Articulo de referencia

Potencial de placa terminal

En la parte superior se muestra un potencial de placa terminal (EPP; promedio de 10 EPP individuales), y en la parte inferior, potenciales de placa terminal miniatura (mEPP). Nó...

En la parte superior se muestra un potencial de placa terminal (EPP; promedio de 10 EPP individuales), y en la parte inferior, potenciales de placa terminal miniatura (mEPP). Nótese la diferencia en las escalas de los ejes X e Y. Ambos se obtuvieron a partir de registros en la unión neuromuscular del ratón.

Los potenciales de placa terminal ( PPT ) son los voltajes que causan la despolarización de las fibras musculares esqueléticas debido a la unión de neurotransmisores a la membrana postsináptica en la unión neuromuscular . Se denominan "placas terminales" porque los terminales postsinápticos de las fibras musculares tienen una apariencia grande, similar a un platillo. Cuando un potencial de acción llega al terminal axónico de una neurona motora , las vesículas que transportan neurotransmisores (principalmente acetilcolina ) se exocitan y su contenido se libera en la unión neuromuscular. Estos neurotransmisores se unen a receptores en la membrana postsináptica y provocan su despolarización. En ausencia de un potencial de acción, las vesículas de acetilcolina se filtran espontáneamente a la unión neuromuscular y causan despolarizaciones muy pequeñas en la membrana postsináptica. Esta pequeña respuesta (~0,4 mV) [ 1 ] se denomina potencial de placa terminal miniatura (PPPM) y es generada por una vesícula que contiene acetilcolina. Representa la despolarización más pequeña posible que se puede inducir en un músculo.

Unión neuromuscular

Transmisión de señales del nervio al músculo en la placa motora terminal.

La unión neuromuscular es la sinapsis que se forma entre una motoneurona alfa (α-MN) y la fibra muscular esquelética. Para que un músculo se contraiga, primero se propaga un potencial de acción a través de un nervio hasta que llega al terminal axónico de la motoneurona. La motoneurona inerva entonces las fibras musculares para que se contraigan, generando un potencial de acción en la membrana postsináptica de la unión neuromuscular.

Acetilcolina

Los potenciales de placa terminal se producen casi en su totalidad por el neurotransmisor acetilcolina en el músculo esquelético. La acetilcolina es el segundo neurotransmisor excitador más importante del cuerpo después del glutamato . Controla el sistema somatosensorial , que incluye los sentidos del tacto, la vista y el oído. Fue el primer neurotransmisor identificado en 1914 por Henry Dale . La acetilcolina se sintetiza en el citoplasma de la neurona a partir de colina y acetil-CoA . La colina acetiltransferasa es la enzima que sintetiza la acetilcolina y se utiliza a menudo como marcador en investigaciones relacionadas con su producción. Las neuronas que utilizan acetilcolina se denominan neuronas colinérgicas y son muy importantes en la contracción muscular, la memoria y el aprendizaje. [ 2 ]

Canales iónicos

La polarización de las membranas está controlada por canales iónicos de sodio , potasio , calcio y cloruro . Existen dos tipos de canales iónicos implicados en la unión neuromuscular y los potenciales de placa terminal: canales iónicos dependientes de voltaje y canales iónicos dependientes de ligando . Los canales iónicos dependientes de voltaje responden a cambios en el potencial de membrana, lo que provoca su apertura y permite el paso de ciertos iones. Los canales iónicos dependientes de ligando responden a ciertas moléculas, como los neurotransmisores. La unión de un ligando al receptor en la proteína del canal iónico provoca un cambio conformacional que permite el paso de ciertos iones.

Membrana presináptica

Normalmente, el potencial de membrana en reposo de una neurona motora se mantiene entre -70 mV y -50 mV, con una mayor concentración de sodio en el exterior y una mayor concentración de potasio en el interior. Cuando un potencial de acción se propaga a lo largo de un nervio y llega al terminal axónico de la neurona motora, el cambio en el voltaje de la membrana provoca la apertura de los canales iónicos dependientes de voltaje del calcio, permitiendo la entrada de iones de calcio. Estos iones de calcio hacen que las vesículas de acetilcolina unidas a la membrana presináptica liberen acetilcolina mediante exocitosis en la hendidura sináptica. [ 3 ]

