Articulo de referencia

Trasplante

Trasplantar un olivo en Grecia En agricultura y jardinería , el trasplante o replantación es la técnica de mover una planta de un lugar a otro. Generalmente, esto implica inicia...

Trasplantar un olivo en Grecia

En agricultura y jardinería , el trasplante o replantación es la técnica de mover una planta de un lugar a otro. Generalmente, esto implica iniciar el cultivo de una planta a partir de una semilla en condiciones óptimas, como en un invernadero o un semillero protegido , para luego replantarla en otro lugar de cultivo, normalmente al aire libre. La máquina agrícola que realiza esta tarea se llama trasplantadora . Esto es común en la horticultura comercial y la agricultura de hortalizas, donde plantar o sembrar son sinónimos de trasplante. En la horticultura de algunas plantas ornamentales , los trasplantes se utilizan con poca frecuencia y con cuidado, ya que conllevan un riesgo significativo de que la planta muera. [ 1 ]

El trasplante tiene diversas aplicaciones, entre las que se incluyen:

Las distintas especies y variedades reaccionan de forma diferente al trasplante; para algunas, no se recomienda. En todos los casos, la principal preocupación es evitar el estrés o daño que sufre la planta durante el proceso. Las plantas cultivadas en condiciones protegidas suelen necesitar un periodo de aclimatación , conocido como endurecimiento ( véase también resistencia a las heladas ). Asimismo, debe minimizarse la alteración de las raíces . La etapa de crecimiento en la que se realiza el trasplante, las condiciones climáticas durante el mismo y el tratamiento inmediatamente posterior son otros factores importantes.

Sistemas de producción de trasplantes

Los productores comerciales emplean lo que se denomina producción de plántulas en contenedores y sin contenedores. [ 2 ]

Los trasplantes en contenedores o en forma de alvéolos permiten trasplantar plantas cultivadas por separado con las raíces y el suelo intactos. Generalmente se cultivan en macetas de turba (una maceta hecha de turba comprimida ), bloques de tierra (bloques de tierra comprimida), macetas de papel o contenedores de varias celdas, como paquetes de plástico (de cuatro a doce celdas) o bandejas de alvéolos más grandes hechas de plástico o poliestireno expandido. [ 3 ]

Los trasplantes no cultivados en contenedores se suelen cultivar en bancales o mesas de invernadero, al aire libre en el suelo con cubiertas para hileras y semilleros, y en el suelo en campo abierto. [ 4 ] [ 2 ] Las plantas se extraen con las raíces al descubierto para el trasplante, que es menos costoso que los trasplantes en contenedores, pero con rendimientos más bajos debido a un peor restablecimiento de la planta. [ 4 ]

existencias en contenedores

Las plantas cultivadas en contenedores se clasifican según el tipo y tamaño del contenedor utilizado. Se ha utilizado una gran variedad de contenedores, con diversos grados de éxito. Algunos contenedores están diseñados para plantarse junto con el árbol, por ejemplo, la maceta de papel alquitranado, la salchicha de turba de Alberta, la bala cuadrada Walters y los sistemas de macetas de papel, se llenan con sustrato de enraizamiento y se plantan con el árbol (Tinus y McDonald 1979). [ 5 ] También se plantan con el árbol otros contenedores que no se llenan con sustrato de enraizamiento, sino que son bloques moldeados de sustrato de cultivo, como Polyloam, Tree Start y los bloques BR-8.

Los diseños de contenedores para el cultivo de material de plantación han sido numerosos y variados. El cultivo de abeto blanco en contenedores es ahora la norma. La mayoría de los contenedores son tubulares; tanto el diámetro como el volumen afectan el crecimiento del abeto blanco (Hocking y Mitchell 1975, Carlson y Endean 1976). [ 6 ] [ 7 ] El abeto blanco cultivado en un contenedor con una relación altura:diámetro de 1:1 produjo un peso seco significativamente mayor que el cultivado en contenedores con configuraciones de relación altura:diámetro de 3:1 y 6:1. El peso seco total y la longitud de los brotes aumentaron con el incremento del volumen del contenedor. Cuanto mayor es la bolsa, menor es la cantidad desplegada por unidad de área. Sin embargo, la ventaja biológica del tamaño ha sido suficiente para influir en un marcado cambio hacia contenedores más grandes en la Columbia Británica (Coates et al. 1994). [ 8 ] El número de tapones de poliestireno PSB211 (2 cm de diámetro superior, 11 cm de largo) pedidos en Columbia Británica disminuyó de 14.246.000 en 1981 a cero en 1990, mientras que los pedidos de tapones de poliestireno PSB415 (4 cm de diámetro superior, 15 cm de largo) aumentaron en el mismo período de 257.000 a 41.008.000, aunque el stock grande es más caro que el pequeño para criar, distribuir y plantar.

