Articulo de referencia

Secuenciación en tiempo real de molécula única

La secuenciación en tiempo real de molécula única ( SMRT ) es un método paralelo de secuenciación de ADN de molécula única . La secuenciación en tiempo real de molécula única ut...

La secuenciación en tiempo real de molécula única ( SMRT ) es un método paralelo de secuenciación de ADN de molécula única . La secuenciación en tiempo real de molécula única utiliza una guía de onda de modo cero (ZMW). [ 1 ] Una sola enzima ADN polimerasa se fija en la parte inferior de una ZMW con una sola molécula de ADN como plantilla. La ZMW es una estructura que crea un volumen de observación iluminado lo suficientemente pequeño como para observar la incorporación de un solo nucleótido de ADN por la ADN polimerasa . Cada una de las cuatro bases del ADN está unida a uno de cuatro colorantes fluorescentes diferentes. Cuando la ADN polimerasa incorpora un nucleótido, la etiqueta fluorescente se escinde y se difunde fuera del área de observación de la ZMW, donde su fluorescencia ya no es observable. Un detector detecta la señal fluorescente de la incorporación del nucleótido, y la base se identifica según la fluorescencia correspondiente del colorante. [ 2 ]

Tecnología

La secuenciación del ADN se realiza en un chip que contiene múltiples ZMW. Dentro de cada ZMW, una única ADN polimerasa activa, con una sola molécula de ADN monocatenario como plantilla, se inmoviliza en la parte inferior. A través de esta capa, la luz penetra y crea una cámara de visualización que permite monitorizar la actividad de la ADN polimerasa a nivel molecular. La señal de un nucleótido fosforilado incorporado por la ADN polimerasa se detecta a medida que avanza la síntesis de ADN, lo que da como resultado la secuenciación del ADN en tiempo real.

Preparación de la plantilla

Para preparar la biblioteca, los fragmentos de ADN se colocan en forma circular utilizando ligaciones de adaptadores en horquilla. [ 3 ]

Nucleótido fosforilado

Para cada una de las bases nucleotídicas, existe una molécula de colorante fluorescente correspondiente que permite al detector identificar la base que la ADN polimerasa incorpora durante la síntesis de ADN . La molécula de colorante fluorescente está unida a la cadena de fosfato del nucleótido. Cuando la ADN polimerasa incorpora el nucleótido, el colorante fluorescente se separa de la cadena de fosfato como parte de un proceso natural de síntesis de ADN, durante el cual se crea un enlace fosfodiéster para alargar la cadena de ADN. La molécula de colorante fluorescente separada se difunde fuera del volumen de detección, por lo que la señal fluorescente deja de detectarse. [ 4 ]

Guía de ondas de modo cero

La guía de onda de modo cero (ZMW) es una estructura de confinamiento nanofotónico que consiste en un orificio circular en una película de revestimiento de aluminio depositada sobre un sustrato de sílice transparente. [ 5 ]

Los orificios ZMW tienen  un diámetro de aproximadamente 70 nm y  una profundidad de aproximadamente 100 nm. Debido al comportamiento de la luz al viajar a través de una pequeña abertura, el campo óptico decae exponencialmente dentro de la cámara. [ 6 ] [ 7 ]

El volumen de observación dentro de un ZMW iluminado es de aproximadamente 20 zeptolitros (20 × 10⁻²¹ litros ). Este volumen tan reducido elimina la fluorescencia de fondo de los nucleótidos fluorescentes libres no incorporados presentes en la solución. Dentro de este volumen, se puede detectar fácilmente la actividad de la ADN polimerasa que incorpora un solo nucleótido, donde cada nucleótido tiene un color distinto. [ 4 ] [ 8 ]

Rendimiento de secuenciación

El rendimiento de la secuenciación se puede medir en términos de longitud de lectura, precisión y rendimiento total por experimento. Los sistemas de secuenciación PacBio que utilizan ZMW tienen la ventaja de ofrecer lecturas largas, aunque las tasas de error son del orden del 5-15% y el rendimiento de muestras es menor que el de las plataformas de secuenciación Illumina . [ 9 ]

