
Chironomidae / ˌ k aɪ r ə ˈ n ɒ m ɪ d iː / , comúnmente conocidos como quironómidos o mosquitos no picadores / k aɪ ˈ r ɒ n ə m ɪ d z / , [ 2 ] son una familia de moscas nematoceras con distribución global. Están estrechamente relacionados con las familias Ceratopogonidae , Simuliidae y Thaumaleidae . Aunque muchas especies de quironómidos se parecen superficialmente a los mosquitos, se pueden distinguir por la ausencia de las escamas alares y las piezas bucales alargadas características de los Culicidae (mosquitos verdaderos).
El nombre Chironomidae proviene de la palabra griega antigua kheironómos , "un pantomimista".
Nombres comunes y biodiversidad
Los quironómidos son un taxón grande de insectos. Algunas estimaciones del número de especies sugieren que hay más de 10 000 en todo el mundo. [ 3 ] Los machos se reconocen fácilmente por sus antenas plumosas . Los adultos se conocen por una variedad de nombres comunes vagos e inconsistentes, en gran parte por confusión con otros insectos. Por ejemplo, los quironómidos se conocen como "moscas de lago" en partes de Canadá y el lago Winnebago , Wisconsin , "moscas de bahía" en las áreas cercanas a la bahía de Green Bay , Wisconsin , y "efímeras" cerca de Madison, Wisconsin . [ 4 ] Se les llama "moscas de arena", "muckleheads", [ 5 ] "muffleheads", [ 6 ] "soldados canadienses", [ 7 ] o "soldados americanos" [ 8 ] en varias regiones del área de los Grandes Lagos . Se les ha llamado "mosquitos ciegos" o "chizzywinks" en Florida . [ 9 ] En Kansas, se les conoce como "midges". [ 10 ] Sin embargo, no son mosquitos de ningún tipo, y el término " moscas de arena " generalmente se refiere a varias especies de moscas picadoras no relacionadas con los Chironomidae.
El grupo incluye a la Belgica antarctica , sin alas , el animal terrestre más grande de la Antártida . [ 11 ] [ 12 ]
Sus larvas producen seda , y Chironomus ha sido estudiado como una fuente alternativa de seda distinta a la polilla de la seda , ya que es posible extraerla sin matar al animal ( seda Ahimsa ). [ 13 ]
La biodiversidad de los quironómidos suele pasar desapercibida debido a su notoria dificultad para identificarlos, y los ecólogos generalmente los registran por grupos o complejos de especies . Cada grupo morfológicamente distinto comprende varias especies morfológicamente idénticas (hermanas) que solo pueden identificarse criando machos adultos o mediante análisis citogenético de los cromosomas politénicos . Los cromosomas politénicos fueron observados originalmente en las glándulas salivales larvarias de los quironómidos del género Chironomus por Balbiani en 1881. Se forman mediante repetidas rondas de replicación del ADN sin división celular, lo que da como resultado patrones característicos de bandas claras y oscuras que pueden usarse para identificar inversiones y deleciones que permiten la identificación de especies. Alternativamente, el código de barras de ADN permite distinguir la mayoría de las especies en muchos grupos taxonómicos utilizando patrones de divergencia de regiones genéticas comúnmente estudiadas.
Registro fósil
El fósil de quironómido más antiguo , Aenne triassica , data del Triásico Tardío . [ 14 ] A finales del Cretácico , los quironómidos eran muy diversos. [ 15 ] Los tanytarsinos aparecen en el registro fósil durante el Eoceno Medio . [ 16 ]
Comportamiento y descripción
Los quironómidos, como grupo, presentan una gran diversidad en sus ciclos de vida y exhiben una variedad de comportamientos durante su desarrollo. Debido a la ambigüedad de su clasificación como especie y a esta diversidad de comportamientos, existe mucha controversia en la investigación sobre sus hábitos alimenticios, especialmente en la etapa adulta.
Numerosas fuentes de referencia del último siglo han reiterado la afirmación de que los quironómidos no se alimentan en su etapa adulta, pero un creciente número de evidencias contradice esta opinión. De hecho, los adultos de muchas especies sí se alimentan. Entre los alimentos naturales que se han reportado se incluyen excrementos frescos de mosca, néctar, polen, melaza y diversos materiales ricos en azúcares.
