas de la Academia Nacional de Ciencias de los Estados Unidos de América . 114 (29): 7555– 7560. arXiv : 1605.03590 . Bibcode : 2017PNAS..114.7555R . doi : 10.1073/pnas.1619152114 . PMC 5530650. PMID 28674011 .
- 1 2 Roat-Malone RM (2002). "Capítulo 6: Estructura de la proteína MoFe". Química bioinorgánica . Hoboken, Nueva Jersey: John Wiley & Sons, Inc. págs. 253–254 . ISBN 978-0-471-26533-7.
- ↑ Hu Y, Ribbe MW (mayo de 2011). "Biosíntesis de la nitrogenasa FeMoco" . Coordination Chemistry Reviews . 255 ( 9–10 ): 1218–1224 . doi : 10.1016/j.ccr.2010.11.018 . PMC 3077758. PMID 21503270 .
- ^ Liu, Yiling A.; Lee, Chi Chung; Górecki, Kamil; Stiebritz, Martín T.; Duffin, Calder; Salomón, José B.; Ribbe, Markus W.; Hu, Yilin (2 de mayo de 2025). "Síntesis heteróloga de un análogo de nitrogenasa simplificado en Escherichia coli" . Avances científicos . 11 (18) eadw6785. Código Bib : 2025SciA...11.6785L . doi : 10.1126/sciadv.adw6785 . PMC 12047441 . PMID 40315313 .
- ↑ Boal AK, Rosenzweig AC (septiembre de 2012). "Bioquímica. Una ruta radical para la inserción de carburo de nitrogenasa". Science . 337 ( 6102): 1617– 1618. Bibcode : 2012Sci...337.1617B . doi : 10.1126/science.1229088 . PMID 23019640. S2CID 98713038 .
- 1 2 Lancaster KM, Roemelt M, Ettenhuber P, Hu Y, Ribbe MW, Neese F, et al. (noviembre de 2011). "La espectroscopia de emisión de rayos X evidencia un carbono central en el cofactor hierro-molibdeno de la nitrogenasa" . Science . 334 ( 6058): 974– 977. Bibcode : 2011Sci...334..974L . doi : 10.1126/science.1206445 . PMC 3800678. PMID 22096198 .
- ↑ Burgess BK, Lowe DJ (noviembre de 1996). "Mecanismo de la nitrogenasa de molibdeno". Chemical Reviews . 96 (7): 2983–3012 . doi : 10.1021/cr950055x . PMID 11848849 .
- ↑ Harris TV, Szilagyi RK (junio de 2011). "Evaluación comparativa de la composición y el estado de carga del cofactor FeMo de la nitrogenasa" . Química Inorgánica . 50 (11): 4811– 4824. Bibcode : 2011InCh...50.4811H . doi : 10.1021/ic102446n . PMC 3105220. PMID 21545160 .
- ↑ Spatzal T, Schlesier J, Burger EM, Sippel D, Zhang L, Andrade SL, et al. (marzo de 2016). " Investigación de la nitrogenasa FeMoco mediante refinamiento de dispersión anómala con resolución espacial" . Nature Communications . 7 (1) 10902. Bibcode : 2016NatCo...710902S . doi : 10.1038/ncomms10902 . PMC 4793075. PMID 26973151 .
- ↑ Hallmen PP, Kästner J (junio de 2015). "Unión de N2 al cofactor FeMo de la nitrógenoasa". Zeitschrift für Anorganische und Allgemeine Chemie . 641 (1): 118– 122. doi : 10.1002/zaac.201400114 .
- ↑ Spatzal T, Perez KA, Einsle O, Howard JB, Rees DC (septiembre de 2014). "Unión de ligando al cofactor FeMo: estructuras de la nitrogenasa unida a CO y reactivada" . Science . 345 ( 6204): 1620–1623 . Bibcode : 2014Sci...345.1620S . doi : 10.1126/science.1256679 . PMC 4205161. PMID 25258081 .
- ↑ Buscagan TM, Perez KA, Maggiolo AO, Rees DC, Spatzal T (marzo de 2021). "Caracterización estructural de dos moléculas de CO unidas al sitio activo de la nitrogenasa" . Angewandte Chemie . 60 (11): 5704– 5707. doi : 10.1002/anie.202015751 . PMC 7920927. PMID 33320413 .
- ↑ Rohde M, Laun K, Zebger I, Stripp ST, Einsle O (mayo de 2021). "Dos sitios de unión de ligandos en la nitrogenasa V reductora de CO revelan un principio mecanístico general" . Science Advances . 7 (22). Bibcode : 2021SciA....7.4474R . doi : 10.1126/sciadv.abg4474 . PMC 8163085. PMID 34049880 .
- ↑ Spatzal T, Perez KA, Howard JB, Rees DC (diciembre de 2015). "Incorporación y migración de selenio dependientes de la catálisis en el cofactor hierro-molibdeno del sitio activo de la nitrogenasa" . eLife . 4 e11620 . doi : 10.7554/eLife.11620 . PMC 4755756. PMID 26673079 .
- ^ Burgess BK, Jacobs DB, Stiefel EI (julio de 1980). "Purificación a gran escala de la nitrogenasa de Azotobacter vinelandII de alta actividad". Biochimica et Biophysica Acta (BBA) - Enzimología . 614 (1): 196– 209. doi : 10.1016/0005-2744(80)90180-1 . PMID 6930977 .
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