El 19 de septiembre de 2018, Pacific Biosciences [PacBio] lanzó la química Sequel 6.0, sincronizando la versión química con la versión del software. Se compara el rendimiento de bibliotecas de inserción grandes con ADN de alto peso molecular frente a bibliotecas de inserción más cortas de menos de ~15 000 bases de longitud. Para plantillas más grandes, la longitud media de lectura es de hasta 30 000 bases. Para bibliotecas de inserción más corta, la longitud media de lectura es de hasta 100 000 bases al leer la misma molécula en círculo varias veces. Estas últimas bibliotecas de inserción más corta producen hasta 50 000 millones de bases a partir de una sola celda SMRT. [ 10 ]

Historia

Pacific Biosciences (PacBio) comercializó la secuenciación SMRT en 2011, [ 11 ] después de lanzar una versión beta de su instrumento RS a finales de 2010. [ 12 ]

RS y RS II

Celda SMRT para un secuenciador RS o RS II

En el momento de su comercialización, la longitud de lectura presentaba una distribución normal con una media de aproximadamente 1100 bases. Un nuevo kit químico lanzado a principios de 2012 aumentó la longitud de lectura del secuenciador; un cliente inicial de dicho kit mencionó longitudes de lectura medias de entre 2500 y 2900 bases. [ 13 ]

El kit de química XL lanzado a finales de 2012 aumentó la longitud de lectura promedio a más de 4300 bases. [ 14 ] [ 15 ]

El 21 de agosto de 2013, PacBio lanzó un nuevo kit de unión de ADN polimerasa P4. Esta enzima P4 tiene longitudes de lectura promedio de más de 4300 bases cuando se combina con la química de secuenciación C2 y más de 5000 bases cuando se combina con la química XL. [ 16 ] La precisión de la enzima es similar a la de C2, alcanzando QV50 entre 30X y 40X de cobertura. Los atributos resultantes de P4 proporcionaron ensamblajes de mayor calidad utilizando menos celdas SMRT y con una llamada de variantes mejorada. [ 16 ] Cuando se combina con la selección del tamaño del ADN de entrada (utilizando un instrumento de electroforesis como BluePippin) produce una longitud de lectura promedio de más de 7 kilobases. [ 17 ]

El 3 de octubre de 2013, PacBio lanzó una nueva combinación de reactivos para PacBio RS II, la ADN polimerasa P5 con química C3 (P5-C3). Juntos, extienden la longitud de lectura de secuenciación a un promedio de aproximadamente 8500 bases, con lecturas más largas que superan las 30 000 bases. [ 18 ] El rendimiento por célula SMRT es de alrededor de 500 millones de bases, demostrado por los resultados de secuenciación de la línea celular CHM1. [ 19 ]

El 15 de octubre de 2014, PacBio anunció el lanzamiento de la nueva química P6-C4 para el sistema RS II, que representa la sexta generación de polimerasa y la cuarta generación de química de la compañía, extendiendo aún más la longitud promedio de lectura a 10 000 - 15 000 bases, con lecturas más largas que superan las 40 000 bases. El rendimiento con la nueva química se estimó entre 500 millones y 1000 millones de bases por celda SMRT, dependiendo de la muestra que se esté secuenciando. [ 20 ] [ 21 ] Esta fue la versión final de la química lanzada para el instrumento RS.

