Articulo de referencia

Ventana de infrarrojo cercano en tejido biológico

La ventana del infrarrojo cercano ( NIR ) (también conocida como ventana óptica o ventana terapéutica ) define el rango de longitudes de onda de 650 a 1350 nanómetros (nm) donde...

La ventana del infrarrojo cercano ( NIR ) (también conocida como ventana óptica o ventana terapéutica ) define el rango de longitudes de onda de 650 a 1350 nanómetros (nm) donde la luz tiene su máxima profundidad de penetración en el tejido . [ 1 ] Dentro de la ventana NIR, la dispersión es la interacción luz-tejido dominante, y por lo tanto la luz propagada se difunde rápidamente. Dado que la dispersión aumenta la distancia recorrida por los fotones dentro del tejido, la probabilidad de absorción de fotones también aumenta. La ventana NIR está limitada principalmente por la absorción de luz de la sangre en longitudes de onda cortas y del agua en longitudes de onda largas. La técnica que utiliza esta ventana se llama NIRS . Las técnicas de imágenes médicas, como la cirugía guiada por imágenes de fluorescencia, a menudo utilizan la ventana NIR para detectar estructuras profundas.

Propiedades de absorción de los componentes tisulares

El coeficiente de absorción (μa{\displaystyle \mu _{a}}) se define como la probabilidad de absorción de fotones en el tejido por unidad de longitud de trayectoria. [ 2 ] Los diferentes componentes del tejido tienen diferentesμa{\displaystyle \mu _{a}}valores. Además,μa{\displaystyle \mu _{a}}es una función de la longitud de onda. A continuación se discuten las propiedades de absorción de los cromóforos más importantes en el tejido. El coeficiente de extinción molar (ε{\displaystyle \varepsilon \,}) es otro parámetro que se utiliza para describir la absorción de fotones en el tejido. Al multiplicarε{\displaystyle \varepsilon \,}mediante la concentración molar y mediante ln(10), se puede convertirε{\displaystyle \varepsilon \,}aμa{\displaystyle \mu _{a}\,}.

Figura 1: Los coeficientes de extinción molar de HbO2 y Hb.
Figura 1: Coeficientes de extinción molar de HbO2 y Hb. [ 3 ]

Sangre

La sangre consta de dos tipos diferentes de hemoglobina : oxihemoglobina (HbO2{\displaystyle HbO_{2}}) está unido al oxígeno, mientras que la desoxihemoglobina (Hb{\displaystyle Hb}) no está unido al oxígeno. Estos dos tipos diferentes de hemoglobina exhiben diferentes espectros de absorción que normalmente se representan en términos de coeficientes de extinción molar, como se muestra en la Figura 1. El coeficiente de extinción molar de Hb tiene su pico de absorción más alto a 420  nm y un segundo pico a 580  nm. Su espectro luego disminuye gradualmente a medida que aumenta la longitud de onda de la luz. Por otro lado,HbO2{\displaystyle HbO2}muestra su pico de absorción más alto a 410  nm, y dos picos secundarios a 550  nm y 600  nm. A medida que las longitudes de onda de la luz pasan los 600  nm,HbO2{\displaystyle HbO_{2}}La absorción decae mucho más rápido que la absorción de Hb. Los puntos donde los espectros del coeficiente de extinción molar deHb{\displaystyle Hb}yHbO2{\displaystyle HbO_{2}}Los puntos que se intersecan se denominan puntos isobésticos .

Utilizando dos longitudes de onda diferentes, es posible calcular las concentraciones de oxihemoglobina (doHbO2{\displaystyle C_{HbO2}}) y desoxihemoglobina (doHb{\displaystyle C_{Hb}}) como se muestra en las siguientes ecuaciones:

μa(λ1)=ln(10)εHbO2(λ1)doHbO2+ln(10)εHb(λ1)doHb{\displaystyle \mu _{a}(\lambda _{1})=\ln(10)\varepsilon _{HbO2}(\lambda _{1})C_{HbO2}+\ln(10)\varepsilon _{Hb}(\lambda _{1})C_{Hb}\,}
μa(λ2)=ln(10)εHbO2(λ2)doHbO2+ln(10)εHb(λ2)doHb{\displaystyle \mu _{a}(\lambda _{2})=\ln(10)\varepsilon _{HbO2}(\lambda _{2})C_{HbO2}+\ln(10)\varepsilon _{Hb}(\lambda _{2})C_{Hb}\,}
Figura 2: El espectro de absorción del agua.
Figura 2: El espectro de absorción del agua. [ 4 ]