La cuestión de si la alimentación tiene importancia práctica ya se ha resuelto claramente para algunas especies de Chironomus , al menos; los ejemplares que se habían alimentado de sacarosa volaron mucho más tiempo que los que habían estado en ayunas, y las hembras en ayunas volaron más tiempo que los machos en la misma situación, lo que sugiere que emergieron con mayores reservas de energía que los machos. Algunos autores sugieren que las hembras y los machos de ciertas especies utilizan los recursos obtenidos al alimentarse de manera diferente. Generalmente, los machos gastan la energía extra en el vuelo, mientras que las hembras utilizan sus recursos alimenticios para lograr una mayor longevidad. Las estrategias respectivas deberían ser compatibles con la máxima probabilidad de éxito en el apareamiento y la reproducción en aquellas especies que no se aparean inmediatamente después de la eclosión, particularmente en especies que tienen más de una masa de huevos madurando, y las masas menos desarrolladas se ovipositan después de un tiempo. Estas variables también serían relevantes para las especies que aprovechan el viento para la dispersión, poniendo huevos a intervalos. Los quironómidos que se alimentan de néctar o polen bien podrían ser importantes como polinizadores, pero la evidencia actual sobre estos puntos es en gran medida anecdótica. Sin embargo, el contenido de proteínas y otros nutrientes en el polen, en comparación con el néctar, bien podría contribuir a las capacidades reproductivas de las hembras. [ 3 ]
Las larvas de algunas especies son de color rojo brillante debido a un análogo de la hemoglobina ; a menudo se las conoce como "gusanos de sangre". [ 17 ] Su capacidad para capturar oxígeno aumenta aún más al realizar movimientos ondulantes. [ 18 ]
Los adultos pueden ser plagas cuando emergen en grandes cantidades. [ 19 ] Pueden causar dificultades al conducir si chocan contra el parabrisas, creando una capa opaca que obstruye la visión del conductor. [ 20 ] Pueden dañar la pintura, el ladrillo y otras superficies con sus excrementos. Cuando mueren grandes cantidades de adultos, pueden acumularse formando montones malolientes. Pueden provocar reacciones alérgicas en personas sensibles. [ 21 ] Se ha demostrado que estas reacciones alérgicas son causadas por las hemoglobinas que se encuentran principalmente en las etapas larvarias de Chironomidae. [ 3 ]
Ecología y distribución
Los quironómidos son especies muy versátiles que pueden tolerar una amplia gama de estrés ambiental. Se encuentran en grandes cantidades en muchos de los hábitats en los que viven y representan importantes fuentes de alimento para diversos organismos. [ 3 ] Además, se ha observado que establecen un número significativo de relaciones simbióticas con otros insectos acuáticos, insectos terrestres y algunas plantas. [ 22 ]
Se distribuyen y, en la mayoría de los casos, se encuentran en gran abundancia a nivel mundial. Habitan una amplia variedad de ecosistemas, desde las zonas glaciares de las montañas más altas hasta los cuerpos de agua dulce más profundos. [ 3 ]
Hábitats
Hábitats acuáticos
Las fases larvarias de los quironómidos se pueden encontrar en casi cualquier hábitat acuático o semiacuático. De hecho, en muchos hábitats acuáticos de agua dulce, especialmente en los contaminados, los quironómidos suelen ser uno de los insectos más abundantes. Los hábitats acuáticos pueden ser marinos o de agua dulce; estos últimos incluyen huecos de árboles , bromelias , zonas intersticiales y bentónicas, así como aguas residuales y contenedores artificiales. [ 23 ] También se pueden encontrar habitando aguas con plantas acuáticas, zonas intermareales y zonas intersticiales. Muchas especies de quironómidos se encuentran en sedimentos o niveles bentónicos de cuerpos de agua, donde el oxígeno disuelto es muy bajo. [ 3 ]
Varias especies de quironómidos habitan en ambientes marinos. Los mosquitos del género Clunio se encuentran en la zona intermareal , donde han adaptado todo su ciclo de vida al ritmo de las mareas. Esto convirtió a la especie Clunio marinus en una importante especie modelo para la investigación en el campo de la cronobiología . [ 24 ]
Hábitats terrestres