El rendimiento por experimento de esta tecnología está influenciado tanto por la longitud de lectura de las moléculas de ADN secuenciadas como por la multiplexación total de una celda SMRT. El prototipo de la celda SMRT contenía aproximadamente 3000 orificios ZMW que permitían la secuenciación paralela de ADN. En su comercialización, cada celda SMRT se diseñó con 150 000 orificios ZMW que se leían en dos conjuntos de 75 000. [ 22 ] En abril de 2013, la empresa lanzó una nueva versión del secuenciador llamada "PacBio RS II" que utiliza los 150 000 orificios ZMW simultáneamente, duplicando el rendimiento por experimento. [ 23 ] [ 24 ] El modo de mayor rendimiento en noviembre de 2013 utilizó la unión P5, la química C3, la selección de tamaño BluePippin y un PacBio RS II que oficialmente produjo 350 millones de bases por SMRT Cell, aunque un conjunto de datos humanos de novo publicado con la química promedió 500 millones de bases por SMRT Cell. El rendimiento varía según el tipo de muestra que se esté secuenciando. [ 25 ] Con la introducción de la química P6-C4, el rendimiento típico por SMRT Cell aumentó de 500 millones de bases a 1000 millones de bases.

Continuación

Célula SMRT para un secuenciador Sequel

En septiembre de 2015, la empresa anunció el lanzamiento de un nuevo instrumento de secuenciación, el Sistema Sequel, que aumentó la capacidad a 1 millón de agujeros ZMW. [ 26 ] [ 27 ]

Con el instrumento Sequel, las longitudes de lectura iniciales eran comparables a las del RS, pero las versiones químicas posteriores aumentaron la longitud de lectura.

El 23 de enero de 2017 se lanzó la química V2. Esta aumentó la longitud promedio de lectura a entre 10.000 y 18.000 bases. [ 28 ]

El 8 de marzo de 2018 se lanzó la versión 2.1 de la química. Esta versión aumentó la longitud media de lectura a 20 000 bases y la mitad de todas las lecturas superaron las 30 000 bases. El rendimiento por celda SMRT aumentó a 10 000 o 20 000 millones de bases, respectivamente, para bibliotecas con inserciones grandes o bibliotecas con inserciones más cortas (por ejemplo, amplicones ). [ 29 ]

Punta de pipeta en una celda SMRT de 8M

El 19 de septiembre de 2018, la compañía anunció la química Sequel 6.0 con longitudes de lectura promedio aumentadas a 100 000 bases para bibliotecas de inserción más cortas y 30 000 para bibliotecas de inserción más largas. El rendimiento de SMRT Cell aumentó hasta 50 000 millones de bases para bibliotecas de inserción más cortas. [ 10 ]

Chip de 8M

En abril de 2019, la empresa lanzó una nueva celda SMRT con ocho millones de ZMW, [ 30 ] aumentando el rendimiento esperado por celda SMRT en un factor de ocho. [ 31 ] Los clientes de acceso anticipado en marzo de 2019 informaron un rendimiento sobre 58 celdas ejecutadas por el cliente de 250 GB de rendimiento bruto por celda con plantillas de aproximadamente 15 kb de longitud, y un rendimiento de 67,4 GB por celda con plantillas en moléculas de mayor peso. [ 32 ] El rendimiento del sistema ahora se informa en lecturas largas continuas de alto peso molecular o en lecturas HiFi pre-corregidas (también conocidas como secuencia de consenso circular (CCS)). Para lecturas de alto peso molecular, aproximadamente la mitad de todas las lecturas son más largas que 50 kb de longitud.

El rendimiento HiFi incluye bases corregidas con una calidad superior a la puntuación Phred Q20, mediante pasadas repetidas del amplificador para su corrección. Esto permite procesar amplificadores de hasta 20 kb de longitud.

Solicitud

La secuenciación en tiempo real de moléculas individuales podría ser aplicable a una amplia gama de investigaciones genómicas.

Para la secuenciación de genomas de novo , las longitudes de lectura de la secuenciación en tiempo real de molécula única son comparables o mayores que las del método de secuenciación de Sanger basado en la terminación de cadena de dideoxinucleótidos . La mayor longitud de lectura permite la secuenciación de genomas de novo y ensamblajes de genomas más fáciles. [ 2 ] [ 33 ] [ 34 ] Los científicos también están utilizando la secuenciación en tiempo real de molécula única en ensamblajes híbridos para genomas de novo para combinar datos de secuencia de lectura corta con datos de secuencia de lectura larga. [ 35 ] [ 36 ] En 2012, se publicaron varias publicaciones revisadas por pares que demostraban la finalización automatizada de genomas bacterianos, [ 37 ] [ 38 ] incluyendo un artículo que actualizó el ensamblador Celera con una canalización para la finalización del genoma utilizando lecturas de secuenciación SMRT largas. [ 39 ] En 2013, los científicos estimaron que la secuenciación de lectura larga podría utilizarse para ensamblar y finalizar completamente la mayoría de los genomas bacterianos y arqueales. [ 40 ]

