Articulo de referencia

β- D -1-tiogalactopiranósido de isopropilo

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El isopropil β- d -1-tiogalactopiranósido ( IPTG ) es un reactivo de biología molecular . Este compuesto es un análogo molecular de la alolactosa , un metabolito de la lactosa que activa la transcripción del operón lac , y por lo tanto se utiliza para inducir la expresión de proteínas cuando el gen está bajo el control del operador lac .

Mecanismo de acción

Al igual que la alolactosa, el IPTG se une al represor lac y libera el represor tetramérico del operador lac de forma alostérica , permitiendo así la transcripción de genes en el operón lac, como el gen que codifica la beta-galactosidasa , una enzima hidrolasa que cataliza la hidrólisis de β-galactósidos en monosacáridos. Pero a diferencia de la alolactosa, el átomo de azufre ( S ) crea un enlace químico no hidrolizable por la célula, lo que impide que esta metabolice o degrade el inductor . Por lo tanto, su concentración permanece constante durante un experimento.

La captación de IPTG por E. coli puede ser independiente de la acción de la lactosa permeasa , ya que también intervienen otras vías de transporte. [ 1 ] A bajas concentraciones, el IPTG entra en las células a través de la lactosa permeasa, pero a altas concentraciones (típicamente utilizadas para la inducción de proteínas), el IPTG puede entrar en las células independientemente de la lactosa permeasa. [ 2 ]

Uso en laboratorio

Cuando se almacena como polvo a 4  °C o menos, el IPTG es estable durante 5 años. Es significativamente menos estable en solución; Sigma recomienda almacenarlo durante no más de un mes a temperatura ambiente. [ 3 ] El IPTG es un inductor eficaz de la expresión de proteínas en el rango de concentración de 100 μmol/L a 3,0 mmol/L . Normalmente, se añade una  solución estéril y filtrada de IPTG 1 mol/L en una proporción de 1:1000 a un cultivo bacteriano en crecimiento exponencial, para obtener una concentración final de 1  mmol/L. La concentración utilizada depende de la fuerza de inducción requerida, así como del genotipo de las células o del plásmido utilizado. Si está presente lacI q , un mutante que sobreproduce el represor lac, entonces puede ser necesaria una mayor concentración de IPTG. [ 4 ]

En la técnica de pantalla azul-blanco , se utiliza IPTG junto con X-gal . Esta técnica permite identificar en experimentos de clonación las colonias transformadas con el plásmido recombinante en lugar de las transformadas con uno no recombinante. [ 5 ]

Referencias

  1. Hansen LH, Knudsen S, Sørensen SJ (junio de 1998). "El efecto del gen lacY en la inducción de promotores inducibles por IPTG, estudiado en Escherichia coli y Pseudomonas fluorescens " . Curr. Microbiol . 36 (6): 341–7 . doi : 10.1007/s002849900320 . PMID 9608745. S2CID 22257399. Archivado del original el 18 de octubre de 2000.  
  2. Marbach A, Bettenbrock K (2012). "Inducción del operón lac en Escherichia coli: comparación sistemática de la inducción por IPTG y TMG e influencia de la transacetilasa LacA". Journal of Biotechnology . 157 (1): 82–8 . doi : 10.1016/j.jbiotec.2011.10.009 . PMID 22079752 . 
  3. https://www.sigmaaldrich.com/content/dam/sigma-aldrich/docs/Sigma-Aldrich/Product_Information_Sheet/i5502pis.pdf
  4. Células competentes BL21(DE3), células competentes BL21(DE3)pLysS y manual de instrucciones para células competentes BL21 (edición de revisión n.º 066004e ). La Jolla, CA: Stratagene. 2006. pág. 7.  
  5. "Kit de mutagénesis dirigida QuikChange II XL - Manual de instrucciones" (PDF) . Consultado el 4 de enero de 2026 .{{cite web}}: CS1 mantenimiento: estado de la URL ( enlace )