
En genética , la recombinación Flp- FRT es una tecnología de recombinación dirigida a sitios específicos , cada vez más utilizada para manipular el ADN de un organismo en condiciones controladas in vivo . Es análoga a la recombinación Cre- lox , pero implica la recombinación de secuencias entre sitios cortos de reconocimiento de flippasa ( FRT ) mediante la recombinasa flippasa ( Flp ) derivada del plásmido 2μ de la levadura de panadería Saccharomyces cerevisiae .
La secuencia mínima del sitio FRT de 34 pb tiene la siguiente secuencia:
- 5'GAAGTTCCTATTC tctagaaa GAATAGGAACTTC3'
para lo cual la flippasa (Flp) se une a ambos brazos 5'-GAAGTTCCTATTC-3' de 13 pb que flanquean el espaciador de 8 pb, es decir, la recombinación específica del sitio (región de entrecruzamiento) en orientación inversa. La escisión mediada por FRT ocurre justo delante de la región central asimétrica de 8 pb ( 5'tctagaaa3' ) en la hebra superior y detrás de esta secuencia en la hebra inferior. [ 1 ] Existen varios sitios FRT variantes, pero la recombinación generalmente solo puede ocurrir entre dos FRT idénticos , pero generalmente no entre FRT no idénticos ("heteroespecíficos") . [ 2 ] [ 3 ]
Función biológica
En la levadura, esta enzima corrige las disminuciones en el número de copias del plásmido 2μ causadas por eventos raros de segregación errónea. Lo hace provocando la recombinación entre las dos repeticiones invertidas del plásmido 2μ durante la replicación del ADN . Esto cambia la dirección de una horquilla de replicación, lo que provoca múltiples rondas de copia en una sola iniciación. [ 4 ]
Mutaciones de la secuencia del sitio FRT
Senecoff et al. (1987) investigaron cómo las sustituciones de nucleótidos dentro del FRT afectaban la eficacia de la recombinación mediada por FLP. Los autores indujeron sustituciones de bases en uno o ambos sitios del FRT y probaron la concentración de FLP necesaria para observar recombinaciones sitio-específicas. Cada sustitución de base se realizó en cada uno de los trece nucleótidos dentro del sitio del FRT (por ejemplo, G a A, T y C). Primero, los autores demostraron que la mayoría de las mutaciones dentro de la secuencia del FRT causan efectos mínimos si están presentes en solo uno de los dos sitios. Si las mutaciones ocurrieron en ambos sitios, la eficiencia del FLP se reduce drásticamente. Segundo, los autores proporcionaron datos sobre qué nucleótidos son más cruciales para la unión del FLP y la eficacia de la recombinación sitio-específica. Si el primer nucleótido en ambos sitios FRT se sustituye por una citosina (G a C), el tercer nucleótido se sustituye por una timina (A a T), o el séptimo nucleótido se sustituye por una adenosina (G a A), entonces la eficacia de la recombinación sitio-específica mediada por FLP se reduce más de 100 veces. [ 5 ] Mientras que una sustitución de base de cualquiera de los nucleótidos mencionados en solo uno de los sitios FRT condujo a una reducción de la eficacia de diez veces, diez veces y cinco veces, respectivamente. [ 5 ]
Las sustituciones de bases en los nucleótidos en mayúscula dieron lugar a la mayor reducción en la recombinación sitio-específica mediada por FLP (tipo silvestre x mutante y mutante x mutante):
- 5'GaAtagGaacttc3' [ 5 ]
Muchas construcciones disponibles incluyen secuencias de brazos adicionales (5'-GAAGTTCCTATTCC-3') a un par de bases del elemento anterior y en la misma orientación:
- 5'GAAGTTCCTATTC c GAAGTTCCTATTC tctagaaa G t ATAGGAACTTC3'
Este segmento es prescindible para la escisión pero esencial para la integración, incluido el intercambio de casetes mediado por recombinasa . [ 6 ]
Debido a que la actividad de recombinación puede dirigirse a un órgano específico, o bien, se puede utilizar un nivel bajo de actividad de recombinación para alterar de forma consistente el ADN de solo un subconjunto de células, Flp- FRT puede utilizarse para construir mosaicos genéticos en organismos multicelulares. Mediante esta tecnología , se puede estudiar la pérdida o alteración de un gen en un órgano diana de interés, incluso en casos en los que los animales de experimentación no sobrevivirían a la pérdida de este gen en otros órganos ( control espacial ). El efecto de la alteración de un gen también puede estudiarse a lo largo del tiempo, utilizando un promotor inducible para activar la actividad de recombinación en etapas tardías del desarrollo ( control temporal ); esto previene la alteración.