La misma molécula de ADN puede ser resecuenciada de forma independiente mediante la creación de una plantilla de ADN circular y el uso de una enzima de desplazamiento de cadena que separa la cadena de ADN recién sintetizada de la plantilla. [ 41 ] En agosto de 2012, científicos del Broad Institute publicaron una evaluación de la secuenciación SMRT para la detección de SNP. [ 42 ]

La dinámica de la polimerasa puede indicar si una base está metilada . [ 43 ] Los científicos demostraron el uso de la secuenciación en tiempo real de molécula única para detectar la metilación y otras modificaciones de bases. [ 44 ] [ 45 ] [ 46 ] En 2012, un equipo de científicos utilizó la secuenciación SMRT para generar los metilomas completos de seis bacterias. [ 47 ] En noviembre de 2012, los científicos publicaron un informe sobre la metilación en todo el genoma de una cepa de E. coli causante de un brote. [ 48 ]

Las lecturas largas permiten secuenciar isoformas génicas completas, incluyendo los extremos 5' y 3'. Este tipo de secuenciación es útil para capturar isoformas y variantes de empalme. [ 49 ] [ 50 ]

La secuenciación SMRT tiene diversas aplicaciones en la investigación de genética médica reproductiva al estudiar familias con sospecha de mosaicismo gonadal parental. Las lecturas largas permiten la determinación de haplotipos en pacientes para investigar el origen parental de las mutaciones. La secuenciación profunda permite determinar las frecuencias alélicas en los espermatozoides, lo cual es relevante para estimar el riesgo de recurrencia en la descendencia afectada. [ 51 ] [ 52 ]

