
Rhodobacter capsulatus es una especie de bacteria púrpura , un grupo de bacterias que pueden obtener energía mediante la fotosíntesis . Su nombre deriva del adjetivo latino "capsulatus" ("con un cofre", "encapsulado"), que a su vez deriva del sustantivo latino "capsula" (que significa "una caja o cofre pequeño"), y del sufijo latino asociado para sustantivos masculinos, "-atus" (que denota que algo está "provisto de" otra cosa). [ 4 ]
Su genoma completo ha sido secuenciado [ 5 ] y está disponible para el público. [ 6 ]
Descubrimiento
El descubrimiento fue realizado por Hans Molisch , un botánico checo-austríaco. El microorganismo, entonces llamado Rhodonostoc capsulatum , fue identificado en 1907 en su libro Die Purpurbakterien nach neuen Untersuchungen . [ 7 ] CB van Niel caracterizó la especie con mayor detalle en 1944, donde fue renombrada como Rhodopseudomonas capsulata . Van Niel describió inicialmente 16 cepas de R. capsulata que pudo cultivar a partir de muestras de lodo recolectadas en California y Cuba. [ 8 ] En 1984, la especie sería reclasificada como Rhodobacter capsulatus con la introducción del género Rhodobacter . Este género se introdujo para diferenciar mejor las especies de Rhodopseudomonas con diferencias morfológicas distintivas, como aquellas con membranas intracitoplasmáticas vesiculares (compartimentos unidos a la membrana en la célula que a menudo participan en la fotosíntesis) [ 9 ] como R. capsulatus y R. sphaeroides . [ 1 ]
Características genómicas
El genoma de R. capusulatus consta de un cromosoma y un plásmido . La secuenciación de Sanger se utilizó inicialmente para ensamblar el genoma. Posteriormente, el genoma completo se analizó mediante varios programas: Critica , Glimmer , RNAmmer , tRNAscan y ARAGORN . Estos programas identifican diferentes grupos de genes, incluyendo genes codificadores de proteínas, ARNt , ARNm y ARNr . El cromosoma tiene aproximadamente 3,7 Mb con 3531 marcos de lectura abiertos (ORF), mientras que el plásmido es más pequeño, con 133 kb y 154 ORF. De los 3531 ORF del cromosoma, 3100 tenían una función conocida asignada. Otros 610 ORF presentaban similitudes con genes conocidos, pero su función aún no se ha demostrado. El resto de los ORF eran nuevos, sin similitudes en las bases de datos UniRef90 , NCBI-NR , COG o KEGG utilizadas para la comparación. El material genético tenía un alto contenido de GC del 66,6 %. R. capsulatus contiene todos los genes necesarios para producir los 20 aminoácidos, además de 42 genes de transposasa y 237 genes de fago , incluido el agente de transferencia génica (GTA). El cromosoma se encuentra en la base de datos del NCBI con el número de acceso CP001312 , y el plásmido con el número de acceso CP001313 . [ 10 ]
Ecología
Estas bacterias prefieren ambientes acuosos [ 7 ] como los que rodean fuentes de agua naturales o en aguas residuales . [ 11 ] R. capsulatus se ha aislado de Estados Unidos y Cuba . [ 12 ] Inicialmente, esta bacteria podía cultivarse en el laboratorio sembrando muestras del ambiente en medio RCVBN ( ácido DL-málico , sulfato de amonio , biotina , ácido nicotínico , oligoelementos y algunos compuestos adicionales) e incubándolas anaeróbicamente con abundante luz. Las colonias en estas placas podían aislarse, cultivarse en cultivo puro e identificarse como R. capsulatus . [ 11 ] Con la secuenciación de su genoma, ahora se puede utilizar la secuenciación de ARN y ADN para identificar esta especie. [ 6 ] [ 13 ]
Morfología y características fisiológicas
R. capsulatus es una bacteria fototrófica con algunas características distintivas. Pueden crecer como bacilos o como cocobacilos móviles, dependiendo de su entorno. A niveles de pH inferiores a 7, la bacteria es esférica y forma cadenas. Cuando el pH sube por encima de 7, cambia a morfología de bacilo. La longitud de las bacterias en forma de bacilo también depende del pH; las células se alargan a medida que aumenta el pH. En su forma de bacilo, también suelen formar cadenas que se curvan. El artículo original las describe como de forma "zigzagueante". [ 14 ] En respuesta al estrés al que se somete la célula a un pH de 8 o superior, las células muestran pleomorfismo , o crecimiento filamentoso anormal , y producen una