membrana postsináptica

Los EPP se producen principalmente por la unión de la acetilcolina a los receptores de la membrana postsináptica. Existen dos tipos de receptores de acetilcolina: nicotínicos y muscarínicos. Los receptores nicotínicos son canales iónicos regulados por ligando para una transmisión rápida. Todos los receptores de acetilcolina en la unión neuromuscular son nicotínicos. Los receptores muscarínicos son receptores acoplados a proteínas G que utilizan un segundo mensajero. Estos receptores son lentos y, por lo tanto, no pueden medir un potencial de placa terminal en miniatura (MEPP). Se localizan en el sistema nervioso parasimpático , como en el nervio vago y el tracto gastrointestinal . Durante el desarrollo fetal, los receptores de acetilcolina se concentran en la membrana postsináptica y toda la superficie del terminal nervioso en el embrión en crecimiento está cubierta incluso antes de que se genere una señal. Los receptores nicotínicos de acetilcolina están compuestos por cinco subunidades formadas por cuatro proteínas diferentes de cuatro genes distintos; por lo tanto, su empaquetamiento y ensamblaje es un proceso muy complejo con muchos factores diferentes. La enzima quinasa específica del músculo (MuSK) inicia procesos de señalización en la célula muscular postsináptica en desarrollo. Estabiliza los cúmulos de receptores de acetilcolina postsinápticos, facilita la transcripción de genes sinápticos por los núcleos de las fibras musculares y desencadena la diferenciación del cono de crecimiento del axón para formar una terminal nerviosa diferenciada. [ 4 ] El sustrato laminina induce una maduración avanzada de los cúmulos de receptores de acetilcolina en las superficies de los miotubos. [ 5 ]

Iniciación

vesículas sinápticas

Todos los neurotransmisores se liberan en la hendidura sináptica mediante exocitosis desde vesículas sinápticas . Existen dos tipos de vesículas de neurotransmisores: vesículas de núcleo denso grandes y vesículas de núcleo transparente pequeñas . Las vesículas de núcleo denso grandes contienen neuropéptidos y neurotransmisores de gran tamaño que se crean en el cuerpo celular de la neurona y luego se transportan mediante transporte axonal rápido hasta el terminal axónico. Las vesículas de núcleo transparente pequeñas transportan neurotransmisores de molécula pequeña que se sintetizan localmente en los terminales presinápticos. Las vesículas de neurotransmisores terminadas se unen a la membrana presináptica. Cuando un potencial de acción se propaga a lo largo del axón de la neurona motora y llega al terminal axónico, provoca una despolarización del terminal axónico y abre los canales de calcio. Esto causa la liberación de los neurotransmisores mediante exocitosis vesicular.

Tras la exocitosis, las vesículas se reciclan mediante un proceso conocido como ciclo de las vesículas sinápticas. Las membranas vesiculares recuperadas pasan por diversos compartimentos intracelulares donde se modifican para formar nuevas vesículas sinápticas. Posteriormente, se almacenan en una reserva hasta que se necesiten de nuevo para el transporte y la liberación de neurotransmisores.

A diferencia del reservorio de reserva, el reservorio de vesículas sinápticas de liberación inmediata está listo para activarse. El agotamiento de vesículas del reservorio de liberación inmediata ocurre durante la estimulación de alta frecuencia y larga duración, y el tamaño del EPP evocado se reduce. Esta depresión neuromuscular se debe a una menor liberación de neurotransmisores durante la estimulación. Para evitar el agotamiento, debe existir un equilibrio entre la reposición y el agotamiento, lo cual puede ocurrir a bajas frecuencias de estimulación, inferiores a 30  Hz. [ 6 ]

Cuando una vesícula libera sus neurotransmisores mediante exocitosis, vacía todo su contenido en la hendidura sináptica. Por lo tanto, se dice que la liberación de neurotransmisores desde las vesículas es cuántica , ya que solo se pueden liberar números enteros de vesículas. En 1970, Bernard Katz, de la Universidad de Londres, ganó el Premio Nobel de Fisiología o Medicina por determinar estadísticamente el tamaño cuántico de las vesículas de acetilcolina mediante el análisis del ruido en la unión neuromuscular. Utilizando un libro sobre estadística mecánica , pudo inferir el tamaño de eventos individuales que ocurrían simultáneamente.

