Articulo de referencia

plásmido R1

El plásmido R1 es un plásmido que se aisló por primera vez de la bacteria Salmonella paratyphi en 1963. [ 1 ] Es un plásmido corto, compuesto por 97.566 nucleótidos y 120 genes,...

El plásmido R1 es un plásmido que se aisló por primera vez de la bacteria Salmonella paratyphi en 1963. [ 1 ] Es un plásmido corto, compuesto por 97.566 nucleótidos y 120 genes, que pertenece al grupo de plásmidos IncFII. [ 2 ] Hay aproximadamente una o dos copias del plásmido R1 por cromosoma. [ 3 ] El plásmido R1 confiere resistencia a múltiples antibióticos a su bacteria huésped. [ 4 ] La "R" en "R1" significa "resistencia", y el plásmido R1 contiene factores de resistencia, o factores R, que le otorgan la capacidad de resistir ciertos antibióticos. [ 1 ]

Se le conoce como un plásmido de "baja copia", lo que significa que existe en relativamente pocas copias en cualquier bacteria. Esta característica permite que el plásmido R1 tenga un sistema de estabilización eficiente, que ayuda a estabilizar plásmidos de número de copias medio. [ 5 ] R1 debe depender de un sistema de segregación de "Tipo II". Este sistema de plásmido asegura que al menos una copia esté contenida en cada célula hija después de la división celular. [ 4 ]

Estructura

El plásmido R1 pertenece al grupo de plásmidos IncFII. [ 2 ] El grupo de plásmidos Inc significa incompatibilidad, y los plásmidos se clasifican en este grupo cuando dos plásmidos no pueden propagarse de forma estable en el mismo huésped. [ 6 ] El principal grupo de incompatibilidad involucrado en la transferencia de genes de resistencia y virulencia es el grupo IncF. Dado que R1 es un plásmido IncFII, eso significa que porta el replicón FII. Este subtipo de plásmido a menudo porta genes blaCTX-M. [ 7 ]

Genes y operones clave

Figura 1. Mapa del plásmido R1 aislado por Katherine EL Cox y Joel F. Schildbach.

El plásmido R1 contiene 120 genes, que pueden clasificarse en tres grupos distintos. El grupo más numeroso, representado en verde en la Figura 1 , corresponde al esqueleto del plásmido conjugativo. La región mostrada en púrpura es principalmente un transposón similar a Tn 21 , y la región más pequeña, representada en amarillo, contiene secuencias parecidas a las de Klebsiella oxytoca . [ 8 ]

Replicación

  • repA: Inicia la replicación en el origen de replicación (oriV), lo que le ayuda a controlar el número de copias del plásmido.
  • copA: regula la traducción del ARNm de repA mediante el uso de un ARN antisentido , controlando la frecuencia de replicación.
  • copB: contribuye al control del número de copias actuando como una proteína represora que inhibe la transcripción de RepA.
  • oriV: origen de replicación. RepA es necesario para iniciar la replicación. [ 2 ]

Particionamiento

  • ParM : esta proteína forma filamentos dinámicos que empujan las copias del plásmido hacia los polos opuestos de la célula.
  • ParR: recluta a ParM al plásmido actuando como una proteína de unión al ADN que reconoce el sitio similar al centrómero de ParC.
  • ParC: el sitio similar al centrómero donde se une ParR. [ 9 ]

Conjugación

Estos genes permiten la transferencia horizontal de genes mediante conjugación, propagando el plásmido entre bacterias.