Referencias

  1. Levene MJ, Korlach J, Turner SW, et  al. (2003). "Guías de onda de modo cero para el análisis de moléculas individuales a altas concentraciones". Science . 299 (5607): 682– 6. Bibcode : 2003Sci...299..682L . doi : 10.1126/science.1079700 . PMID 12560545 . S2CID 6060239 .  
  2. 1 2 Eid J, Fehr A, Gray J, et al. (2009). "Secuenciación de ADN en tiempo real a partir de moléculas de polimerasa individuales". Science . 323 (5910): 133– 8. Bibcode : 2009Sci...323..133E . doi : 10.1126/science.1162986 . PMID 19023044 . S2CID 54488479 .   
  3. Friedmann, Theodore (2012). Avances en genética (en neerlandés). Oxford: Academic. ISBN 978-0-12-394395-8OCLC 813987819 .​ 
  4. 1 2 "Pacific Biosciences desarrolla tecnología transformadora de secuenciación de ADN" (PDF) . Documento informativo sobre tecnología de Pacific Biosciences . 2008. Archivado del original (PDF) el 4 de noviembre de 2021. Consultado el 6 de febrero de 2020 .
  5. Korlach J, Marks PJ, Cicero RL, et al. (2008). "Pasivación selectiva de aluminio para la inmovilización dirigida de moléculas individuales de ADN polimerasa en nanoestructuras de guía de ondas de modo cero" . PNAS . 105 ( 4): 1176–81 . Bibcode : 2008PNAS..105.1176K . doi : 10.1073/pnas.0710982105 . PMC 2234111. PMID 18216253 .   
  6. Foquet M, Samiee KT, Kong X, et al. (2008). "Fabricación mejorada de guías de onda de modo cero para la detección de moléculas individuales". J. Appl. Phys. 103 (3): 034301–034301–9. Bibcode : 2008JAP...103c4301F . doi : 10.1063/1.2831366 . S2CID 38892226 .  
  7. Zhu, Paul; Craighead, Harold G. (2012-06-09). "Guías de onda de modo cero para el análisis de moléculas individuales". Annual Review of Biophysics . 41 (1). Annual Reviews: 269– 293. doi : 10.1146/annurev-biophys-050511-102338 . ISSN 1936-122X . PMID 22577821 .  
  8. Baibakov, Mikhail; Barulin, Aleksandr; Roy, Prithu; Claude, Jean-Benoît; Patra, Satyajit; Wenger, Jérôme (1999-02-22). "Las guías de onda de modo cero pueden mejorarse: mejora de la fluorescencia con nanoaperturas rectangulares de aluminio desde el visible hasta el ultravioleta profundo" . Nanoscale Advances . 2 (9): 4153– 4160. doi : 10.1039/D0NA00366B . PMC 9417158. PMID 36132755 .  
  9. Pollock, Jolinda; Glendinning, Laura; Wisedchanwet, Trong; Watson, Mick (2018). "La locura del microbioma: Intentando encontrar la "mejor práctica" consensuada para los estudios del microbioma 16S" . Microbiología aplicada y ambiental . 84 (7): e02627-17. Bibcode : 2018ApEnM..84E2627P . doi : 10.1128/AEM.02627-17 . PMC 5861821. PMID 29427429 .  
  10. 1 2 "Publicación de PacBio" . Twitter . 19 de septiembre de 2018.
  11. Karow J (3 de mayo de 2011). "PacBio envía los dos primeros sistemas comerciales; la cartera de pedidos crece a 44" . GenomeWeb .
  12. Karow J (7 de diciembre de 2010). "PacBio revela las especificaciones del sistema beta para RS; dice que el lanzamiento comercial está en marcha para la primera mitad de 2011" . GenomeWeb .
  13. Karow J (10 de enero de 2012). "Después de un año de pruebas, dos de los primeros clientes de PacBio esperan un uso más rutinario del secuenciador RS en 2012" . GenomeWeb .
  14. Heger M (13 de noviembre de 2012). "La química XL de PacBio aumenta la longitud de lectura y el rendimiento; CSHL prueba la tecnología en el genoma del arroz" . GenomeWeb .
  15. Heger M (5 de marzo de 2013). "Usuarios de PacBio informan sobre avances en lecturas largas para el ensamblaje del genoma vegetal y regiones complicadas del genoma humano" . GenomeWeb .
  16. 1 2 "La nueva ADN polimerasa P4 produce ensamblajes de mayor calidad utilizando menos células SMRT" . Blog de PacBio . 21 de agosto de 2013.
