Articulo de referencia

Luz roja lejana

El espectro visible ; el rojo lejano se encuentra en el extremo derecho. La luz roja lejana es un rango de luz en el extremo rojo del espectro visible , justo antes de la luz in...

El espectro visible ; el rojo lejano se encuentra en el extremo derecho.

La luz roja lejana es un rango de luz en el extremo rojo del espectro visible , justo antes de la luz infrarroja . Generalmente considerada como la región entre 700 y 750 nm de longitud de onda , es débilmente visible para el ojo humano. Es reflejada o transmitida en gran medida por las plantas debido al espectro de absorción de la clorofila , y es percibida por el fotorreceptor vegetal fitocromo . Sin embargo, algunos organismos pueden usarla como fuente de energía en la fotosíntesis. [ 1 ] [ 2 ] [ 3 ] La luz roja lejana también es utilizada para la visión por ciertos organismos como algunas especies de peces de aguas profundas [ 4 ] [ 5 ] y la gamba mantis .

En horticultura

Las plantas perciben la luz a través de fotorreceptores internos que absorben una longitud de onda específica señalizando ( fotomorfogénesis ) o transfiriendo la energía a un proceso de la planta ( fotosíntesis ). [ 6 ] En las plantas, los fotorreceptores criptocromo y fototropina absorben radiación en las regiones azul y UV/A del espectro (λ=340-500 nm) y regulan la inhibición del hipocótilo, el tiempo de floración y el fototropismo [ 7 ] , mientras que los fotorreceptores fitocromo absorben en las regiones roja (R: λ=630–700 nm) y rojo lejano (FR: λ=700-750 nm) e influyen en muchos aspectos del desarrollo de la planta, como la germinación, la etiolación de las plántulas, la transición a la floración, la evitación de la sombra y los tropismos. [ 8 ] El fitocromo tiene la capacidad de intercambiar su conformación según la cantidad o calidad de luz que percibe y lo hace a través de la fotoconversión de fitocromo rojo (Pr) a fitocromo rojo lejano (Pfr). [ 9 ] Pr es la forma inactiva del fitocromo, lista para percibir la luz roja. En un entorno de alta R:FR, Pr cambia de conformación a la forma activa del fitocromo Pfr. Una vez activo, Pfr se transloca al núcleo celular, se une a los factores de interacción del fitocromo (PIF) y dirige los PIF al proteasoma para su degradación. Expuesto a un entorno de baja R:FR, Pfr absorbe FR y cambia de conformación de nuevo a la Pr inactiva. La conformación inactiva permanecerá en el citosol, lo que permite que los PIF se dirijan a su sitio de unión en el genoma e induzcan la expresión (es decir, evitación de la sombra a través de la elongación celular). [ 10 ] La irradiación FR puede provocar una inmunidad vegetal comprometida y una mayor susceptibilidad a los patógenos. [ 11 ]

La FR se ha considerado durante mucho tiempo un aporte mínimo en la fotosíntesis. A principios de la década de 1970, el doctor en física y profesor de cultivos del suelo Keith J. McCree abogó por una definición estándar de radiación fotosintéticamente activa (PAR: λ=400–700 nm) que no incluía la FR. [ 12 ] Más recientemente, los científicos han proporcionado evidencia de que un espectro más amplio llamado radiación fotobiológicamente activa (PBAR: λ=280–800 nm) es una terminología más aplicable. [ 13 ] Este rango de longitudes de onda no solo incluye FR, sino también UV-A y UV-B. El efecto Emerson estableció que la tasa de fotosíntesis en algas rojas y verdes era mayor cuando se exponían a R y FR que la suma de las dos individualmente. [ 14 ] Esta investigación sentó las bases para la elucidación de los fotosistemas duales en las plantas. El fotosistema I (PSI) y el fotosistema II (PSII) trabajan sinérgicamente; a través de procesos fotoquímicos, el PSII transporta electrones al PSI. Cualquier desequilibrio entre R y FR conduce a una excitación desigual entre PSI y PSII, reduciendo así la eficiencia de la fotoquímica. [ 15 ] [ 16 ]