Las larvas de quironómidos también se pueden encontrar en algunos hábitats terrestres. Muchas especies terrestres viven en el suelo como parte dominante de la comunidad de fauna edáfica, particularmente en hábitats de suelo húmedo, pero también en tierras agrícolas y en etapas tempranas de sucesión . Algunas especies utilizan suelos húmicos para desarrollarse como larvas en tierra; generalmente se alimentan de vegetación en descomposición o, a veces, de vegetación viva para sobrevivir. Se sabe que un género de quironómidos, Camptocladius , se desarrolla como larva en estiércol de vaca. También se sabe que algunas especies excavan profundamente en el suelo en casos de hábitats acuáticos temporales o sequías. [ 23 ]
Los adultos de quironómidos se encuentran predominantemente en hábitats terrestres. [ 3 ]
Funciones en el ecosistema
Los quironómidos presentan una ecología alimentaria variable: la mayoría de las especies se alimentan de algas y otros pequeños organismos del suelo que pueden filtrar. [ 25 ] [ 26 ] Algunas especies comensales se alimentan de las algas de sus huéspedes, lo que también les proporciona protección y mayor movilidad; especialmente cuando el huésped elegido es otra especie larvaria depredadora. Algunas especies son parásitas y perforan el tegumento de su huésped para alimentarse de su hemolinfa. [ 27 ]
Las larvas y pupas son alimentos importantes para peces como la trucha , el killifish rayado y el espinoso , y también para muchos otros organismos acuáticos como los tritones . Muchos insectos acuáticos, como varios hemípteros depredadores de las familias Nepidae , Notonectidae y Corixidae, comen quironómidos en sus fases acuáticas. Además, se ha descubierto que los escarabajos acuáticos depredadores de familias como Dytiscidae e Hydrophilidae se alimentan de quironómidos larvarios. Los mosquitos voladores en su etapa adulta son consumidos por peces y aves insectívoras, como las golondrinas y los vencejos . También se cree que son una fuente de alimento especialmente importante para los polluelos de pato moñudo durante sus primeros días de vida. También son presa de murciélagos e insectos depredadores voladores, como los odonatos y las moscas danzantes .
En el ciclo de vida acuático de los quironómidos, la materia orgánica de las aguas residuales se consume y se transfiere, en forma de quironómidos adultos, a la tierra o al aire, sirviendo de alimento para los depredadores terrestres. En este proceso, el agua contaminada se transforma en agua menos contaminada. [ 28 ] Forman una fracción importante del macrozoobentos de la mayoría de los ecosistemas de agua dulce. Son altamente tolerantes a bajos niveles de oxígeno disuelto y a cambios en la salinidad, ambos frecuentemente derivados de la contaminación antropogénica. [ 23 ] Por lo tanto, los quironómidos son importantes como organismos indicadores ; es decir, la presencia, ausencia o cantidad de diversas especies en un cuerpo de agua puede indicar la presencia de contaminantes . [ 23 ]
Además, sus fósiles son ampliamente utilizados por paleolimnólogos y paleoentomólogos como posibles indicadores de cambios ambientales pasados, incluyendo la variabilidad climática pasada. [ 29 ] Sin embargo, los resultados de estas pruebas suelen ser controvertidos y existen desacuerdos sobre cuán beneficiosas pueden ser en el mundo de la paleoentomología. [ 23 ]
relaciones simbióticas
Se ha informado que una parte significativa de las larvas de Chironomidae se encuentran en relaciones de comensalismo con otros organismos en sus ecosistemas. Aunque se sabe poco sobre la elección y preferencia del hospedador, se ha informado ampliamente que los Ephemeroptera suelen ser sus hospedadores más comunes. [ 30 ]
Las larvas de quironómidos suelen participar en comportamientos comensales debido a su movilidad limitada y morfología defensiva. [ 3 ] Aunque no poseen apéndices diseñados para nadar, y la mayor parte de su movimiento en libertad se realiza mediante ondulaciones, los quironómidos sí poseen apéndices fuertes que les ayudan a sujetarse a un huésped. [ 31 ]
Comensalismo en quironómidos
Se sabe que las larvas comensales de quironómidos compiten por espacio en el huésped. Esta competencia se da a nivel interespecífico, pero también con otros organismos comensales o foréticos. Se ha informado que los quironómidos compiten con el protozoo ciliado Ephemera danica , aunque esta competencia ha resultado en la partición de nichos en el cuerpo del huésped. Estas especies no compiten por alimento, sino por espacios ideales en el huésped. En estas relaciones competitivas, los quironómidos generalmente eligen huéspedes de mayor tamaño, mientras que los protozoos podrían preferir huéspedes más pequeños. En los sitios de hospedadores que contenían ambas especies, se observaron micronichos potenciales, ya que se observó que estos organismos se espaciaban deliberadamente. Sin embargo, en general, parecía que los quironómidos superaban en abundancia al protozoo en un huésped. [ 31 ]