Estructura bioquímica de Flp y mecanismo de acción
Estructura bioquímicamente relevante y sitio activo
La proteína Flp, al igual que Cre, es una recombinasa sitio-específica de la familia de la tirosina. [ 7 ] Esta familia de recombinasas realiza su función a través de un mecanismo de topoisomerasa tipo IB que causa la recombinación de dos hebras separadas de ADN. [ 7 ] La recombinación se lleva a cabo mediante un proceso repetido de dos pasos. El paso inicial causa la creación de un intermedio de unión de Holliday . El segundo paso promueve la recombinación resultante de las dos hebras complementarias. Como sugiere su nombre de familia, un nucleófilo de tirosina altamente conservado escinde las hebras de ADN. [ 7 ] Las propiedades nucleofílicas de la tirosina atacan y se unen al fosfato 3' en el punto de escisión del ADN. [ 7 ] El grupo hidroxilo 5' resultante del ADN escindido actúa como nucleófilo y ataca el fosfato 3' en la hebra de ADN escindida complementariamente, lo que resulta en una recombinación exitosa. [ 7 ] Fuera del residuo de tirosina, hay una pentada catalítica conservada. Esta pentada está compuesta por una lisina (Lysβ), dos argininas (Arg I y II), una histidina (His-II) y una histidina/triptófano (His/Trp-III) que comprende una constelación de residuos obligatoria y altamente conservada para el sitio activo de Flp y Cre (junto con otras topoisomerasas IB). [ 7 ] Estos otros residuos son cruciales para la correcta orientación de la unión de Flp y su posicionamiento en las hebras de ADN.
Aplicación de la recombinación sitio-específica mediada por FLP
Problemas iniciales
Termolabilidad
La aplicación inicial de la recombinasa FLP-FRT no funcionó en mamíferos. La proteína FLP era termolábil (se desnaturalizaba a temperaturas elevadas) y, por lo tanto, no era útil en el modelo de mamíferos debido a las altas temperaturas corporales de estos sistemas modelo. Sin embargo, debido a las patentes y las restricciones en el uso de la recombinación Cre-Lox, se despertó gran interés en producir un casete FLP-FRT más termoestable. Algunos de los primeros resultados fueron obtenidos por Buchholz et al. (1997) mediante mutagénesis cíclica en Escherichia coli . En su investigación, los autores transfectaron células de E. coli con dos plásmidos: uno que codificaba proteínas FLP mutadas aleatoriamente aguas abajo de un promotor de arabinosa y otro que contenía un promotor del gen lacZ dentro de un casete FRT. Las células de E. coli se cultivaron en placas de arabinosa a 37 °C y 40 °C, y si ocurría la recombinación, la expresión de lacZ se atenuaba y las colonias aparecían blancas. Se seleccionaron colonias blancas de cada generación y se cultivaron en nuevas placas de arabinosa a las mismas temperaturas anteriores durante ocho generaciones. [ 8 ] Después de que se confirmó la recombinación mediante Western blot y se secuenciaron los genes FLP mutados, esta proteína FLP de octava generación (FLPe) se transfectó en un cultivo de células de mamíferos y se confirmó la recombinación en células de mamíferos. [ 8 ] Esta variante de FLP solo tiene 4 sustituciones de aminoácidos: P2S, L33S, Y108N y S294P.