Aquí,λ1{\displaystyle \lambda _{1}}yλ2{\displaystyle \lambda _{2}}son las dos longitudes de onda;εHbO2{\displaystyle \varepsilon _{HbO2}}yεHb{\displaystyle \varepsilon _ {Hb}}son los coeficientes de extinción molar deHbO2{\displaystyle HbO_{2}}yHb{\displaystyle Hb}, respectivamente;doHbO2{\displaystyle C_{HbO2}}ydoHb{\displaystyle C_{Hb}}son las concentraciones molares deHbO2{\displaystyle HbO_{2}}yHb{\displaystyle Hb}en el tejido, respectivamente. Saturación de oxígeno (SO2{\displaystyle SO_{2}}) se puede calcular entonces como

SO2=doHbO2doHb+doHbO2{\displaystyle SO_{2}={\frac {C_{HbO2}}{C_{Hb}+C_{HbO2}}}}

Agua

Aunque el agua es casi transparente en el rango de la luz visible, absorbe la luz en la región del infrarrojo cercano. El agua es un componente fundamental, ya que su concentración es alta en los tejidos humanos. El espectro de absorción del agua en el rango de 250 a 1000  nm se muestra en la Figura 2. Si bien la absorción es relativamente baja en este rango espectral, contribuye a la atenuación general de la luz en los tejidos.

Figura 3: Figura 3: Los coeficientes de extinción molar de la eumelanina y la feomelanina.
Figura 3: Coeficientes de extinción molar de la eumelanina y la feomelanina. [ 5 ]

Otros componentes tisulares que contribuyen de forma menos significativa al espectro de absorción total del tejido son la melanina y la grasa.

Figura 4: Figura 4: El espectro del coeficiente de absorción de la grasa.
Figura 4: Espectro del coeficiente de absorción de la grasa. [ 6 ]

Melanina

La melanina es un cromóforo presente en la epidermis humana, responsable de la protección contra la radiación UV dañina. Cuando los melanocitos son estimulados por la radiación solar, se produce melanina. [ 7 ] La ​​melanina es uno de los principales absorbentes de luz en algunos tejidos biológicos (aunque su contribución es menor que la de otros componentes). Existen dos tipos de melanina: la eumelanina, de color negro-marrón, y la feomelanina, de color rojo-amarillo. [ 8 ] Los espectros del coeficiente de extinción molar correspondientes a ambos tipos se muestran en la Figura 3.

Gordo

La grasa es uno de los componentes principales de los tejidos, pudiendo constituir entre el 10 % y el 40 % de los mismos. Si bien no se dispone de muchos espectros de grasa de mamíferos, la Figura 4 muestra un ejemplo extraído de la grasa de cerdo. [ 9 ]

Figura 5: Figura 5: El espectro del coeficiente de absorción de la grasa.
Figura 5: Espectro del coeficiente de dispersión del tejido biológico. [ 10 ]

Propiedades de dispersión de los componentes tisulares

La dispersión óptica se produce debido a las diferencias en el índice de refracción de los distintos componentes tisulares, desde las membranas celulares hasta las células enteras. Los núcleos celulares y las mitocondrias son los principales dispersores. [ 11 ] Sus dimensiones oscilan entre 100  nm y 6 μm, por lo que se encuentran dentro de la ventana del infrarrojo cercano (NIR). La mayoría de estos orgánulos se encuentran en el régimen de dispersión de Mie y presentan una dispersión frontal altamente anisotrópica. [ 12 ]

La dispersión de la luz en el tejido biológico se denota mediante el coeficiente de dispersión (μs{\displaystyle \mu _{s}}), que se define como la probabilidad de dispersión de fotones en el tejido por unidad de longitud de trayectoria. [ 13 ] La figura 5 muestra una gráfica del espectro de dispersión. [ 14 ]

Cuando se aplica presión al tejido, el coeficiente de atenuación (principalmente el coeficiente de dispersión) se modifica debido a cambios en las discrepancias del índice de refracción [ 15 ].