Diversos factores bióticos y abióticos pueden afectar la elección del hospedador en los quironómidos. Existe evidencia de que esta elección está influenciada por factores hidrológicos. Se observa un mayor número de quironómidos que se asocian foréticamente con Ephemeroptera durante la estación lluviosa. En la estación seca, la elección de hospedadores parece diversificarse considerablemente, encontrándose muchos hospedadores únicamente durante la estación seca. Se ha sugerido que esto podría deberse a la afluencia de restos vegetales y detritos que caracteriza la estación lluviosa en ambientes acuáticos, lo que provocaría un aumento de taxones asociados, como Ephemeroptera. [ 30 ]
También se han reportado asociaciones foréticas con insectos acuáticos depredadores en quironómidos. Estas relaciones, aunque poco comunes, representan huéspedes más estables para los quironómidos si son accesibles. Se ha sugerido que la foresis en un huésped depredador implica un huésped más móvil y protector, lo que facilita la etapa de desarrollo del organismo comensal. [ 30 ]
Tolerancia al estrés
Tolerancia al calor
Algunos quironómidos pueden soportar altas temperaturas sin necesidad de desecarse ni interrumpir su desarrollo. Una especie japonesa de quironómido, Tokunagayusurika akasumi, se ha adaptado a la estivación en sedimentos bajo sus hábitats en caso de altas temperaturas. [ 22 ]
Tolerancia al frío
Los quironómidos, en general, son un grupo relativamente tolerante al frío. La hibernación se observa en casi todas sus subfamilias. La mayoría se envuelve en un capullo durante la pupación para hibernar, pero esto no se da en todos los individuos de una misma especie. Se hipotetiza que esta diferencia en el comportamiento de hibernación se produce cuando las temperaturas son más bajas y quizás esté relacionada con la presencia de hielo en el hábitat. [ 22 ]
Se descubrió que los quironómidos del lago Ontario producen una proteína anticongelante . Es probable que la expresión de esta proteína ayude a los adultos a resistir las heladas a principios de la primavera. [ 32 ]
Tolerancia a la contaminación
Los quironómidos son importantes como organismos indicadores ; es decir, la presencia, ausencia o cantidad de diversas especies en un cuerpo de agua puede indicar la presencia de contaminantes . Además, sus fósiles son ampliamente utilizados por los paleolimnólogos como indicadores de cambios ambientales pasados, incluyendo la variabilidad climática pasada. [ 33 ] Los especímenes contemporáneos son utilizados por los entomólogos forenses como marcadores médico-legales para la evaluación del intervalo post mortem. [ 34 ]
Anhidrobiosis y otros tipos de estrés
La anhidrobiosis es la capacidad de un organismo para sobrevivir en estado seco. Las larvas anhidrobióticas del quironómido africano Polypedilum vanderplanki pueden soportar una desecación completa prolongada (revisado por Cornette y Kikawada [ 35 ] ). Estas larvas también pueden soportar otros tipos de estrés externo, incluida la radiación ionizante. [ 36 ] Los efectos de la anhidrobiosis, la radiación gamma y la irradiación con iones pesados sobre el ADN nuclear y la expresión génica de estas larvas fueron estudiados por Gusev et al. [ 36 ] Encontraron que el ADN larvario se fragmenta severamente tanto en la anhidrobiosis como en la irradiación, y que estas rupturas se reparan posteriormente durante la rehidratación o al recuperarse de la irradiación. Un análisis de la expresión génica y la actividad antioxidante sugirió la importancia de la eliminación de especies reactivas de oxígeno, así como la reparación de los daños en el ADN mediante enzimas reparadoras. La expresión de los genes que codifican las enzimas reparadoras del ADN aumentó al entrar en anhidrobiosis o al exponerse a la radiación, y estos aumentos indicaron que cuando se producían daños en el ADN, estos se reparaban posteriormente. En particular, la expresión del gen Rad51 se reguló positivamente de manera sustancial después de la irradiación y durante la rehidratación. [ 36 ] La proteína Rad51 desempeña un papel clave en la recombinación homóloga, un proceso necesario para la reparación precisa de las roturas de doble cadena del ADN.
