Articulo de referencia

Hypha

Hyphae of Penicillium Fungal hyphae cells: (1) Hyphal wall. (2) Septum . (3) Mitochondrion . (4) Vacuole. (5) Ergosterol crystal. (6) Ribosome . (7) Nucleus . (8) Endoplasmic re...

Hyphae of Penicillium
Fungal hyphae cells: (1) Hyphal wall. (2) Septum. (3) Mitochondrion. (4) Vacuole. (5) Ergosterol crystal. (6) Ribosome. (7) Nucleus. (8) Endoplasmic reticulum. (9) Lipid body. (10) Plasma membrane. (11) Spitzenkörper. (12) Golgi apparatus
Hyphae growing on tomato sauce (the pale oblong objects to the side are rice grains)
Aspergillus niger
Conidia on conidiophores

A hypha (fromAncient Greekὑφή (huphḗ) 'web'; pl.hyphae) is a long, branching, filamentous structure of a fungus, oomycete, or actinobacterium.[1] In most fungi, hyphae are the main mode of vegetative growth, and are collectively called a mycelium.

Structure

A hypha consists of one or more cells surrounded by a tubular cell wall. In most fungi, hyphae are divided into cells by internal cross-walls called "septa" (singular: septum). Septa are usually perforated by pores large enough for ribosomes, mitochondria, and sometimes nuclei to flow between cells. The major structural polymer in fungal cell walls is typically chitin, in contrast to plants and oomycetes that have cellulosic cell walls. Some fungi have aseptate hyphae, meaning their hyphae are not partitioned by septa.

Hyphae have an average diameter of 4–6 μm.[2] Many groups of fungi produce hyphae, and some form vast networks of mycelium; arbuscular mycorrhizal fungal hyphae alone have been estimated to extend approximately 110 quadrillion kilometres[3] through Earth's topsoils.

Growth

Las hifas crecen en sus puntas. Durante el crecimiento apical, las paredes celulares se extienden mediante el ensamblaje externo y la polimerización de los componentes de la pared celular, y la producción interna de nueva membrana celular. [ 4 ] El Spitzenkörper (palabra alemana para 'cuerpo puntiagudo') es un orgánulo intracelular asociado con el crecimiento apical. Está compuesto por una agregación de vesículas unidas a la membrana que contienen componentes de la pared celular. El Spitzenkörper forma parte del sistema de endomembranas de los hongos, reteniendo y liberando vesículas que recibe del aparato de Golgi . Estas vesículas viajan a la membrana celular a través del citoesqueleto y liberan su contenido (incluyendo varias proteínas ricas en cisteína, como ceratoplataninas e hidrofobinas ) [ 5 ] [ 6 ] fuera de la célula mediante el proceso de exocitosis . Fuera de la célula, luego se transportan a donde se necesitan. Las membranas de las vesículas contribuyen al crecimiento de la membrana celular, mientras que su contenido forma nueva pared celular. El Spitzenkörper se mueve a lo largo del ápice del filamento hifal y genera crecimiento y ramificación apical; la tasa de crecimiento apical en la punta del filamento hifal es similar a la tasa de movimiento del Spitzenkörper y está regulada por ella. [ 7 ]

A medida que una hifa se extiende, pueden formarse septos detrás de la punta en crecimiento para dividir cada hifa en células individuales. Las hifas pueden ramificarse mediante la bifurcación de una punta en crecimiento o por la aparición de una nueva punta a partir de una hifa ya establecida.

Comportamiento

La dirección del crecimiento de las hifas puede controlarse mediante estímulos ambientales, como la aplicación de un campo eléctrico. Las hifas también pueden detectar unidades reproductivas a cierta distancia y crecer hacia ellas. Además, pueden atravesar superficies permeables para penetrarlas. [ 4 ]

Modificaciones

Las hifas pueden modificarse de diversas maneras para cumplir funciones específicas. Algunos hongos parásitos forman haustorios que intervienen en la absorción dentro de las células del huésped. Los arbúsculos de los hongos micorrícicos mutualistas cumplen una función similar en el intercambio de nutrientes, por lo que son importantes para facilitar la absorción de nutrientes y agua por las plantas. El micelio extramatricial ectomicorrícico aumenta considerablemente la superficie del suelo disponible para su explotación por las plantas hospedantes, canalizando agua y nutrientes hacia las ectomicorrizas , órganos fúngicos complejos situados en las puntas de las raíces de las plantas. En los líquenes , las hifas envuelven los gonidios , constituyendo una parte importante de su estructura. En los hongos que atrapan nematodos, las hifas pueden modificarse formando estructuras de captura como anillos constrictores y redes adhesivas. Se pueden formar cordones miceliales para transferir nutrientes a mayores distancias. Los tejidos, cordones y membranas fúngicas, como los de las setas y los líquenes , están compuestos principalmente por hifas afieltradas y, a menudo, anastomosadas . [ 8 ]