Coeficiente de atenuación efectivo

La atenuación de la luz en el tejido biológico profundo depende del coeficiente de atenuación efectivo (μmiFF{\displaystyle \mu _{eff}}), que se define como

μefectivo=3μa(μa+μs){\displaystyle \mu _{\text{eff}}={\sqrt {3\mu _{a}(\mu _{a}+\mu '_{s})}}}

dóndeμs{\displaystyle \mu '_{s}}es el coeficiente de dispersión de transporte definido como

μs=μs(1gramo){\displaystyle \mu '_{\text{s}}=\mu _{s}(1-g)\,}

dóndegramo{\displaystyle g}es la anisotropía del tejido biológico, que tiene un valor representativo de 0,9. La Figura 5 muestra una gráfica del espectro del coeficiente de dispersión de transporte en el tejido mamario, que tiene una dependencia de la longitud de onda deλ0,7{\displaystyle \lambda \,^{-0.7}}. [ 16 ] El coeficiente de atenuación efectivo es el factor dominante para determinar la atenuación de la luz en profundidadd{\displaystyle d}≫ 1/μefectivo{\displaystyle \mu _{\text{eff}}}.

Estimación

La ventana NIR se puede calcular a partir del espectro del coeficiente de absorción o del espectro del coeficiente de atenuación efectivo. Un posible criterio para seleccionar la ventana NIR viene dado por el ancho a media altura (FWHM) del inverso de estos espectros, como se muestra en la Figura 7.

Además de la concentración total de hemoglobina, la saturación de oxígeno determinará la concentración de oxihemoglobina y desoxihemoglobina en el tejido y, por lo tanto, el espectro de absorción total. Según el tipo de tejido, podemos considerar diferentes situaciones. A continuación, se asume una concentración total de hemoglobina de 2,3 mM.

Figura 3: El espectro de absorción de las arterias
Figura 6 (a): Espectros para arterias (SaO 2 ≈ 98%).

Coeficiente de absorción: λ mín = 686 nm; Ventana NIR = (634–756) nm.

Coeficiente de atenuación efectivo: λ mín = 690 nm; ventana NIR = (618–926) nm.
Figura 4: El espectro de absorción de las venas
Figura 6 (b): Espectros para venas (SvO 2 ≈ 60%).

Coeficiente de absorción: λ mín = 730 nm; Ventana NIR = (664–932) nm.

Coeficiente de atenuación efectivo: λ mín = 730 nm; ventana NIR = (630–1328) nm.
Figura 5. El espectro de absorción del tejido mamario.
Figura 6 (c): Espectros para tejido mamario (StO 2 ≈ 70%).

Coeficiente de absorción: λ mín = 730 nm; Ventana NIR = (656–916) nm.

Coeficiente de atenuación efectivo: λ mín = 730 nm; ventana NIR = (626–1316) nm.

Espectro de absorción para arterias

En este casoSaO2{\displaystyle SaO_{2}\,}≈ 98% (saturación arterial de oxígeno). Entonces, la oxihemoglobina será dominante en los espectros de absorción total (negro) y del coeficiente de atenuación efectiva (magenta), como se muestra en la Figura 6 (a). 'cita: Filtro de difusión anisotrópica para la extracción de características de las venas dorsales de la mano – Sarah Hachemi Benziane, Abdelkader Benyettou'

Espectro de absorción para venas

En este casoSvO2{\displaystyle SvO_{2}\,}≈ 60% (saturación de oxígeno venoso). Entonces, la oxihemoglobina y la desoxihemoglobina tendrán contribuciones similares a los espectros del coeficiente de absorción total (negro) y de atenuación efectiva (magenta), como se muestra en la Figura 6 (b).

Figura 5: Figura 5: El espectro del coeficiente de absorción de la grasa.
Figura 7:  Profundidad de penetración efectiva en el tejido mamario (StO2 ≈ 70%). Coeficiente de atenuación efectivo: λ mín = 730 nm; ventana NIR = (626–1316) nm.