sustancia viscosa para protegerse. El cultivo anaeróbico del organismo produce un color marrón, en el espectro del marrón amarillento al burdeos. En medios que contienen malonato, se observa el color marrón rojizo o burdeos. Cuando el organismo se cultiva aeróbicamente, se produce un color rojo. Esta especie no crece por encima de 30 °C y crece entre 6 y 8,5 pH, aunque en el artículo de caracterización no se especifican explícitamente la temperatura y el pH óptimos. [ 14 ] Aunque la mayoría de las especies de Rhodobacter son de agua dulce y tienen poca tolerancia a la sal, algunas cepas de R. capsulatus parecen tolerar hasta 0,3 M de NaCl dependiendo de su fuente de nitrógeno. [ 15 ]
Metabolismo
Como bacteria púrpura no sulfurosa , es capaz de crecimiento aeróbico sin luz, o crecimiento anaeróbico con luz presente, así como fermentación . [ 16 ] Esta especie también es capaz de fijar nitrógeno . [ 17 ] Para fuentes de carbono, R. capsulatus puede utilizar glucosa , fructosa , alanina , ácido glutámico , propionato , ácido glutárico y otros ácidos orgánicos. Sin embargo, no puede utilizar manitol, tartrato, citrato, gluconato, etanol, sorbitol, manosa y leucina, lo cual es único de R. capsulatus en comparación con otras especies del género. Los enriquecimientos más exitosos de esta especie provienen de propionato y ácidos orgánicos. [ 14 ] En condiciones fotoheterotróficas , la cepa B10 de R. capsulatus es capaz de utilizar acetato como su única fuente de carbono, pero los mecanismos de esto no han sido identificados. [ 18 ] Las cepas estudiadas no hidrolizan gelatina . [ 14 ]
Significado
Rhodobacter capsulatus fue el primer microorganismo observado que producía agentes de transferencia genética . Un agente de transferencia genética (GTA) es una partícula similar a un fago que transfiere pequeñas cantidades de ADN del cromosoma de la célula productora para facilitar la transferencia horizontal de genes . El ADN empaquetado en las partículas también es aleatorio; no contiene todos los genes necesarios para la producción de GTA. Si bien son algo similares a una partícula transductora , los GTA no se crean por accidente cuando un fago empaqueta ADN en partículas virales. Los genes para los GTA y su regulación están controlados por la propia célula, no por un fago. [ 19 ] Estas partículas se identificaron por primera vez cuando los investigadores colocaron varias cepas diferentes de R. capsulatus resistentes a antibióticos en un cocultivo y observaron cepas doblemente resistentes. Este intercambio de ADN se siguió observando incluso cuando se eliminó el contacto celular y se añadieron DNasas , lo que les permitió descartar la conjugación y la transformación como causa. Pronto se identificó un pequeño agente filtrable como la fuente de este intercambio genético. [ 20 ] Cuando se creó una cepa mutante que sobreproducía estos agentes, se demostró que las partículas no eran producidas por un fago, sino por R. capsulatus. [ 21 ] Después de secuenciar los genes para la producción de GTA, se encontraron más especies que producían GTA, lo que llevó a que el agente de transferencia genética de Rhodobacter capsulatus se abreviara como RcGTA. [ 19 ] Se ha sugerido que las condiciones adversas pueden desencadenar que la célula comience a producir GTA, lo que permitiría compartir el ADN genómico y aumentar la diversidad genética general de la población. [ 22 ]
Además, Rhodobacter capsulatus es un organismo modelo importante en la investigación, debido a su citocromo c oxidasa terminal , la citocromo c oxidasa de tipo cbb3 , que está presente en muchas especies patógenas de bacterias. [ 23 ] Esto permite investigar la biogénesis de la citocromo c oxidasa y ha llevado a la identificación de genes de ensamblaje involucrados en la biogénesis y función de la citocromo c oxidasa de tipo cbb3 , en particular por Hans-Georg Koch , lo que ha permitido una mejor comprensión de estas especies patógenas clínicamente relevantes. [ 24 ]
Referencias
- 1 2 Imhoff JF, Trüper HG, Pfennig N (julio de 1984). "Reorganización de las especies y géneros de las bacterias fototróficas "Púrpura no sulfurosa"" . Revista Internacional de Bacteriología Sistemática . 34 (3): 340– 343. doi : 10.1099/00207713-34-3-340 .