Las vesículas sinápticas de acetilcolina son vesículas sinápticas de núcleo transparente con un diámetro de 30  nm. Cada vesícula de acetilcolina contiene aproximadamente 5000 moléculas de acetilcolina. Las vesículas liberan toda su cantidad de acetilcolina, lo que provoca la aparición de potenciales de placa terminal en miniatura (PPTM) con una amplitud inferior a 1 mV, insuficientes para alcanzar el umbral. [ 7 ]

Potenciales de placa terminal en miniatura (MEPP)

Los potenciales miniatura de la placa terminal son pequeñas despolarizaciones (~0,4 mV) de la terminal postsináptica causadas por la liberación de una sola vesícula en la hendidura sináptica. Las vesículas de neurotransmisores que contienen acetilcolina chocan espontáneamente con la terminal nerviosa y liberan acetilcolina en la unión neuromuscular incluso sin una señal del axón. Estas pequeñas despolarizaciones no son suficientes para alcanzar el umbral y, por lo tanto, no se produce un potencial de acción en la membrana postsináptica. [ 8 ] Durante la experimentación con MEPP, se observó que a menudo ocurrían potenciales de acción espontáneos, llamados espigas de la placa terminal en el músculo estriado normal sin ningún estímulo. Se creía que estas espigas de la placa terminal ocurrían como resultado de una lesión o irritación de las fibras musculares debido a los electrodos . Experimentos recientes han demostrado que estas espigas de la placa terminal son en realidad causadas por husos musculares y tienen dos patrones distintos: pequeños y grandes. Las espigas pequeñas de la placa terminal tienen un inicio negativo sin propagación de señal y las espigas grandes de la placa terminal se asemejan a los potenciales de unidad motora (MUP). Los husos musculares son receptores sensoriales que miden la elongación o el estiramiento muscular y transmiten la información a la médula espinal o al cerebro para la respuesta adecuada. [ 9 ]

Potencial umbral ("Todo o nada")

Cuando un potencial de acción provoca la liberación de numerosas vesículas de acetilcolina, esta se difunde a través de la unión neuromuscular y se une a los receptores nicotínicos regulados por ligando (canales catiónicos no selectivos) en la fibra muscular. Esto permite un mayor flujo de iones sodio y potasio, lo que causa la despolarización del sarcolema (membrana de la célula muscular). La pequeña despolarización asociada a la liberación de acetilcolina de una vesícula sináptica individual se denomina potencial de placa terminal en miniatura (PPT) y tiene una magnitud de aproximadamente +0,4 mV. Los PPT son aditivos, aumentando gradualmente el potencial de placa terminal (PPT) desde aproximadamente -100 mV hasta el potencial umbral de -60 mV, nivel en el que se abren los canales iónicos dependientes de voltaje en la membrana postsináptica, permitiendo un flujo repentino de iones sodio desde la sinapsis y un pico de despolarización pronunciado. Este pico de voltaje de despolarización desencadena un potencial de acción que se propaga a lo largo de la membrana postsináptica, provocando la contracción muscular. Los EPP no son potenciales de acción, pero sí los desencadenan. En una contracción muscular normal, se liberan aproximadamente entre 100 y 200 vesículas de acetilcolina, lo que provoca una despolarización 100 veces mayor que la de un MEPP. Esto causa una despolarización del potencial de membrana de +40 mV (100 x 0,4 mV = 40 mV), desde -100 mV hasta -60 mV, donde alcanza el umbral. [ 7 ]

fases del potencial de acción

Una vez que el potencial de membrana alcanza el umbral, se produce un potencial de acción que provoca un aumento brusco de la polaridad de la membrana. Un potencial de acción consta de cinco fases: umbral, despolarización, pico, repolarización e hiperpolarización.

El umbral se alcanza cuando la suma de los potenciales de membrana enzimáticos (PME) llega a un cierto potencial e induce la apertura de los canales iónicos dependientes de voltaje. La rápida entrada de iones de sodio provoca que el potencial de membrana alcance una carga positiva. Los canales de potasio son más lentos que los de sodio, por lo que, cuando el potencial de membrana comienza a alcanzar su valor máximo, los canales de potasio se abren y provocan una salida de potasio que contrarresta la entrada de sodio. En el pico, la salida de potasio se iguala a la entrada de sodio y la membrana no cambia de polaridad.

Durante la repolarización, los canales de sodio comienzan a inactivarse, lo que provoca una salida neta de iones de potasio. Esto hace que el potencial de membrana descienda hasta su potencial de reposo de -100 mV. La hiperpolarización se produce porque los canales de potasio de acción lenta tardan más en desactivarse, por lo que la membrana sobrepasa el potencial de reposo . Gradualmente, regresa al potencial de reposo y está lista para que se produzca otro potencial de acción.