Generación de mosaicos genéticos
El mosaicismo genético se produce en un organismo cuando tipos celulares similares expresan fenotipos diferentes debido a genotipos distintos en loci específicos. En pocas palabras, esto ocurre cuando un organismo contiene genotipos diferentes, lo cual suele ser raro en la naturaleza. Sin embargo, esto puede producirse fácilmente (y de forma problemática) mediante la recombinación FLP-FRT. Si hay dos sitios FRT diferentes en una célula y FLP está presente en concentraciones adecuadas, el casete FRT se seguirá escindiendo e insertando entre los dos sitios FRT. Este proceso continuará hasta que las proteínas FLP disminuyan por debajo de las concentraciones requeridas, lo que dará lugar a células dentro de un organismo con genotipos diferentes. [ 9 ] Esto se ha observado desde moscas de la fruta hasta ratones y no discrimina entre cromosomas específicos (somáticos y sexuales) o tipos celulares (somáticos y germinales). [ 9 ] [ 10 ]
Determinación de los linajes celulares
Antes de la publicación de Dymecki et al . (1998), la recombinasa Cre se había utilizado para el mapeo del destino celular de progenitores neuronales en ratones utilizando el promotor En2 . [ 11 ] Por lo tanto, los autores de Dymecki et al . (1998) teorizaron que la recombinasa FLP podría utilizarse de manera similar con una eficacia similar a la de la recombinasa Cre en ratones. Los autores crearon dos líneas de ratones transgénicos: una línea de fusión neuronal Wnt1::Flp y una línea que poseía el casete FRT flanqueando el exón 18 de tm1Cwr . [ 9 ] Los autores eligieron este exón para la escisión porque si se escinde, da como resultado un fenotipo nulo. Los autores cruzaron las dos líneas y permitieron que la progenie alcanzara la edad adulta antes de sacrificarla. Se realizó la extracción de ARN en tejido neuronal, muscular, entérico y de la cola. La PCR de transcripción inversa y la transferencia Northern confirmaron la escisión del exón 18 de tm1Cwr de forma abundante en el tejido cerebral y moderada en el tejido muscular (debido a las células de Schwann presentes en el músculo). Como era de esperar, no se observó escisión en otros tejidos. Los autores observaron una eficiencia igual, o incluso superior, de la recombinasa FLP en la determinación del destino celular en comparación con la recombinasa Cre.
En Drosophila melanogaster (mosca de la fruta)
Hasta la fecha, la recombinasa Flp se ha utilizado muchas veces en D. melanogaster. Una comparación de la recombinasa Flp con la recombinasa Cre en D. melanogaster fue publicada por Frickenhaus et al. (2015) [ 12 ] . Los autores de Frickenhaus et al. (2015) tenían un objetivo doble: caracterizar y comparar la eficacia de la "eliminación" de la recombinasa Flp con la "eliminación" de la recombinasa Cre y el silenciamiento por RNAi y revelar la función de cabeza (caz), el ortólogo de la mosca de FUS , en las neuronas y el tejido muscular de D. melanogaster . FUS ha sido fuertemente implicado en la esclerosis lateral amiotrófica (ELA) y la demencia frontotemporal en humanos [ 12 ] . Los autores utilizaron un sistema elav - Gal4/UAS -Flp o Cre para expresar la recombinasa específicamente en neuronas y un sistema Mef2 -Gal4/UAS-Flp o Cre para expresarla específicamente en músculos. [ 12 ] Los autores concluyen que la herramienta de "eliminación" de la recombinasa Flp es más eficaz que la recombinasa Cre y la de ARN de interferencia (ARNi) para la eliminación de genes específicos en tejidos o líneas celulares específicas, debido a la ausencia de la expresión basal observada tanto en la proteína Cre como en el transcrito de ARNi. Además, los autores observaron una toxicidad en la proteína Cre que no se observa con la proteína Flp. [ 12 ]
En Danio rerio (pez cebra)
La eficacia del sistema de recombinasa FLPe fue evaluada en pez cebra por Wong et al. (2009). [ 13 ] Se inyectó la proteína FLPe a embriones hemicigotos para una proteína fluorescente verde mejorada (EGFP) flanqueada por FRT, aguas abajo de un promotor específico de músculo. Sin FLPe, estos embriones deberían expresar EGFP en todo el tejido muscular, y si se cruzan con una cepa de tipo silvestre, el 50% de la progenie resultante también debería expresar EGFP en el tejido muscular. Los embriones inyectados con FLPe mostraron una expresión significativamente reducida de EGFP en el tejido muscular, y también se observó mosaicismo. [ 13 ] Cuando estos embriones alcanzaron la edad adulta, se cruzaron con una cepa de tipo silvestre, y las puestas resultantes tuvieron una progenie significativamente menor que expresaba EGFP en el tejido muscular (0-4%). [ 13 ] Estos resultados muestran que FLPe no solo es altamente eficaz en células somáticas, sino que también es altamente eficaz en la línea germinal del pez cebra.