Espectro de absorción del tejido mamario

Para definirStO2{\displaystyle StO_{2}\,}(saturación de oxígeno tisular) (oTSI{\displaystyle TSI\,}(índice de saturación tisular)), es necesario definir una distribución de arterias y venas en el tejido. Se puede adoptar una relación de volumen sanguíneo arterial-venoso del 20 %/80 %. [ 17 ] Por lo tanto, la saturación de oxígeno tisular se puede definir comoStO2{\displaystyle StO_{2}\,}= 0,2 xSaO2{\displaystyle SaO_{2}\,}+ 0,8 xSvO2{\displaystyle SvO_{2}\,}≈ 70%.

En la figura 6 (c) se muestran los espectros de absorción total (en negro) y de atenuación efectiva (en magenta) del tejido mamario. Además, en la figura 7 se representa la profundidad de penetración efectiva.

Véase también

Referencias

  1. Smith, Andrew M.; Mancini, Michael C.; Nie, Shuming (2009). "Bioimágenes: una segunda ventana para imágenes in vivo" . Nature Nanotechnology . 4 (11): 710– 711. Bibcode : 2009NatNa...4..710S . doi : 10.1038/nnano.2009.326 . ISSN 1748-3387 . PMC 2862008. PMID 19898521 .   
  2. LV. Wang y HI. Wu, Óptica biomédica. Wiley. ISBN 978-0-471-74304-0, 2007.
  3. Coeficientes de extinción molar de la oxihemoglobina y la desoxihemoglobina recopilados por Scott Prahl. URL: http://omlc.ogi.edu/spectra/hemoglobin .
  4. GM Hale y MR Querry, Constantes ópticas del agua en la región de longitud de onda de 200 nm a 200 μm, Appl. Opt., 12, 555–563, 1973.
  5. Coeficiente de extinción de la melanina por Steven Jacques. URL: http://omlc.ogi.edu/spectra/melanin/extcoeff.html .
  6. ^ RLP van Veen, HJCM Sterenborg, A. Pifferi, A. Torricelli y R. Cubeddu, Reunión temática anual BIOMED de la OSA, 2004.
  7. T. Vo-Dinh, Manual de fotónica biomédica. Taylor & Francis, Inc. ISBN 0-8493-1116-0, 2002.
  8. ^ George Zonios y Aikaterini Dimou, Ioannis Bassukas, Dimitrios Galaris y Argyrios Ysolakidis y Efthimios Kaxiras , J. Biomed. Opt., Vol.13, 014017, 2008.
  9. ^ RLP van Veen, HJCM Sterenborg, A. Pifferi, A. Torricelli y R. Cubeddu, Reunión temática anual BIOMED de la OSA, 2004.
  10. S. Jacques, C. Newman, D. Levy y A. von Eschenbach. Centro Oncológico MD Anderson de la Universidad de Texas, 1987.
  11. LV. Wang y HI. Wu, Óptica biomédica. Wiley. ISBN 978-0-471-74304-0, 2007.
  12. T. Vo-Dinh, Manual de fotónica biomédica. Taylor & Francis, Inc. ISBN 0-8493-1116-0, 2002.
  13. LV. Wang y HI. Wu, Óptica biomédica. Wiley. ISBN 978-0-471-74304-0, 2007.
  14. S. Jacques, C. Newman, D. Levy y A. von Eschenbach. Centro Oncológico MD Anderson de la Universidad de Texas, 1987.
  15. RP de Souza Bachour, CT Dominguez y GC Cardoso, 2023, Coeficiente de atenuación óptica de la piel bajo baja compresión, JOSA A, vol. 40, n.º 5, págs. 955-960, 2023.
  16. ^ S. Srinivasan, B. Pogue, S. Jiang, H. Dehghani, C. Kogel, S. Soho, J. Gibson, T. Tosteson, S. Poplack y K. Paulsen, KD 2003, Proc Natl Acad. Ciencia. Estados Unidos 100 12349 54.
  17. S. Nioka, S. Wen, J. Zhang, J. Du, X. Intes, Z. Zhao y B. Chance, Estudio de simulación de la hemodinámica del tejido mamario durante la perturbación de la presión. Oxygen Transport to Tissue XXVI 566, 17–22, 2006.