Meiobentos

El muestreo del meiobentos depende del entorno y de si se requieren muestras cuantitativas o cualitativas. En el ambiente sedimentario, la metodología empleada también depende de la morfología física del sedimento. Para el muestreo cualitativo en la zona litoral, tanto para sedimentos gruesos como finos, se puede utilizar un cubo y una pala. En la zona sublitoral y en aguas profundas, se requiere algún tipo de draga (como la draga Van Veen ), aunque una malla fina (de aproximadamente 0,25  mm o menos) también sería adecuada.

Para el muestreo cuantitativo de ambientes sedimentarios a todas las profundidades, se han ideado diversos muestreadores. El más sencillo consiste en una jeringa de plástico con el extremo cortado para formar un muestreador de pistón, que puede utilizarse en la zona litoral o en la sublitoral con equipo de buceo autónomo . Generalmente, cuanto mayor es la profundidad, más complejo resulta el proceso de muestreo. Para muestrear la meiofauna en sustratos duros o en ambientes fitales o epizoóticos, la única metodología práctica consiste en cortar o raspar una zona conocida del sustrato y colocarla en una bolsa de plástico.

Existen diversos métodos para extraer la meiofauna de muestras de su hábitat, dependiendo de si se requieren especímenes vivos o fijados. Para extraer meiofauna viva, hay que lidiar con la gran cantidad de especies que se adhieren al sustrato al ser perturbadas. Para lograr que la meiofauna se desprenda, existen tres metodologías disponibles.

El primer método, y el más sencillo, es el choque osmótico , que se consigue sumergiendo la muestra en agua dulce durante unos segundos (esto solo funciona con muestras marinas). Esto provoca que los organismos se desprendan, tras lo cual se pueden separar del sustrato mediante agitación, filtrar a través de una  malla de 45 μm y devolver inmediatamente a agua de mar fresca filtrada. Muchos organismos sobrevivirán a este proceso sin sufrir daños, siempre y cuando el choque osmótico no dure demasiado.

La segunda metodología consiste en el uso de un anestésico . La solución química preferida por los meiobentólogos es el cloruro de magnesio isotónico (7,5 g _de MgCl₂ ·6H₂O _por 100 mL de agua destilada). La muestra se sumerge en la solución isotónica y se deja reposar durante 15 minutos. Posteriormente, la meiofauna se desprende del sustrato mediante agitación, se filtra a través de una malla de 45 μm y se devuelve inmediatamente a agua de mar fresca filtrada.    

La tercera metodología es la técnica del hielo marino de Uhlig. ^{[ 3 ]} Esta se basa en que los organismos se desplazan delante de un frente de agua de mar helada que desciende a través de la muestra, lo que finalmente los obliga a salir del sedimento. Es más eficaz en muestras de regiones templadas y tropicales.

Para estudios importantes donde se recolectan grandes cantidades de muestras simultáneamente, estas se fijan normalmente con una solución de formalina al 10% , y la meiofauna se extrae posteriormente. Existen dos metodologías principales de extracción. La primera, la decantación , funciona mejor con sedimentos gruesos. Las muestras se agitan en un exceso de agua, se deja reposar brevemente el sedimento y luego se filtra la meiofauna. La segunda metodología, la técnica de flotación, funciona mejor con sedimentos más finos, donde la masa de las partículas de sedimento es similar a la de la meiofauna. La mejor solución para esta técnica es la sílice coloidal Ludox. La muestra se agita en la solución de Ludox y se deja reposar durante 40  minutos, tras lo cual se filtra la meiofauna. En sedimentos finos, la eficiencia de extracción mejora con la centrifugación . Con ambas metodologías, se deben realizar extracciones repetidas (al menos tres) con cada muestra para asegurar que se extraiga al menos el 95% de la meiofauna.