En las plantas
Creación de "fitosensores" o "centinelas" en Arabidopsis thaliana y tabaco.
Los fitosensores son plantas genéticamente modificadas que pueden informar sobre la presencia de contaminantes bióticos o abióticos. [ 14 ] La producción de estas plantas modificadas tiene un gran potencial agrícola y de laboratorio. Sin embargo, la creación de un vector reportero apropiado ha demostrado ser problemática. Los elementos cis -reguladores juegan un papel importante en la activación transcripcional de genes en plantas, y muchos no se comprenden bien. Muchos fitosensores subexpresan sus genes reporteros o informan falsos positivos debido a promotores sintéticos. [ 14 ] Los autores de Rao et al. (2010) utilizaron la herramienta de recombinasa FLP para la producción de un fitosensor altamente eficiente. Los autores utilizaron un promotor de choque térmico para inducir la producción de FLP mientras que un vector flanqueado por FRT separó el promotor CaMV 35S del gen de la beta-glucuronidasa (GUS). Cuando las plantas fueron expuestas a un choque térmico, la inducción de FLP provocó la escisión del vector flanqueado por FRT, desplazando efectivamente el gen GUS directamente corriente abajo del promotor CaMV 35S. La activación de GUS hizo que las hojas de las plantas cambiaran de verde a azul; por lo tanto, el fitosensor informó eficazmente del estrés al sistema modelo. [ 14 ]
Con la recombinasa Cre
Producción del sistema de expresión de miRNA inducible listo para la puerta de entrada (GRIM)
La interferencia de ARN (ARNi) ha provocado un cambio de paradigma en la expresión de genes y posibles inactivaciones génicas en eucariotas. Antes de la producción del sistema de expresión GRIM, la creación de vectores de ARNi era costosa y requería mucho tiempo. Los vectores se producían mediante el método tradicional de clonación molecular de copiar y pegar. [ 15 ] Garwick-Coppens et al . (2011) desarrollaron un método mucho más eficiente para la producción de vectores de ARNi en el que la expresión del ARNi puede insertarse utilizando la recombinasa Cre y eliminarse utilizando la recombinasa Flp. El novedoso sistema de expresión GRIM permite la generación mucho más rápida de vectores de expresión que contienen construcciones artificiales de ARNi. [ 15 ] Los autores demostraron además que su sistema de expresión funciona de manera bastante eficaz en células de riñón embrionario humano (HEK), una línea celular humana inmortalizada común en la investigación molecular.
Véase también
Referencias
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Enlaces externos
- Recombinasa Flp-FRT: Mecanismo de acción
- Vídeo sobre la utilización de la recombinasa Flp-FRT en el fotorreceptor de D. melanoster
- Aplicación de FLP en la mutagénesis de Vibrio cholerae
- Técnicas genéticas
- Genética molecular