Otros contenedores no se plantan con el árbol, por ejemplo, los sistemas de contenedores Styroblock, Superblock, Copperblock y Miniblock, producen plántulas Styroplug con raíces en un tapón cohesivo de medio de cultivo. Las cavidades del tapón varían en volumen por varias combinaciones de diámetro superior y profundidad, de 39 a 3260 ml, pero las más utilizadas, al menos en Columbia Británica, están en el rango de 39 ml a 133 ml (Van Eerden y Gates 1990). [ 9 ] El tapón BC-CFS Styroblock, desarrollado en 1969/70, se ha convertido en el tipo de patrón dominante para el abeto interior en Columbia Británica (Van Eerden y Gates 1990, Coates et al. 1994). [ 9 ] [ 8 ] Los tamaños de los tapones se indican mediante una designación de 3 cifras, la primera cifra de la cual da el diámetro superior y las otras 2 cifras la profundidad de la cavidad del tapón, ambas dimensiones aproximadas en centímetros. La demanda de tapones más grandes ha aumentado considerablemente (Tabla 6.24; Coates et al. 1994). [ 8 ] El ganado criado en algunos tamaños de tapones puede variar en clase de edad. En Columbia Británica, por ejemplo, los tapones PSB 415 y PSB 313 se crían como 1+0 o 2+0. Los tapones PSB 615 rara vez se crían de otra manera que no sea como 2+0.

Inicialmente, la intención era dejar los tapones en los bloques de poliestireno hasta justo antes de la siembra. Sin embargo, esto generó problemas logísticos y redujo la eficiencia de las operaciones de siembra. Al parecer, no se han realizado estudios comparativos entre el material extraído y envasado y el material cultivado in situ , pero el material envasado ha tenido un buen desempeño y no ha mostrado signos de deterioro.

Silvicultura

Almacenamiento en campo

Pongamia pinnata Trasplante de árboles

Como lo defienden Coates et al. (1994), [ 8 ] el material de plantación descongelado llevado al campo debe mantenerse óptimamente frío a 1  °C a 2  °C en humedades relativas superiores al 90 % (Ronco 1972a). [ 10 ] Durante algunos días,  se pueden tolerar temperaturas de almacenamiento alrededor de 4,5 °C y humedades alrededor del 50 %. Binder y Fielder (1988) [ 11 ] recomendaron que las plántulas en cajas recuperadas del almacenamiento en frío no deben exponerse a temperaturas superiores a 10  °C. Las furgonetas refrigeradas comúnmente utilizadas para el transporte y el almacenamiento en el sitio normalmente 'mantienen las plántulas a 2  °C a 4  °C (Mitchell et al. 1980). [ 12 ] Ronco (1972a, b) [ 10 ] [ 13 ] advirtió contra el uso de hielo seco (dióxido de carbono sólido) para enfriar las plántulas; afirmó que la respiración y el transporte de agua en las plántulas se ven alterados por altas concentraciones de dióxido de carbono gaseoso.

El material de plantación de coníferas a menudo se mantiene en almacenamiento congelado, principalmente a −2  °C, durante períodos prolongados y luego se almacena en frío (+2  °C) para descongelar el cepellón antes de la plantación. La descongelación es necesaria si las plántulas congeladas no se pueden separar entre sí y ha sido defendida por algunos para evitar la posible pérdida de contacto entre el cepellón y el suelo con la contracción del cepellón al derretirse el hielo en el cepellón. La actividad fisiológica también es mayor bajo almacenamiento en frío que bajo almacenamiento congelado, pero las plántulas de abeto interior y abeto de Engelmann que se plantaron mientras aún estaban congeladas tuvieron solo efectos fisiológicos breves y transitorios, incluido el potencial hídrico del xilema , (Camm et al. 1995, Silem y Guy 1998). [ 14 ] [ 15 ] Después de 1 temporada de crecimiento, los parámetros de crecimiento no difirieron entre las plántulas plantadas congeladas y las plantadas descongeladas.