Muchas especies de quironómidos han desarrollado una alta tolerancia a la desecación, especialmente aquellas que habitan en hábitats acuáticos temporales o lugares donde las sequías son frecuentes. La anhidrobiosis, que resulta de la desecación completa, es la pérdida de la mayor parte o la totalidad del agua del cuerpo. Si bien es más común en especies terrestres, la tolerancia a la sequía dentro de los quironómidos es similar tanto en especies terrestres como acuáticas. [ 22 ] Se encontró una especie de África con una tolerancia extrema a la desecación. Esta especie pudo desecarse por completo y, tras la rehidratación, recuperó la movilidad en 48 horas. Esta misma especie puede soportar esta pausa en su desarrollo durante un período prolongado, con registros de supervivencia de hasta 17 años completamente deshidratada. [ 22 ]
Quironómidos y humanos
Los quironómidos pueden ser tanto beneficiosos como perjudiciales para los humanos. Son una fuente de alimento históricamente importante para algunas comunidades en África. [ 23 ]
Algunas larvas de quironómidos prosperan en hábitats muy contaminados. Estos hábitats suelen ser artificiales y dan lugar a una biodiversidad escasa o nula, lo que implica la ausencia de depredadores naturales que mantengan las poblaciones de mosquitos en niveles naturales. Estas condiciones a menudo empeoran los eventos de emergencia, que también tienen lugar cerca de hábitats dominados por el ser humano. [ 3 ]
Subfamilias y géneros
La familia se divide en 11 subfamilias: Aphroteniinae , Buchonomyiinae , Chilenomyiinae , Chironominae , Diamesinae , Orthocladiinae , Podonominae , Prodiamesinae , Tanypodinae , Telmatogetoninae y Usambaromyiinae . [ 37 ] [ 38 ] La mayoría de las especies pertenecen a Chironominae, Orthocladiinae y Tanypodinae. Diamesinae, Podonominae, Prodiamesinae y Telmatogetoninae son subfamilias de tamaño mediano con decenas a cientos de especies. Las cuatro subfamilias restantes tienen menos de cinco especies cada una.



- Aagaardia Sæther , 2000
- Abismomyia Edwards , 1937
- Alabesmyia Johannsen, 1905
- Acalcarella
- Acamptocladius Brundin, 1956
- Acricotopus Kieffer , 1921
- Aedocrito
- Aenne
- Afrochlus
- Afrozavrelia Harrison, 2004 [ 39 ]
- Allocladio
- Alometriocnemus
- Allotrissocladius
- Alotanypus Roback, 1971
- Amblicladio
- Amnihayesomyia
- Anfismitia
- Anafrotenia
- Anatopynia Johannsen, 1905
- Ancimocladio
- Andamanus
- Antillocladius Sæther , 1981
- Anuncotendipes
- Apedilum Townes, 1945
- Afrotenia
- Afroteniella
- Apometriocnemus Sæther , 1984
- Apsectrotanypus Fittkau , 1962
- Archaeochlus
- Arctodiamesa Makarchenko, 1983 [ 40 ]
- Arctopelopia Fittkau , 1962
- Arctosmittia
- Asachironomus
- Asclerina
- Asheum Sublette & Sublette, 1983
- Australopielopia
- Austrobrillia
- Austrochlus
- Austrocladio
- Axarus Roback 1980
- Baeoctenus
- Baeotendipes Kieffer , 1913
- Bavarismittia
- Beardius Reiss y Sublette, 1985
- Beckidia Sæther 1979
- Bélgica
- Bernardia
- Bethbilbeckia
- Biwatendipes
- Boreochlus Edwards, 1938
- Boreoheptagyia Brundin 1966