  17. lexnederbragt (19 de junio de 2013). "Anhelo por las lecturas más largas: PacBio y BluePippin" . Entre líneas de código .
  18. "La nueva química de PacBio RS II proporciona longitudes de lectura promedio de 8,5 kb para estudios genómicos complejos" . Blog de PacBio . 3 de octubre de 2013.
  19. Chaisson MJ, Huddleston J, Dennis MY, et al. (2014). "Resolviendo la complejidad del genoma humano mediante secuenciación de molécula única" . Nature . 517 ( 7536): 608–11 . Bibcode : 2015Natur.517..608C . doi : 10.1038/nature13907 . PMC 4317254. PMID 25383537 .   
  20. "Pacific Biosciences lanza una nueva tecnología de secuenciación de ADN para mejorar la longitud y la precisión de las lecturas en el estudio de genomas humanos y otros genomas complejos" . Pacific Biosciences (Comunicado de prensa). 15 de octubre de 2014.
  21. "La nueva química aumenta la longitud media de lectura a 10 kb – 15 kb para PacBio RS II" . Blog de PacBio . 15 de octubre de 2014.
  22. "Células SMRT, kits de reactivos de secuenciación y accesorios para PacBio RS II" . Pacific Biosciences . 2020. Archivado del original el 21 de abril de 2013. Consultado el 28 de abril de 2012 .
  23. "PacBio lanza el secuenciador PacBio RS II" . Next Gen Seek . 11 de abril de 2013. Archivado del original el 19 de diciembre de 2019. Consultado el 18 de abril de 2013 .
  24. "Nuevos productos: RS II de PacBio; Gemelos" . GenomeWeb . 16 de abril de 2013.
  25. "Publicación sobre la secuenciación de Duke" . Twitter . 30 de agosto de 2013.
  26. "PacBio anuncia un sistema de secuenciación Sequel" . Bio-IT World . 30 de septiembre de 2015. Archivado del original el 29 de julio de 2020. Consultado el 16 de noviembre de 2015 .
  27. Heger M (1 de octubre de 2015). "PacBio lanza un sistema de secuenciación de molécula única de mayor rendimiento y menor coste" . GenomeWeb .
  28. "Nueva química y software para el sistema Sequel mejoran la longitud de lectura y reducen los costos del proyecto" . Blog de PacBio . 9 de enero de 2017.
  29. "Nuevo software y polimerasa para el sistema Sequel aumentan el rendimiento y la asequibilidad" . Blog de PacBio . 7 de marzo de 2018.
  30. "PacBio lanza el sistema Sequel II" . Bio-IT World . 26 de abril de 2019.
  31. "Copia archivada" . Archivado del original el 24/09/2018 . Recuperado el 24/09/2018 .{{cite web}}: CS1 mantenimiento: copia archivada como título ( enlace )
  32. Heger M (7 de marzo de 2019). "PacBio comparte experiencias de clientes de acceso anticipado y nuevas aplicaciones para Sequel II" . GenomeWeb .
  33. Rasko DA, Webster DR, Sahl JW, et al. (2011). "Orígenes de la cepa de E. coli que causó un brote de síndrome hemolítico-urémico en Alemania" . N. Engl. J. Med. 365 (8): 709–17 . doi : 10.1056/NEJMoa1106920 . PMC 3168948. PMID 21793740 .   
  34. Chin CS, Sorenson J, Harris JB, et al. (2011). "El origen de la cepa del brote de cólera haitiano" . N. Engl. J. Med. 364 (1): 33– 42. doi : 10.1056/NEJMoa1012928 . PMC 3030187. PMID 21142692 .   
  35. Gao H, Green SJ, Jafari N, et al. (2012). "Consejos técnicos: Secuenciación de próxima generación" . Noticias de ingeniería genética y biotecnología . 32 (8). 
  36. Schatz M (7 de septiembre de 2011). "Enfoques de ensamblaje SMRT" (PDF) . schatzlab.cshl.edu (Reunión de usuarios de PacBio).
  37. Ribeiro FJ, Przybylski D, Yin S, et al. (2012). "Genomas bacterianos terminados a partir de datos de secuenciación de escopeta" . Genome Res. 22 (11): 2270– 7. doi : 10.1101/gr.141515.112 . PMC 3483556. PMID 22829535 .   
  38. Bashir A, Klammer A, Robins WP, et al. (2012). "Un enfoque híbrido para el acabado automatizado de genomas bacterianos" . Nat . Biotechnol. 30 (7): 701– 7. doi : 10.1038/nbt.2288 . PMC 3731737. PMID 22750883 .   