Los estudios sobre prácticas de almacenamiento y siembra generalmente se han centrado en los efectos de la duración del almacenamiento en congelación y los efectos del almacenamiento en frío posterior (p. ej., Ritchie et al. 1985, Chomba et al. 1993, Harper y Camm 1993). [ 16 ] [ 17 ] [ 18 ] Las revisiones de técnicas de almacenamiento en frío han prestado poca atención al proceso de descongelación (Camm et al. 1994), [ 19 ] o simplemente han señalado que es improbable que la velocidad de descongelación cause daños ( McKay 1997). [ 20 ]

Kooistra y Bakker (2002) [ 21 ] observaron varias líneas de evidencia que sugieren que el almacenamiento en frío puede tener efectos negativos en la salud de las plántulas. La tasa de respiración es más rápida durante el almacenamiento en frío que en el almacenamiento en congelación, por lo que las reservas de carbohidratos se agotan más rápidamente. Ciertamente, en ausencia de luz durante el almacenamiento en frío, y en un grado indeterminado si las plántulas se exponen a la luz (inusual), las reservas de carbohidratos se agotan (Wang y Zwiacek 1999). [ 22 ] Asimismo, Silem y Guy (1998), [ 15 ] por ejemplo, encontraron que las plántulas de abeto interior tenían reservas de carbohidratos totales significativamente menores si se almacenaban durante 2 semanas a 2  °C que si se descongelaban rápidamente durante 24 horas a 15  °C. Las plántulas pueden perder rápidamente resistencia al frío en el almacenamiento en frío debido al aumento de la respiración y el consumo de azúcares intracelulares que funcionan como crioprotectores (Ogren 1997). [ 23 ] Además, el agotamiento de las reservas de carbohidratos perjudica la capacidad de las plántulas para desarrollar raíces. Finalmente, los mohos de almacenamiento son un problema mucho mayor durante el almacenamiento en frío que durante el almacenamiento en congelación.

Kooistra y Bakker (2002), [ 21 ] por lo tanto, probaron la hipótesis de que tal descongelación es innecesaria. Se plantaron plántulas de 3 especies, incluyendo abeto interior, con tapones de raíces congelados (plántulas congeladas) y con tapones de raíces descongelados (plántulas descongeladas). Los tapones de raíces descongelados se calentaron a la temperatura del suelo en aproximadamente 20 minutos; los tapones de raíces congelados tardaron aproximadamente 2 horas, ya que el hielo en el tapón tuvo que derretirse antes de que la temperatura pudiera subir por encima de cero. El tamaño del tapón de raíces influyó en el tiempo de descongelación. Estas plantaciones se realizaron en suelo cálido para los estándares boreales , y las plántulas con tapones congelados podrían tener un desempeño diferente si se plantaran en suelo a temperaturas más típicas de los sitios de plantación en primavera y en altitudes elevadas. La fluorescencia variable no difirió entre las plántulas descongeladas y congeladas. La brotación no fue más rápida entre las plántulas de abeto interior descongeladas que entre las congeladas. El desempeño en campo no difirió entre las plántulas descongeladas y congeladas.