- Boreosmittia
- Botriocladio
- Brillia Kieffer , 1913
- Brundiniella
- Bruniería
- Bryophaenocladius Thienemann, 1934
- Buchonomyia Fittkau , 1955
- Caladomía
- Camposimyia
- Camptocladio van der Wulp, 1874
- Cantopelopia
- Carbochironomus Reiss y Kirschbaum 1990
- Cardiocladius Kieffer , 1912
- Chaetocladius Kieffer , 1911
- Chasmatonotus
- Chernovskiia Sæther 1977
- Chilenomyia
- Quirocladio
- Quironómidos
- quironóminas
- Chironomini
- Quirónomus Meigen , 1803
- Crisopelopia
- Cladopelma Kieffer , 1921
- Cladotanytarsus Kieffer , 1921
- Clinotanypus Kieffer , 1913
- Clunio Haliday, 1855
- Celopinia
- Celotanypus
- Coffmania
- Collartomía
- Colosmittia
- Compteromesa Sæther 1981
- Compterosmittia
- Conchapelopia Fittkau , 1957
- Conochironomus
- Constempellina Brundin, 1947
- Corynocera Zetterstedt , 1838
- Corynoneura Winnertz, 1846
- Corynoneurella Brundin, 1949
- Corytibacladius
- Cricotopus van der Wulp, 1874
- Cryptochironomus Kieffer , 1918
- Cryptotendipes Lenz, 1941
- Cyphomella Sæther 1977
- Dactylocladius
- Daitoyusurika
- Demeijerea Kruseman, 1933
- Demicryptochironomus Lenz, 1941
- Denopelopia
- Derotanypus
- Diamesa Meigen en Gistl, 1835
- Diamesinae
- Dicrotendipes Kieffer , 1913
- Diplocladius Kieffer , 1908
- Diplosmittia
- Djalmabatista Fittkau , 1968
- Doithrix
- Doloplasto
- Doncricotopus
- Dratnalia
- Equinocladio
- Edwardsidia
- Einfeldia Kieffer , 1924
- Endochironomus Kieffer , 1918
- Endotribelos
- Epoicocladius Sulc y Zavíel, 1924
- Eretmoptera
- Eukiefferiella Thienemann, 1926
- Eurycnemus van der Wulp, 1874
- Euryhapsis Oliver, 1981
- Eusmittia
- Fisimento
- Fittkauimyia
- Fleuria
- Freemaniella
- Friederia
- Georthocladius Strenzke, 1941
- Gillotia Kieffer , 1921
- Glushkovella
- Glyptotendipes Kieffer , 1913
- Goeldichironomus
- Graceus Goetghebuer, 1928
- Gravatamberus
- Gressittius
- Guassutanypus
- Guttipelopia Fittkau , 1962
- Gimnometriocnemo Goetghebeur, 1932
- Ginidocladio
- Gynocladius Mendes, Sæther y Andrade-Morraye, 2005
- Hahayusurika
- Halirito
- Halocladius Hirvenoja, 1973
- Hanochironomus
- Hanocladio
- Harnischia Kieffer , 1921
- Harrisius
- Harrisonina
- Hayesomyia Murray y Fittkau, 1985
- Heleniella Gouin, 1943
- Helopelopia Roback, 1971
- Henrardia
- Heptagia
- Heterotanytarsus Spärck, 1923
- Heterotrissocladius Spärck, 1923
- Hevelius
- Himatendipes
- Hirosimayusurika
- Hudsonimyia Roback, 1979 [ 41 ]
- Hydrobaenus
- Hidrosmitia
- Hiporhigma
- Ichthyocladius Fittkau , 1974
- Ikiprimo
- Ikisecundus
- Iparepicteno
- Indoaxarus
- Indocladio
- Iontosmitia
- Irisobrillia
- Kalugunia
- Kamelopelopia
- Kaniwhaniwhanus
- Kiefferophyes
- Kiefferulus Goetghebuer, 1922
- Knepperia
- Kloosia Kruseman 1933
- Krenopelopia Fittkau , 1962
- Krenopsectra
- Krenosmittia Thienemann & Krüger, 1939
- Kribiobius
- Kribiocosmus
- Kribiodosis
- Kribiopelma
- Kribiothauma
- Kribioxenus
- Kurobebrillia
- Kuschelius
- Labrundinia Fittkau , 1962
- Lappodiamesa Serra-Tosio, 1968
- Lappokiefferiella
- Lapposmittia
- Larsia Fittkau , 1962
- Lasiodiamesa Kieffer , 1924