  39. Koren S, Schatz MC, Walenz BP, et al. (2012). "Corrección de errores híbrida y ensamblaje de novo de lecturas de secuenciación de molécula única" . Nat . Biotechnol. 30 (7): 693– 700. doi : 10.1038/nbt.2280 . PMC 3707490. PMID 22750884 .   
  40. Koren S, Harhay GP, Smith TP, et al. (2013). "Reducción de la complejidad del ensamblaje de genomas microbianos con secuenciación de molécula única" . Genome Biol. 14 (9) R101. arXiv : 1304.3752 . Bibcode : 2013arXiv1304.3752K . doi : 10.1186/ gb -2013-14-9-r101 . PMC 4053942. PMID 24034426 .   
  41. Smith CC, Wang Q, Chin CS, et al. (2012). "Validación de las mutaciones ITD en FLT3 como objetivo terapéutico en la leucemia mieloide aguda humana" . Nature . 485 ( 7397): 260–3 . Bibcode : 2012Natur.485..260S . doi : 10.1038/nature11016 . PMC 3390926. PMID 22504184 .   
  42. Carneiro MO, Russ C, Ross MG, et al. (2012). "Tecnología de secuenciación de Pacific Biosciences para genotipado y descubrimiento de variaciones en datos humanos" . BMC Genom. 13 (1): 375. doi : 10.1186/1471-2164-13-375 . PMC 3443046. PMID 22863213 .   
  43. Flusberg BA, Webster DR, Lee JH, et al. (2010). "Detección directa de la metilación del ADN durante la secuenciación en tiempo real de molécula única" . Nat. Methods . 7 (6): 461– 5. doi : 10.1038/nmeth.1459 . PMC 2879396. PMID 20453866 .   
  44. Clark TA, Murray IA, Morgan RD, et al. (2012). "Caracterización de las especificidades de la ADN metiltransferasa mediante secuenciación de ADN en tiempo real de molécula única" . Nucleic Acids Res. 40 (4): e29. doi : 10.1093/nar/gkr1146 . PMC 3287169. PMID 22156058 .   
  45. Song CX, Clark TA, Lu XY, et al. (2011). "Secuenciación sensible y específica de molécula única de 5-hidroximetilcitosina" . Nat Methods . 9 (1): 75–7 . doi : 10.1038/nmeth.1779 . PMC 3646335. PMID 22101853 .   
  46. Clark TA, Spittle KE, Turner SW, et al. (2011). "Detección y secuenciación directa de bases de ADN dañadas" . Genome Integr. 2 (1): 10. doi : 10.1186/2041-9414-2-10 . PMC 3264494. PMID 22185597 .   
  47. Murray IA, Clark TA, Morgan RD, et al. (2012). "Los metilomas de seis bacterias" . Nucleic Acids Res. 40 (22): 11450– 62. doi : 10.1093/nar/gks891 . PMC 3526280. PMID 23034806 .   
  48. Fang G, Munera D, Friedman DI, et al. (2012). "Mapeo genómico de residuos de adenina metilada en Escherichia coli patógena mediante secuenciación en tiempo real de molécula única" . Nat . Biotechnol. 30 (12): 1232– 9. doi : 10.1038/nbt.2432 . PMC 3879109. PMID 23138224 .   
  49. Sharon D, Tilgner H, Grubert F, et al. (2013). "Un estudio de lectura larga de molécula única del transcriptoma humano" . Nat . Biotechnol. 31 (11): 1009– 14. doi : 10.1038/nbt.2705 . PMC 4075632. PMID 24108091 .   
  50. Au KF, Sebastiano V, Afshar PT, et al. (2013). "Caracterización del transcriptoma de células madre embrionarias humanas mediante secuenciación híbrida" . PNAS . 110 ( 50): E4821–30. Bibcode : 2013PNAS..110E4821A . doi : 10.1073/pnas.1320101110 . PMC 3864310. PMID 24282307 .   
  51. Ardui S, Ameur A, Vermeesch JR, et al. (2018). "La secuenciación en tiempo real de molécula única (SMRT) alcanza la madurez: aplicaciones y utilidades para el diagnóstico médico" . Nucleic Acids Res. 46 (5): 2159– 68. doi : 10.1093 / nar/gky066 . PMC 5861413. PMID 29401301 .   
  52. Wilbe M, Gudmundsson S, Johansson J, et al. (2017). "Un enfoque novedoso que utiliza secuenciación de lectura larga y ddPCR para investigar el mosaicismo gonadal y estimar el riesgo de recurrencia en dos familias con trastornos del desarrollo" . Diagnóstico prenatal . 37 (11): 1146– 54. doi : 10.1002/pd.5156 . PMC 5725701. PMID 28921562 .   
  • Informe de BioIT World.com archivado el 26/04/2014 en Wayback Machine.
  • Informe del New York Times