Véase también

Referencias

  1. Fundamentos de horticultura - Simson, Straus. Oxford Book Company, Edición 2010
  2. 1 2 Granberry, Darbie M; Colditz, Paul (1990). "Trasplantes" . Producción comercial de pimienta . Universidad de Georgia. Archivado del original el 26 de noviembre de 2016. Recuperado el 21 de diciembre de 2013 .
  3. Smith, Shane (2000). Guía del jardinero de invernadero: Cultivo de alimentos y flores en invernadero o espacio solar . Fulcrum Publishing. págs. 133–135 . ISBN  978-1-55591-450-9.
  4. 1 2 Schrader, Wayne L. (2000). Publicación 8013: Uso de trasplantes en la producción de hortalizas . Publicaciones de UCANR (Universidad de California, División de Agricultura y Recursos Naturales). pág. 3. ISBN  978-1-60107-193-4.
  5. Tinus, RW; McDonald, SE 1979. Cómo cultivar plántulas de árboles en contenedores en invernaderos. USDA, For. Serv., Rocky Mountain For. Range Exp. Sta., Fort Collins CO, Gen. Tech. Rep. RM-60. 256 p. (Citado en Nienstaedt y Zasada 1990).
  6. Hocking, D.; Mitchell, DL 1975. Influencia del volumen de enraizamiento, el espaciamiento de las plántulas y la densidad del sustrato en el crecimiento en invernadero del pino contorta, el abeto blanco y el abeto de Douglas cultivados en cilindros de turba extruida. Can. J. For. Res. 5:440–451. [hj, Coates et al. 1994]
  7. Carlson, LW; Endean, F. 1976. El efecto del volumen de enraizamiento y la configuración del contenedor en el crecimiento temprano de plántulas de abeto blanco. Can. J. For. Res. 6:221–225.
  8. 1 2 3 4 Coates, KD; Haeussler, S.; Lindeburgh, S.; Pojar, R.; Stock, AJ 1994. Ecología y silvicultura del abeto interior en la Columbia Británica. Acuerdo de Asociación Canadá/Columbia Británica para el Desarrollo de Recursos, Victoria BC, Informe FRDA 220. 182 p.
  9. 1 2 Van Eerden, E.; Gates, JW 1990. Producción y procesamiento de plántulas: contenedor. págs. 226–234 en Lavender, DP; Parish, R.; Johnson, CM; Montgomery, G.; Vyse, A.; Willis, RA; Winston, D. (Eds.). Regeneración de los bosques de la Columbia Británica. Univ. BC Press, Vancouver BC. (Citado en Coates et al. 1994)
  10. 1 2 Ronco, F. 1972a. Plantación de abeto Engelmann. USDA, Servicio Forestal, Fort Collins, CO, Documento de Investigación RM-89. 24 págs.
  11. Binder, WD; Fielder, P. 1988. Los efectos de las temperaturas elevadas posteriores al almacenamiento en la fisiología y supervivencia de plántulas de abeto blanco. págs. 122–126 en Landis, TD (Coord. Técnico). Actas de la Reunión Combinada de las Asociaciones de Viveros Forestales del Oeste. USDA, Servicio Forestal, Estación Experimental de Pastizales de Rocky Mount, Fort Collins, CO, Informe Técnico General RM-167. 227 págs.
  12. Mitchell, WK; Dunsworth, G.; Simpson, DF; Vyse, A. 1980. Plantación y siembra. págs. 235–253 en Lavender, DP, Parish, R., Johnson, CM, Montgomery, G., Vyse, A., Willis, RA; Winston, E. (Eds.). Regeneración de los bosques de la Columbia Británica. Univ. BC Press, Vancouver BC. [Coates et al. 1994]
  13. Ronco, F. 1972b. Plantación de abeto de Engelmann: una guía de campo. USDA, For. Serv., Fort Collins CO, Res. Pap. RM-89A. 11 p.
  14. Camm, EL; Guy, RD; Kubien, DS; Goetze, DC; Silim, SN; Burton, PJ 1995. Recuperación fisiológica de plántulas de abeto blanco y abeto de Engelmann almacenadas en congelación y plantadas tras diferentes regímenes de descongelación. New For. 10(1):55–77.
  15. 1 2 Silem, SN; Guy, RD 1998. Influencia de la duración del deshielo en el rendimiento de plántulas de coníferas. pág. 155–162 en Kooistra, CM (Coord. Técnico). Actas de las reuniones anuales de 1995, 1996 y 1997 de la Asociación de Viveros Forestales de BC, Asociación de Viveros Forestales de BC, Vernon BC.
  16. Ritchie, GA; Roden, JR; Kleyn, N. 1985. Calidad fisiológica de plántulas de pino contorta y abeto interior: efectos de la fecha de extracción y la duración del almacenamiento en congelador. Can. J. For. Res. 15(4):636–645.
  17. Chomba, BM; Guy, RD; Weger, HG 1993. Acumulación y agotamiento de reservas de carbohidratos en el abeto de Engelmann ( Picea engelmannii Parry): efectos del almacenamiento en frío y el enriquecimiento con CO2 previo al almacenamiento. Tree Physiol. 13:351–364.
  18. Harper, GJ; Camm, EL 1993. Efectos de la duración del almacenamiento en congelación y la temperatura del suelo sobre la conductancia estomática y la fotosíntesis neta de plántulas de Picea glauca . Can. J. For. Res. 23(12):2459–2466.
  19. Camm, EL; Goetze, DC; Silim, SN; Lavender, DP 1994. Almacenamiento en frío de plántulas de coníferas: una actualización desde la perspectiva de la Columbia Británica. For. Chron.70:311–316.
  20. McKay, HM 1997. Una revisión del efecto de las tensiones entre el desprendimiento y la plantación en la calidad y el rendimiento de las plantas de vivero. New For. 13(1–3):369–399.
  21. 1 2 Kooistra, CM; Bakker, JD 2002. Plantación de plántulas de coníferas congeladas: tendencias de calentamiento y efectos en el rendimiento de las plántulas. New For. 23:225–237.
  22. Wang, Y.; Zwiazek, JJ 1999. Efectos de la fotosíntesis temprana de primavera sobre el contenido de carbohidratos, el brote de yemas y el crecimiento de raíces y tallos de plántulas de Picea glauca a raíz desnuda. Scand. J. For. Res. 14:295–302.
  23. Ogren, E. 1997. Relación entre la temperatura, la pérdida respiratoria de azúcar y el endurecimiento prematuro en plántulas de pino silvestre en estado de latencia. Fisiología de los árboles 17:47–51.
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