Tipos

Clasificación basada en la división celular

  • Septado (con tabiques)
  • Aseptado ( no septado ) o cenocítico (sin septos)
  • Las pseudohifas se distinguen de las hifas verdaderas por su método de crecimiento, su relativa fragilidad y la falta de conexión citoplasmática entre las células.
    • Las levaduras forman pseudohifas. [ 12 ] Son el resultado de una especie de gemación incompleta en la que las células se alargan pero permanecen unidas después de la división. Algunas levaduras también pueden formar hifas septadas verdaderas. [ 13 ]

Clasificación basada en la pared celular y la forma general.

Las características de las hifas pueden ser importantes en la clasificación de los hongos. En la taxonomía de los basidiomicetos , las hifas que componen el cuerpo fructífero se pueden identificar como hifas generativas, esqueléticas o de unión. [ 14 ]

  • Generative hyphae are relatively undifferentiated and can develop reproductive structures. They are typically thin-walled, occasionally developing slightly thickened walls, usually have frequent septa, and may or may not have clamp connections. They may be embedded in mucilage or gelatinized materials.
  • Skeletal hyphae are of two basic types. The classical form is thick-walled and very long in comparison to the frequently septate generative hyphae, which are unbranched or rarely branched, with little cell content. They have few septa and lack clamp connections. Fusiform skeletal hyphae are the second form of skeletal hyphae. Unlike typical skeletal hyphae these are swollen centrally and often exceedingly broad, hence giving the hypha a fusiform shape.
  • Binding hyphae are thick-walled and frequent branched. Often they resemble deer antlers or defoliated trees because of the many tapering branches.

Based on the generative, skeletal and binding hyphal types, in 1932 E. J. H. Corner applied the terms monomitic, dimitic, and trimitic to hyphal systems, in order to improve the classification of polypores.[15][16]

  • Every fungus must contain generative hyphae. A fungus which only contains this type, as do fleshy mushrooms such as agarics, is referred to as monomitic.
  • If a fungus contains the obligate generative hyphae (as mentioned in the last point, "every fungus must contain generative hyphae") and just one of the other two types (either skeletal or binding hyphae), it is called dimitic. In fact dimitic fungi almost always contain generative and skeletal hyphae; there is one exceptional genus, Laetiporus that includes only generative and binding hyphae.
  • Skeletal and binding hyphae give leathery and woody fungi such as polypores their tough consistency. If a fungus contains all three types (example: Trametes), it is called trimitic.

Fungi that form fusiform skeletal hyphae bound by generative hyphae are said to have sarcodimitic hyphal systems. A few fungi form fusiform skeletal hyphae, generative hyphae, and binding hyphae, and these are said to have sarcotrimitic hyphal systems. These terms were introduced as a later refinement by E. J. H. Corner in 1966.[17]

Classification based on refractive appearance

Hyphae are described as "gloeoplerous" ("gloeohyphae") if their high refractive index gives them an oily or granular appearance under the microscope. These cells may be yellowish or clear (hyaline). They can sometimes selectively be coloured by sulphovanillin or other reagents. The specialized cells termed cystidia can also be gloeoplerous.[18][19]

Classification based on growth location

Hyphae might be categorized as 'vegetative' or 'aerial.' Aerial hyphae of fungi produce asexual reproductive spores.[20]

See also

  • Ascocarp – Fruiting body of an ascomycete fungus
  • Hartig net – Network of inward-growing hyphae
  • Mycorrhizal network – Underground fungal networks that connect individual plants together