Durante el potencial de acción previo a la fase de hiperpolarización, la membrana no responde a ningún estímulo. Esta incapacidad para generar otro potencial de acción se conoce como periodo refractario absoluto. Durante el periodo de hiperpolarización, la membrana vuelve a responder a los estímulos, pero requiere una entrada mucho mayor para generar un potencial de acción. Esta fase se conoce como periodo refractario relativo.

Una vez que el potencial de acción ha finalizado en la unión neuromuscular, la acetilcolina utilizada es eliminada de la hendidura sináptica por la enzima acetilcolinesterasa . Varias enfermedades y problemas pueden ser causados ​​por la incapacidad de las enzimas para eliminar los neurotransmisores de la hendidura sináptica, lo que provoca la propagación continua del potencial de acción. [ 10 ]

Aplicaciones clínicas

Paciente con miastenia gravis que muestra el síntoma típico de caída del párpado.

La investigación actual intenta comprender mejor los potenciales de placa terminal y su efecto en la actividad muscular. Muchas enfermedades actuales implican una alteración de la actividad de los potenciales de placa terminal. En pacientes con Alzheimer, el beta amiloide se une a los receptores de acetilcolina e inhibe la unión de la acetilcolina. Esto provoca una menor propagación de la señal y pequeños EPP que no alcanzan el umbral. Al analizar los procesos cerebrales con acetilcolina, los médicos pueden medir la cantidad de beta amiloide presente y utilizarla para evaluar sus efectos en el Alzheimer. [ 11 ] La miastenia gravis es una enfermedad autoinmune en la que el cuerpo produce anticuerpos dirigidos contra el receptor de acetilcolina en la membrana postsináptica de la unión neuromuscular. La fatiga y la debilidad muscular, que empeoran con el uso y mejoran con el reposo, son características distintivas de la enfermedad. Debido a la cantidad limitada de receptores de acetilcolina disponibles para la unión, el tratamiento sintomático consiste en usar un inhibidor de la acetilcolinesterasa para reducir la degradación de la acetilcolina en la unión neuromuscular, de modo que haya suficiente acetilcolina presente para el pequeño número de receptores no bloqueados. Una anomalía congénita causada por una deficiencia en la acetilcolinesterasa (AChE) de la placa terminal podría ser un mecanismo fisiopatológico para la miastenia gravis. En un estudio sobre un paciente con deficiencia de AChE, los médicos observaron que había desarrollado debilidad muscular proximal y troncal severa con temblores en otros músculos. Se encontró que una combinación del temblor y la tasa de bloqueo de los receptores de acetilcolina causaba un potencial de placa terminal reducido similar al que se observa en casos de miastenia gravis. [ 12 ] La investigación de los potenciales de unidad motora (MUP) ha llevado a posibles aplicaciones clínicas en la evaluación de la progresión de enfermedades patológicas a orígenes miogénicos o neurogénicos mediante la medición de la constante de irregularidad relacionada. Los potenciales de unidad motora son las señales eléctricas producidas por las unidades motoras que se pueden caracterizar por amplitud, duración, fase y pico, y el coeficiente de irregularidad (RI) se calcula en función del número de picos y las amplitudes. [ 13 ] El síndrome miasténico de Lambert-Eaton es un trastorno en el que los canales de calcio presinápticos están sujetos a destrucción autoinmune, lo que provoca que se exociten menos vesículas de neurotransmisores. Esto causa potenciales de placa terminal (PPT) más pequeños debido a que se liberan menos vesículas. A menudo, los PPT más pequeños no alcanzan el umbral, lo que causa debilidad y fatiga muscular en los pacientes. Muchos animales utilizan neurotoxinas para defenderse y matar a sus presas. La tetrodotoxina es un veneno que se encuentra en ciertos peces venenosos como el pez globo y el pez ballesta.que bloquea los canales de iones de sodio e impide un potencial de acción en la membrana postsináptica. El tetraetilamonio que se encuentra en los insectos bloquea los canales de potasio. La alfa-neurotoxina que se encuentra en las serpientes se une a los receptores de acetilcolina e impide que la acetilcolina se una. La alfa-latrotoxina que se encuentra en las arañas viuda negra causa una entrada masiva de calcio en el terminal del axón y conduce a una liberación excesiva de neurotransmisores. La toxina botulínica producida por la bacteria Clostridium botulinum es la proteína tóxica más potente. Impide la liberación de acetilcolina en la unión neuromuscular al inhibir el acoplamiento de las vesículas de neurotransmisores.