- ↑ "Rhodobacter capsulatus (taxon passport)" . StrainInfo . Archivado del original el 16 de diciembre de 2013. Consultado el 8 de diciembre de 2015 .
- ↑ "Rhodobacter capsulatus (Rhodopseudomonas capsulata)" . UniProt . Consultado el 8 de diciembre de 2015 .
- ↑ "Rhodobacter capsulatus - Navegador de taxonomía" . StrainInfo . Archivado del original el 8 de diciembre de 2015. Consultado el 8 de diciembre de 2015 .
- ↑ Strnad H, Lapidus A, Paces J, Ulbrich P, Vlcek C, Paces V, Haselkorn R (julio de 2010). " Secuencia genómica completa de la bacteria fotosintética púrpura no sulfurosa Rhodobacter capsulatus SB 1003" . Journal of Bacteriology . 192 (13): 3545–6 . doi : 10.1128/JB.00366-10 . PMC 2897665. PMID 20418398 .
- 1 2 "GENOMA KEGG: Rhodobacter capsulatus" . Enciclopedia de Genes y Genomas de Kioto . Consultado el 8 de diciembre de 2015 .
- ^ Molisch H (1907). Die Purpurbakterien nach neuen Untersuchungen .
- ↑ van Niel CB (marzo de 1944). "Cultivo, fisiología general, morfología y clasificación de las bacterias púrpuras y marrones no sulfurosas" . Bacteriological Reviews . 8 (1): 1– 118. doi : 10.1128/MMBR.8.1.1-118.1944 . PMC 440875. PMID 16350090 .
- ↑ LaSarre B, Kysela DT, Stein BD, Ducret A, Brun YV, McKinlay JB (julio de 2018). "Localización restringida de membranas intracitoplasmáticas fotosintéticas (ICM) en múltiples géneros de bacterias púrpuras no sulfurosas" . mBio . 9 ( 4). doi : 10.1128/mbio.00780-18 . PMC 6030561. PMID 29970460 .
- ↑ Strnad, Hynek; Lapidus, Alla; Paces, Jan; Ulbrich, Pavel; Vlcek, Cestmir; Paces, Vaclav; Haselkorn, Robert (2010-07-01). " Secuencia completa del genoma de la bacteria fotosintética púrpura no sulfurosa Rhodobacter capsulatus SB 1003" . Journal of Bacteriology . 192 (13): 3545– 3546. doi : 10.1128/JB.00366-10 . ISSN 0021-9193 . PMC 2897665. PMID 20418398 .
- 1 2 Weaver PF, Wall JD, Gest H (noviembre de 1975). "Caracterización de Rhodopseudomonas capsulata". Archives of Microbiology . 105 (3): 207– 16. doi : 10.1007/BF00447139 . PMID 1103769 . S2CID 1097551 .
- ↑ Pujalte MJ, Lucena T, Ruvira MA, Arahal DR, Macián MC (2014). "La familia Rhodobacteraceae". Los Procariotas . Springer Berlín Heidelberg. págs. 439– 512. doi : 10.1007/978-3-642-30197-1_377 . ISBN 978-3-642-30196-4.
- ↑ Strnad H, Lapidus A, Paces J, Ulbrich P, Vlcek C, Paces V, Haselkorn R (julio de 2010). " Secuencia genómica completa de la bacteria fotosintética púrpura no sulfurosa Rhodobacter capsulatus SB 1003" . Journal of Bacteriology . 192 (13): 3545–6 . doi : 10.1128/JB.00366-10 . PMC 2897665. PMID 20418398 .