- Laurotanypus
- Lauterborniella Thienemann & Bause, 1913
- Lepidopelopia
- Lepidópodo
- Lerheimia
- Limaya
- Limnophyes Eaton, 1875
- Lindebergia
- Linevitshia
- Lipiniella Shilova 1961
- Lipurometriocnemus
- Litotanytarso
- Litocladius Andersen, Mendes y Sæther 2004
- Ljungneria
- Lobodiamesa
- Lobomía
- Lobosmittia
- Lopescladio
- Lunditendipes
- Lyrocladius Mendes y Andersen, 2008
- Macropelopia Thienemann, 1916
- Macropelopini
- Manoa
- Maoridiamesa
- Mapucheptagyia
- Maryella
- Mecaorus
- Megacentron
- Mesocricotopus
- Mesosmittia Brundin, 1956
- Metriocnemo van der Wulp, 1874
- Microchironomus Kieffer , 1918
- Micropsectra Kieffer , 1909
- Microtendipes Kieffer , 1915
- Microzetia
- Molleriella
- Mongolchironomus
- Mongolcladius
- Mongolyusurika
- Monodiamesa Kieffer , 1922
- Monopelopia Fittkau , 1962
- Murraycladius
- Nakataia
- Nandeva
- Nanocladius Kieffer , 1913
- Napoleona
- Nasuticladio
- Natarsia Fittkau , 1962
- Neelamia
- Neobrillia
- Neopodonomus
- Neostempellina
- Neozavrelia Goetghebuer, 1941
- Nesiocladio
- Nilodorum
- Nilodosis
- Nilotanypus Kieffer , 1923
- Nilothauma Kieffer , 1921
- Nimbocera
- Notocladio
- Odontomesa Pagast, 1947
- Okayamayusurika
- Okinawayusurika
- Olecryptotendipes Zorina, 2007 [ 42 ]
- Oleia
- Oliveridia Sæther , 1980
- Omisus Townes, 1945
- Onconeura
- Ofrióforo
- Oreadomyia
- Orthocladiinae
- Ortocladio van der Wulp, 1874
- Oryctochlus
- Oukuriella
- Pagastia Oliver, 1959
- Pagastiella Brundin, 1949
- Paraboreochlus Thienemann, 1939
- Parachaetocladius
- Parachironomus Lenz, 1921
- Paracladius Hirvenoja, 1973
- Paracladopelma Harnisch, 1923
- Paracricotopus Thienemann y Harnisch, 1932
- Parakiefferiella Thienemann, 1936
- Paralauterborniella Lenz, 1941
- Paralimnophyes Brundin, 1956
- Paramerina Fittkau , 1962
- Parametriocnemus Goetghebuer, 1932
- Pamirocesa
- Paraborniella
- Parachironominae
- Paradoxocladio
- Paraheptagia
- Paranilothauma
- Parapentaneura
- Paraphaenocladius Thienemann, 1924
- Parafrotenia
- Parapsectra Reiss, 1969
- Parapsectrocladio
- Parasmittia
- Paratanytarsus Thienemann y Bause, 1913
- Paratendipes Kieffer , 1911
- Paratrichocladius Thienemann, 1942
- Paratrissocladius Zavíel, 1937
- Parroquio Enderlein , 1912
- Parorthocladius Thienemann, 1935
- Parvítrego
- Paucispinigera
- Pelomus
- Pentaneura
- Pentaneurella
- Pentaneurini
- Pentapedilio
- Petalocladio
- Phaenopsectra Kieffer , 1921
- Fisoneura
- Pirara
- Platysmittia Sæther , 1982
- Plhudsonia
- Podocro
- Podonomopsis
- Podonomus
- Polypedilum Kieffer , 1912
- Pontomia
- Potthastia Kieffer , 1922
- Proquironomus
- Procladiini
- Procladius Skuse , 1889
- Prodiamesa Kieffer , 1906
- Propsilocerus
- Prosmittia
- Protanypus Kieffer , 1906
- Psectrocladius Kieffer , 1906
- Psectrotanypus Kieffer , 1909
- Pseudobrilia
- Pseudochironomus Malloch , 1915
- Pseudodiamesa Goetghebuer, 1939
- Pseudohidrobaeno
- Pseudokiefferiella Zavrel, 1941
- Pseudorthocladius Goetghebuer, 1932
- Pseudosmittia Goetghebuer, 1932
- Psilochironomus
- Psilometriocnemus Sæther , 1969
- Pterosis
- Qiniella