Véase también

Referencias

  1. Boron, W.; Boulpaep, E. (2012). Fisiología médica . Filadelfia, PA: Saunders, Elsevier inc. pág.  224. ISBN 978-0-8089-2449-4.
  2. Kimura Y; Oda Y; Deguchi T; Higashida H (1992). "Secreción mejorada de acetilcolina en células híbridas de neuroblastoma X glioma NG108-15 transfectadas con CDNA de colina-acetiltransferasa de rata" . FEBS Letters . 314 (3): 409– 412. Bibcode : 1992FEBSL.314..409K . doi : 10.1016/0014-5793(92)81516-O . PMID 1468577. S2CID 4956377 .  
  3. Lin S, Landmann L, Ruegg MA, Brenner HR (2008). "El papel de los factores derivados de los nervios frente a los derivados de los músculos en la formación de la unión neuromuscular en mamíferos" ( PDF ) . Journal of Neuroscience . 28 (13): 3333– 3340. doi : 10.1523/JNEUROSCI.5590-07.2008 . PMC 6670584. PMID 18367600. S2CID 18659773 .   
  4. Cole RN, Reddel SW, Gervasio OL, Phillips WD (2008). "Los anticuerpos de pacientes anti-MuSK alteran la unión neuromuscular del ratón". Annals of Neurology . 63 (6): 782– 789. doi : 10.1002/ana.21371 . PMID 18384168. S2CID 205340971 .  
  5. Teressa G, Prives J (2008). "Análisis del ensamblaje de la membrana postsináptica en células musculares mediante cultivo celular" . Biological Procedures Online . 10 (1): 58– 65. doi : 10.1251/bpo143 . PMC 2683546. PMID 19461953 .  
  6. Van Lunteren E, Moyer M (2005). "Modulación de la tasa bifásica de recuperación del potencial de la placa terminal en el diafragma de rata". Muscle & Nerve . 31 (3): 321– 330. doi : 10.1002/mus.20245 . PMID 15654692 . S2CID 31071429 .  
  7. 1 2 Takeda T, Sakata A, Matsuoka T (1999). "Dimensiones fractales en la aparición de potencial de placa terminal miniatura en una unión neuromuscular de vertebrados". Progress in Neuro-Psychopharmacology & Biological Psychiatry . 23 (6): 1157– 1169. doi : 10.1016/S0278-5846(99)00050-0 . PMID 10621955 . S2CID 30988488 .  
  8. Sellin LC, Molgo J, Thornquist K, Hansson B, Thesleff S (1996). "Sobre el posible origen de los potenciales de placa terminal miniatura gigantes o de ascenso lento en la unión neuromuscular". Pflügers Archiv: European Journal of Physiology . 431 (3): 325– 334. doi : 10.1007/BF02207269 . PMID 8584425 . S2CID 8748384 .  
  9. Partanen J (1999). "Puntos de placa terminal en el electromiograma humano. Revisión de la teoría fusimotora". Journal of Physiology-París . 93 ( 1–2 ): 155–166 . doi : 10.1016/S0928-4257(99) 80146-6 . PMID 10084719. S2CID 4961877 .  
  10. Purves D, Augustine G, et al. "Señales eléctricas de las células nerviosas". Neurociencia . Sinauer Associates, Inc: Sunderland, Massachusetts, 2008. 25-39.
  11. Prives J, Profesor de Farmacología, Universidad Estatal de Nueva York en Stony Brook. Entrevistado por Pierre Watson. 18 de noviembre de 2008.
  12. Kohara N, Lin TS, Fukudome T, Kimura J, Sakamoto T, et al. (2002). "Fisiopatología de la debilidad en un paciente con deficiencia congénita de acetilcolinesterasa de la placa terminal". Muscle & Nerve . 25 (4): 585– 592. doi : 10.1002/mus.10073 . PMID 11932977 . S2CID 45891411 .   
  13. Zalewska E, Hausmanowa-Petrusewicz I , Stahlberg E (2004). "Estudios de modelado sobre potenciales de unidades motoras irregulares". Neurofisiología clínica . 115 (3): 543– 556. doi : 10.1016/j.clinph.2003.10.031 . PMID 15036049. S2CID 43828995 .  
  • Musculatura
  • Músculo y sistema neuromuscular