  • TraI: relaxasa que inicia la transferencia cortando el plásmido en el origen de transferencia (oriT).
  • TraM, traJ, traY: proteínas reguladoras que controlan la expresión del operón tra y el ensamblaje del pilus conjugativo.
  • Genes trb: codifican proteínas estructurales del sistema de formación de parejas de apareamiento, incluidos los componentes del pilus.
  • oriT: origen de transferencia. Aquí es donde comienza el procesamiento del ADN para la conjugación. [ 10 ]

genes de resistencia a los antibióticos

Los productos de estos genes proporcionan resistencia a múltiples fármacos, incluidos los antibióticos de uso común:

  • blaTEM-1: proporciona resistencia a la ampicilina mediante la codificación de la β-lactamasa.
  • gato: gen de la cloranfenicol acetiltransferasa, que proporciona resistencia al cloranfenicol.
  • aadA: aminoglucósido adeniltransferasa, proporciona resistencia a la estreptomicina y la espectinomicina.
  • sul1: resistencia a las sulfonamidas. [ 2 ]
[ 11 ] Figura 2:Ausencia del plásmido R1 del sistema Hok sok

Sistema de adicción

Este sistema genético estabiliza la herencia de los plásmidos eliminando a los segregantes libres de plásmidos.

  • El sistema Hok/sok es un sistema de eliminación post-segregacional del plásmido, sistema toxina-antitoxina.
    • hok: codifica una toxina que mata las células que no contienen el plásmido.
    • sok: ARN antisentido corto que inhibe la traducción del ARNm de hok en células portadoras de plásmidos. [ 12 ]

Mantenimiento y estabilidad

Estos genes garantizan que las moléculas de plásmido permanezcan monoméricas, lo que favorece una herencia estable.

  • resD: desempeña un papel en la recombinación sitio-específica, resolviendo los multímeros de plásmido de nuevo a monómeros en el sitio cer. [ 13 ]

ParM es un homólogo de la actina procariota que proporciona la fuerza necesaria para impulsar las copias del plásmido R1 hacia los extremos opuestos de las bacterias con forma de bastón antes de la división.

El ARN similar a CopA es un ARN antisentido implicado en el control de la replicación del plásmido.

Replicación

La replicación del plásmido R1 comienza en el sitio oriRI del plásmido. RepA es la proteína iniciadora codificada por el plasma que se une a oriRI para iniciar la replicación. [ 14 ] RepA necesita una región de ADN de al menos 188 pb para unirse. La iniciación de la cadena principal, cebada por DnaG, ocurre en una señal de cebado de tipo G. Esta señal se encuentra 400 pb corriente abajo de las secuencias de unión de RepA. [ 14 ]

Una proteína RepA recién sintetizada es utilizada por un oriR en la misma plantilla en la que fue sintetizada, una acción específica en cis. [ 3 ]

Sistema de particionamiento

Asegura la segregación activa de plásmidos durante la división celular, evitando la pérdida de plásmidos. [ 9 ]

La partición del plásmido R1 es un mecanismo necesario para su herencia. El sistema par está compuesto por las regiones ParR y ParC, que interactúan entre sí. El sistema par determina la posición del replicón, asegurando que, al finalizar la replicación del ADN, las copias del plásmido estén bien posicionadas para iniciar la división celular. El sistema par también permite la iniciación de la formación de ParM. ParM produce dos proteínas importantes del citoesqueleto: MreB y actina. ParM se encarga de mover las copias del plásmido a polos celulares opuestos. La división celular tiene lugar, dando como resultado los plásmidos particionados en dos células hijas. [ 14 ]