References

  1. Madigan M; Martinko J, eds. (2005). Brock Biology of Microorganisms (11th ed.). Prentice Hall. ISBN 0-13-144329-1.
  2. Maheshwari, R. (2016). Fungi: Experimental Methods In Biology. Mycology (Second ed.). CRC Press. p. 3. ISBN 978-1-4398-3904-1.
  3. Stewart, Justin D.; Bisot, Corentin; Cargill, Rachael I. M.; Van Nuland, Michael E.; Hawkins, Heidi-Jayne; Oyarte Galvez, Loreto; Klein, Malin; van Son, Marije; Terry, Victoria; Paré, Louis; Banchini, Claudia; Stefani, Franck; Kahane, Felix; Lin, Kai-Kai; Braghiere, Renato K. (2026-06-11). "Global density and biomass of arbuscular mycorrhizal fungal networks". Science. 392 (6803): 1171–1176. doi:10.1126/science.adu4373. hdl:1871.1/2a6d4a53-a51f-424a-8ebf-3851000f5c24.
  4. 12Gooday, G. W. (1995). "The dynamics of hyphal growth". Mycological Research. 99 (4): 385–389. doi:10.1016/S0953-7562(09)80634-5.
  5. ^ Baccelli, Iván; Comparini, Cecilia; Bettini, Priscila P.; Martellini, Federica; Ruocco, Michelina; Pazzagli, Luigia; Bernardi, Rodolfo; Scala, Aniello (1 de febrero de 2012). "La expresión del gen ceratoplatanino está relacionada con el crecimiento de hifas y la formación de clamidosporas en Ceratocystis platani " . Cartas de microbiología FEMS . 327 (2): 155– 163. doi : 10.1111/j.1574-6968.2011.02475.x . hdl : 2158/645742 . PMID 22136757 . 
  6. Wösten, Han AB; van Wetter, Marie-Anne; Lugones, Luis G.; van der Mei, Henny C.; Busscher, Henk J.; Wessels, Joseph GH (28 de enero de 1999). "Cómo un hongo escapa del agua para crecer en el aire" . Biología actual . 9 (2): 85– 88. Bibcode : 1999CBio....9...85W . doi : 10.1016/S0960-9822(99)80019-0 . PMID 10021365 . S2CID 15134716 .  
  7. Steinberg, G (2007). "Crecimiento hifal: una historia de motores, lípidos y el Spitzenkörper" . Eukaryotic Cell . 6 (3): 351– 360. Bibcode : 2007EukC....6..351S . doi : 10.1128 /ec.00381-06 . PMC 1828937. PMID 17259546 .  
  8. Moore, David. Robson, Geoffrey D. Trinci, Anthony PJ Guía de hongos del siglo XXI. Editorial: Cambridge University Press 2011 ISBN 978-0521186957
  9. "Micología en línea – Aspergilosis" . Archivado del original el 7 de diciembre de 2008. Consultado el 10 de diciembre de 2008 .
  10. Toro P, Doxtader EE, Mukhopadhyay S (2025). "Precisión del diagnóstico a nivel de género de organismos fúngicos en muestras patológicas basado únicamente en la morfología: análisis de 52 muestras con microbiología/PCR como estándar de oro". International Journal of Surgical Pathology . doi : 10.1177/10668969251382760 . PMID 41248033 . 
  11. Klatt, Edward C. "Mucormicosis" . WebPath . Facultad de Medicina de la Universidad de Utah . Consultado el 10 de diciembre de 2008 .
  12. Reiss, Errol; DiSalvo, Art (31 de mayo de 2018). "Levaduras". En Hunt, Richard (ed.). Microbiología e Inmunología en línea . Universidad de Carolina del Sur . Consultado el 20 de noviembre de 2020 .
  13. Sudbery, Peter; Gow, Neil; Berman, Judith (2004). "Los distintos estados morfogénicos de Candida albicans ". Trends in Microbiology . 12 (7): 317– 324. Bibcode : 2004TrMic..12..317S . doi : 10.1016/j.tim.2004.05.008 . PMID 15223059 . 
  14. "Sistema hifal" . Asociación Micológica de Illinois. Archivado del original el 14 de octubre de 2006. Consultado el 11 de febrero de 2007 .
  15. Corner EJH (1932). "Un Fomes con dos sistemas de hifas". Trans. Br. Mycol. Soc . 17 ( 1– 2): 51– 81. doi : 10.1016/S0007-1536(32)80026-4 .
  16. Cunningham GH (1954–55). "Problemas taxonómicos de algunos himenomicetos" . Transactions and Proceedings of the Royal Society of New Zealand . 82 : 893–6 .
  17. Rincón EJH (1966). "Monografía de hongos cantareloides". Ana. Bot. Memoria . 2 : 1-255 .
  18. Véase el glosario de Meinhard Moser, traducido por Simon Plant: Claves para agaricos y boletos (Roger Phillips 1983) ISBN 0-9508486-0-3.
  19. Véase la sección "Características microscópicas..." del Taller de verano de 2006 sobre biología de hongos para profesores de secundaria, archivado el 25 de junio de 2008 en Wayback Machine , laboratorio Hibbett, Departamento de Biología, Universidad de Clark, "Directrices para la recolección e identificación de macrohongos (basidiomicetos)".
  20. Kaiser, Gary E. (2014-06-01). "II: HONGOS" . Archivado del original el 25-12-2019 . Recuperado el 10-03-2020 .
  • Micrografía óptica de primer plano de hifas cenocíticas
  • Microbiología en miniatura: Introducción a la micología
  • Vídeos sobre el crecimiento y la ramificación de las hifas realizados por PC Hickey y N. Read, Universidad de Edimburgo.
  • Hongos en línea: Una introducción a la biología de los hongos
  • Fungal , un homenaje artístico de Raphaël Bastide con motivo del 20.º aniversario de Wikipedia. Muestra cómo este artículo de Wikipedia es colonizado por hifas.