- Reissmesa
- Reoclos
- Rheocricotopus Brundin, 1956
- Reomus
- Reomiia
- Reopelopia Fittkau , 1962
- Rheosmittia Brundin, 1956
- Reotanytarsus Thienemann & Bause, 1913
- Rinocladio
- Riethia
- Robackia Sæther , 1977
- Saetheria Jackson, 1977
- Saetheriella Halvorsen, 1982 [ 43 ]
- Saetherocladius
- Saetherocryptus
- Saetheromyia
- Saetherops
- Sasayusurika
- Schineriella Murray y Fittkau, 1988
- Semiocladio
- Setukoyusurika
- Seppia
- Sergentia Kieffer , 1922
- Shangomyia
- Shilovia
- Skusella
- Skutzia
- Smittia Holmgren, 1869
- Stackelbergina
- Estelecomía
- Stempellina Thienemann & Bause, 1913
- Stempellinella Brundin, 1947
- Stenochironomus Kieffer , 1919
- Stictochironomus Kieffer , 1919
- Stictocladio
- Stictotendipes
- Stilocladius Rossaro, 1979
- Sublettea
- Sublettilla
- Sumatendipes
- Symbiocladius Kieffer , 1925
- Sympotthastia Pagast, 1947
- Syndiamesa Kieffer , 1918
- Synendotendipes Grodhaus, 1987
- Synorthocladius Thienemann, 1935
- Tanypodinae
- Tanypus Meigen, 1803
- Tanytarsini
- Tanytarsus van der Wulp, 1874
- Tavastia
- Telmatogeton Schiner, 1866
- Telmatopelopia Fittkau , 1962
- Telopelopia
- Tempisquitoneura
- Tetimemia
- Thalassomya Schiner, 1856
- Thalassosmittia Strenzke & Remmert, 1957
- Thienemannia Kieffer , 1909
- Thienemanniella Kieffer , 1911
- Thienemannimiya Fittkau , 1957
- Thienemanniola
- Tobachironomus
- Tokunagaia Sæther , 1973
- Tokunagayusurika
- Tokyobrillia
- Tosayusurika
- Townsia
- Toyamayusurika
- Tribelos Townes, 1945
- Trichochilus
- Trichosmittia
- Trichotanypus Kieffer , 1906
- Trissocladius Kieffer , 1908
- Trissopelopia Kieffer , 1923
- Tronia
- Tsudayusurika
- Tusimayusurika
- Tvetenia Kieffer , 1922
- Unniella Sæther , 1982
- Usambaromyia Andersen y Sæther , 1994 [ 44 ]
- Virgatanytarsus Pinder, 1982
- Vivacricotopus
- Wirthiella
- Xenochironomus Kieffer , 1921
- Xenopelopia Fittkau , 1962
- Xestochironomus
- Xestotendipes
- Xiaomyia
- Xylotopus
- Yaeprimus
- Yaequartus
- Yaequintus
- Yaesecundo
- Yaetanytarsus
- Yaetertius
- Yama
- Zalutschia Lipina, 1939
- Zavrelia Kieffer , 1913
- Zavreliella Kieffer , 1920
- Zavrelimyia Fittkau , 1962
- Zelandochlus
- Zhouomyia
- Zuluchironomus
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Enlaces externos
- Página principal de Chironomid
- Quironómidos y escarabajos acuáticos de Florida
- Grupo de Investigación de Quironómidos, Universidad de Minnesota
- Familia Chironomidae en la Sociedad de Conservación de Suelos y Agua de Metro Halifax
- Lista de especies de Chironomidae registradas en el Reino Unido
- Chironomidae en Nomina Insecta Nearctica
- Paleoecología de quironómidos en UBC Okanagan. Archivado el 18 de mayo de 2022 en Wayback Machine.
- Chironomidae en el Directorio Faunístico Australiano
- "Mosquito minador de la punta de la hidrilla" . Criaturas destacadas . Instituto de Ciencias Alimentarias y Agrícolas de la Universidad de Florida .
- Imágenes de Diptera.info
- Quironómidos
- Familias de Nematocera
- Primeras apariciones del Triásico existente
- Taxones nombrados por Edward Newman