Referencias

  1. 1 2 Datta N, Kontomichalou P (octubre de 1965). " Síntesis de penicilinasa controlada por factores R infecciosos en enterobacterias". Nature . 208 (5007): 239– 241. Bibcode : 1965Natur.208..239D . doi : 10.1038/208239a0 . PMID 5326330. S2CID 42688587 .  
  2. 1 2 3 4 Nordstrom K (enero de 2006). "Plásmido R1: replicación y su control". Plasmid . 55 (1): 1– 26. doi : 10.1016/j.plasmid.2005.07.002 . PMID 16199086 . 
  3. 1 2 Masai H, Kaziro Y, Arai K (1983-11-10). "Definición de oriR, el segmento mínimo de ADN esencial para la iniciación de la replicación del plásmido R1 in vitro" . Actas de la Academia Nacional de Ciencias de los Estados Unidos de América . 80 (22): 6814– 6818. doi : 10.1073/pnas.80.22.6814 . ISSN 0027-8424 . PMC 390076. PMID 6316326 .   
  4. 1 2 Campbell CS, Mullins RD (dic. 2007). "Visualización in vivo de la segregación de plásmidos de tipo II: filamentos de actina bacteriana empujando plásmidos" . The Journal of Cell Biology . 179 (5): 1059– 1066. doi : 10.1083/jcb.200708206 . PMC 2099209. PMID 18039937 .  
  5. Subramanian G, ed. (2012). Tecnología de producción biofarmacéutica . Weinheim: Wiley-VCH. ISBN 978-3-527-65312-6OCLC 794328715 
  6. ^ Anandan S, Devanga Ragupathi NK, Gajendiran R, Kuroda M, Shibayama K, Veeraraghavan B, et al. (2019-03-01). "Plásmido IncFII que porta genes de resistencia a los antimicrobianos en Shigella flexneri: vehículo de difusión" . Revista de resistencia global a los antimicrobianos . 16 : 215– 219. doi : 10.1016/j.jgar.2018.10.014 . ISSN 2213-7165 . PMID 30342929 .   
  7. Beceiro A, Tomas M, Bou G (22 de abril de 2013). "Resistencia antimicrobiana y virulencia: ¿una asociación exitosa o perjudicial en el mundo bacteriano?" . Clinical Microbiology Reviews . 26 (2): 185– 230. doi : 10.1128/cmr.00059-12 . PMC 3623377. PMID 23554414 .  
  8. Cox CE, Schldbach JF (mayo de 2017). "Secuencia del plásmido R1 y comparación con F y R100". Plasmid . 91 : 53–60 . doi : 10.1016/j.plasmid.2017.03.007 . PMID 28359666 . 
  9. 1 2 Møller-Jensen J, Jensen RB, Gerdes K (2000-08-20). "Partición de plásmidos y cromosomas: sorpresas de la filogenia" . Microbiología molecular . 37 (3): 455– 466. doi : 10.1046/j.1365-2958.2000.01975.x . ISSN 0950-382X . PMID 10931339 .  
  10. Leplae R, Summers AO, Toussaint A, Frost LS (2005-09-12). "Elementos genéticos móviles: los agentes de la evolución de código abierto" . Nature Reviews Microbiology . 3 (9): 722– 732. doi : 10.1038/nrmicro1235 . ISSN 1740-1534 . PMID 16138100 .  
  11. ^ Independovirus (29 de julio de 2007), Mechanizm działania systemu hok/sok w obecności plazmidu R1 , consultado el 11 de abril de 2025
  12. Gerdes K, Thisted T (1992-01-05). "Mecanismo de muerte post-segregacional por el sistema hok/sok del plásmido R1" . Journal of Molecular Biology . 223 (1): 41– 54. doi : 10.1016/0022-2836(92)90714-U . ISSN 0022-2836 . PMID 1370544 .  
  13. Henares B, Kommineni S, Chumsakul O, Ogasawara N, Ishikawa S, Nakano MM (2014-01-15). "El regulador de respuesta ResD, a través de la interacción funcional con NsrR y Fur, desempeña tres funciones distintas en el control transcripcional de Bacillus subtilis" . Journal of Bacteriology . 196 (2): 493– 503. doi : 10.1128/JB.01166-13 . ISSN 0021-9193 . PMC 3911253. PMID 24214949 .   
  14. 1 2 3 Moller-Jensen J, Borch J, Dam M, Jensen RB, Roepstorff P, Gerdes K (2003-12-01). "Mitosis bacteriana: ParM del plásmido R1 mueve el ADN del plásmido mediante un mecanismo de polimerización por inserción similar a la actina" . Molecular Cell . 12 (6): 1477– 1487. doi : 10.1016/S1097-2765(03)00451-9 . ISSN 1097-2765 . PMID 14690601 .