- 1 2 3 4 van Niel, CB (1944). "El cultivo, la fisiología general, la morfología y la clasificación de las bacterias púrpuras y marrones no sulfurosas" . Bacteriological Reviews . 8 (1): 1– 118. doi : 10.1128/MMBR.8.1.1-118.1944 . ISSN 0005-3678 . PMC 440875. PMID 16350090 .
- ↑ Igeno, MI; Moral, CG Del; Castillo, F.; Caballero, FJ (1995-08-01). "La halotolerancia de la bacteria fototrófica Rhodobacter capsulatus E1F1 depende de la fuente de nitrógeno" . Microbiología Aplicada y Ambiental . 61 (8): 2970– 2975. Bibcode : 1995ApEnM..61.2970I . doi : 10.1128/AEM.61.8.2970-2975.1995 . ISSN 0099-2240 . PMC 1388552. PMID 16535098 .
- ↑ Tichi, Mary A.; Tabita, F. Robert (2001-11-01). "Control interactivo de los sistemas de equilibrio redox de Rhodobacter capsulatus durante el metabolismo fototrófico" . Journal of Bacteriology . 183 (21): 6344– 6354. doi : 10.1128/JB.183.21.6344-6354.2001 . ISSN 0021-9193 . PMC 100130. PMID 11591679 .
- ↑ "Rhodobacter capsulatus (ID 1096) - Genoma - NCBI" . www.ncbi.nlm.nih.gov . Consultado el 13 de abril de 2020 .
- ↑ Petushkova, EP; Tsygankov, AA (2017-05-01). "Metabolismo del acetato en la bacteria púrpura no sulfurosa Rhodobacter capsulatus". Bioquímica (Moscú) . 82 (5): 587– 605. doi : 10.1134/S0006297917050078 . ISSN 1608-3040 . PMID 28601069 . S2CID 34654057 .
- 1 2 Lang AS, Zhaxybayeva O, Beatty JT (junio de 2012). "Agentes de transferencia genética: elementos similares a fagos del intercambio genético" . Nature Reviews. Microbiology . 10 (7): 472– 82. doi : 10.1038/nrmicro2802 . PMC 3626599. PMID 22683880 .
- ↑ Marrs B (marzo de 1974). "Recombinación genética en Rhodopseudomonas capsulata" . Actas de la Academia Nacional de Ciencias de los Estados Unidos de América . 71 (3): 971–3 . Bibcode : 1974PNAS...71..971M . doi : 10.1073 /pnas.71.3.971 . PMC 388139. PMID 4522805 .
- ↑ Yen HC, Hu NT, Marrs BL (junio de 1979). "Caracterización del agente de transferencia génica producido por un mutante sobreproductor de Rhodopseudomonas capsulata". Journal of Molecular Biology . 131 (2): 157– 68. doi : 10.1016/0022-2836(79)90071-8 . PMID 490646 .
- ↑ Lang AS, Beatty JT (enero de 2000). "Análisis genético de un elemento de intercambio genético bacteriano: el agente de transferencia genética de Rhodobacter capsulatus" . Actas de la Academia Nacional de Ciencias de los Estados Unidos de América . 97 (2): 859– 64. Bibcode : 2000PNAS...97..859L . doi : 10.1073/pnas.97.2.859 . PMC 15421. PMID 10639170 .
- ↑ Durand, Anne (19 de enero de 2019). "Biogénesis de la citocromo c oxidasa bacteriana cbb3: los subcomplejos activos respaldan un modelo de ensamblaje secuencial" . J Biol Chem . 293, 3 (3): 808– 818. doi : 10.1074/jbc.M117.805184 . PMC 5777255. PMID 29150446 .
- ↑ Koch, Hans-Georg (17 de marzo de 2000). "Funciones de los productos del gen ccoGHIS en la biogénesis de la citocromo c oxidasa de tipo cbb(3)". J Mol Biol . 297 (1): 49– 65. doi : 10.1006/jmbi.2000.3555 . PMID 10704306 .
Enlaces externos
- Cepa tipo de Rhodobacter capsulatus en Bac Dive - la base de datos de metadatos de diversidad bacteriana
- bacterias fototróficas
- Rhodobacteraceae
- Bacterias descritas en 1907