Véase también

Referencias

Citas

  1. Consoli, Giovanni; Tufail, Fiazall; Leong, Ho Fong; Viola, Stefania; Davis, Geoffry A.; Rew, Nicholas; Medranda, Daniel; Hofer, Michael; Simpson, Paul; Sandrin, Marco; Chachuat, Benoit; Nelson, Jenny; Renger, Thomas; Murray, James W.; Fantuzzi, Andrea (2025-12-11). "Localización de las clorofilas faltantes f en el fotosistema I de rojo lejano" . Science . 390 (6778). doi : 10.1126/science.ado6830 . ISSN 0036-8075 . PMID 41066538 .  
  2. ^ Pettai, Hugo; Oja, Vello; Freiberg, Arvi; Laisk, Agu (2005). "Actividad fotosintética de la luz roja lejana en plantas verdes" . Biochimica et Biophysica Acta (BBA) - Bioenergética . 1708 (3): 311– 21. doi : 10.1016/j.bbabio.2005.05.005 . PMID 15950173 . 
  3. Oquist, Gunnar (1969). "Adaptaciones en la composición de pigmentos y fotosíntesis por radiación roja lejana en Chlorella pyrenoidosa". Physiologia Plantarum . 22 (3): 516– 528. Bibcode : 1969PPlan..22..516O . doi : 10.1111/j.1399-3054.1969.tb07406.x .
  4. Douglas, RH; Partridge, JC; Dulai, K.; Hunt, D.; Mullineaux, CW; Tauber, AY; Hynninen, PH (1998). "Los peces dragón ven usando clorofila". Nature . 393 (6684): 423. Bibcode : 1998Natur.393..423D . doi : 10.1038/30871 . S2CID 4416089 . 
  5. "Científicos descubren un microbio único en el lago más grande de California" . ScienceDaily . 11 de enero de 2005.
  6. Sager, JC; Smith, WO; Edwards, JL; Cyr, KL (1988). "Determinación de la eficiencia fotosintética y los fotoequilibrios del fitocromo mediante datos espectrales". Transactions of the ASAE . 31 (6): 1882– 1889. doi : 10.13031/2013.30952 .
  7. Lin, Chentao (2000). "Receptores de luz azul en plantas". Trends in Plant Science . 5 (8): 337– 42. Bibcode : 2000TPS.....5..337L . doi : 10.1016/S1360-1385(00)01687-3 . PMID 10908878 . 
  8. Taiz, Lincoln; Zeiger, Eduardo (2010). Fisiología vegetal (5.ª ed.). Sunderland, Massachusetts: Sinaur Associates, Inc. 
  9. Heyes, Derren; Khara, Basile; Sakuma, Michiyo; Hardman, Samantha; O'Cualain, Ronan; Rigby, Stephen; Scrutton, Nigel (2012). "La activación ultrarrápida con luz roja del fitocromo Cph1 de Synechocystis desencadena un cambio estructural importante para el estado competente de señalización Pfr" . PLOS ONE . 7 (12) e52418. Bibcode : 2012PLoSO...752418H . doi : 10.1371/journal.pone.0052418 . PMC 3530517. PMID 23300666 .  
  10. Frankhauser, Christian (2001). "Los fitocromos, una familia de fotorreceptores que absorben rojo/rojo lejano" . The Journal of Biological Chemistry . 276 (15): 11453– 6. doi : 10.1074/jbc.R100006200 . PMID 11279228 . 
  11. Courbier, Sarah; Grevink, Sanne; Sluijs, Emma; Bonhomme, Pierre-Olivier; Kajala, Kaisa; Van Wees, Saskia CM; Pierik, Ronald (24 de agosto de 2020). "La luz roja lejana promueve el desarrollo de la enfermedad Botrytis cinerea en hojas de tomate a través de la modulación dependiente de jasmonato de azúcares solubles" . Plant, Cell & Environment . 43 (11): 2769– 2781. Bibcode : 2020PCEnv..43.2769C . doi : 10.1111/pce.13870 . PMC 7693051. PMID 32833234 .  
  12. McCree, Keith (1972). "El espectro de acción, la absorbancia y el rendimiento cuántico de la fotosíntesis en plantas cultivadas". Meteorología Agrícola . 9 : 191–216 . doi : 10.1016/0002-1571(71)90022-7 .
  13. Dӧrr, Oliver; Zimmermann, Benno; Kӧgler, Stine; Mibus, Heiko (2019). "Influencia de la temperatura de la hoja y la luz azul en la acumulación de ácido rosmarínico y otros compuestos fenólicos en Plectranthus scutellarioides (L.)". Environmental and Experimental Botany . 167 103830. Bibcode : 2019EnvEB.16703830D . doi : 10.1016/j.envexpbot.2019.103830 . S2CID 201211911 . 
  14. Emerson, Robert; Chalmers, Ruth; Cederstrand, Carl (1957). "Algunos factores que influyen en el límite de onda larga de la fotosíntesis" . Actas de la Academia Nacional de Ciencias . 43 (1): 133– 143. Bibcode : 1957PNAS...43..133E . doi : 10.1073/pnas.43.1.133 . PMC 528397. PMID 16589986 .  
  15. Zhen, S.; van Iersel, Marc W. (2017). "La luz roja lejana es necesaria para una fotoquímica y fotosíntesis eficientes" . Journal of Plant Physiology . 209 : 115–122 . Bibcode : 2017JPPhy.209..115Z . doi : 10.1016/j.jplph.2016.12.004 . PMID 28039776 . 
  16. Pocock, Tessa. "La curva de McCree desmitificada" . Biophotonics . Consultado el 10 de octubre de 2019 .

Fuentes generales

  • Fei Gan, Shuyi Zhang, Nathan C. Rockwell, Shelley S. Martin, J. Clark Lagarias, Donald A. Bryant (12 de septiembre de 2014). " Remodelación extensa de un aparato fotosintético de cianobacterias en luz roja lejana" . Science . 345 (6202): 1312– 1317. Bibcode : 2014Sci...345.1312G . doi : 10.1126/science.1256963 . PMID 25214622. S2CID 206559762 .  {{cite journal}}: CS1 maint: varios nombres: lista de autores ( enlace )
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