La eliminación de genes (también conocida como deleción o inactivación génica ) es una técnica de ingeniería genética muy utilizada que consiste en la eliminación o inactivación selectiva de un gen específico dentro del genoma de un organismo. Esto se puede lograr mediante diversos métodos, como la recombinación homóloga , CRISPR-Cas9 y TALEN .
Una de las principales ventajas de la inactivación génica es que permite a los investigadores estudiar la función de un gen específico in vivo y comprender su papel en el desarrollo y la fisiología normales, así como en la patología de diversas enfermedades. Al estudiar el fenotipo del organismo con el gen inactivado, los investigadores pueden obtener información sobre los procesos biológicos en los que interviene dicho gen.
Existen dos tipos principales de inactivación génica: completa y condicional. La inactivación génica completa desactiva el gen de forma permanente, mientras que la inactivación génica condicional permite activar y desactivar el gen en momentos específicos o en tejidos específicos. Las inactivaciones génicas condicionales son particularmente útiles para estudiar los procesos de desarrollo y comprender la función de un gen en tipos celulares o tejidos específicos.
La eliminación de genes se ha utilizado ampliamente en diversos organismos, como bacterias , levaduras , peces cebra , Drosophila melanogaster y ratones . En ratones, esta técnica se emplea comúnmente para estudiar la función de genes específicos en el desarrollo, la fisiología y la investigación del cáncer.
El uso de la inactivación génica en modelos de ratón ha sido particularmente valioso para el estudio de enfermedades humanas. Por ejemplo, la inactivación génica en ratones se ha utilizado para estudiar el papel de genes específicos en el cáncer, los trastornos neurológicos, los trastornos inmunitarios y los trastornos metabólicos.
Sin embargo, la inactivación génica también presenta algunas limitaciones. Por ejemplo, la pérdida de un solo gen puede no reproducir completamente los efectos de un trastorno genético, y la inactivación génica puede tener efectos no deseados en otros genes o vías metabólicas. Además, la inactivación génica no siempre constituye un buen modelo para las enfermedades humanas, ya que el genoma del ratón no es idéntico al genoma humano y la fisiología del ratón difiere de la fisiología humana.
La técnica KO es esencialmente lo opuesto a la inserción de genes . La inactivación simultánea de dos genes en un organismo se conoce como inactivación doble ( DKO ). De manera similar, los términos inactivación triple ( TKO ) e inactivación cuádruple ( QKO ) se utilizan para describir la inactivación de tres o cuatro genes, respectivamente. Sin embargo, es necesario distinguir entre inactivaciones heterocigotas y homocigotas . En las primeras, solo se inactiva una de las dos copias del gen ( alelos ), mientras que en las segundas se inactivan ambas.
Métodos
Las inactivaciones génicas se logran mediante diversas técnicas. Originalmente, se identificaban mutaciones naturales y luego se establecía la pérdida o inactivación del gen mediante secuenciación de ADN u otros métodos. [ 1 ]

Eliminación de un gen por mutación
La eliminación de genes mediante mutación se realiza comúnmente en bacterias. Un ejemplo temprano del uso de esta técnica en Escherichia coli fue publicado en 1989 por Hamilton et al. [ 2 ]. En este experimento, se utilizaron dos recombinaciones secuenciales para eliminar el gen. Este trabajo demostró la viabilidad de eliminar o reemplazar un gen funcional en bacterias. Desde entonces, este método se ha desarrollado para otros organismos, en particular animales de investigación, como los ratones. Los ratones knockout se utilizan comúnmente para estudiar genes con equivalentes humanos que pueden tener relevancia para enfermedades. Un ejemplo de estudio con ratones knockout es la investigación de las funciones de las proteínas Xirp en el síndrome de muerte súbita nocturna inexplicada (SUNDS) y el síndrome de Brugada en la población china Han. [ 3 ]
Silenciamiento genético
Para las investigaciones de inactivación génica, la interferencia de ARN (ARNi), un método más reciente, también conocido como silenciamiento génico, ha ganado popularidad. En la interferencia de ARN (ARNi), el ARN mensajero de un gen específico se inactiva mediante ARN de interferencia pequeño (siRNA) o ARN de horquilla corta (shRNA). Esto impide eficazmente la expresión del gen. Oncogenes como bcl-2 y p53 , así como genes relacionados con enfermedades neurológicas, trastornos genéticos e infecciones virales, han sido objeto de silenciamiento génico mediante interferencia de ARN (ARNi). [ 4 ]
Recombinación homóloga
La recombinación homóloga es el intercambio de genes entre dos cadenas de ADN que incluyen extensas regiones de secuencias de bases idénticas. En especies eucariotas, bacterias y algunos virus, la recombinación homóloga ocurre espontáneamente y es una herramienta útil en ingeniería genética. La recombinación homóloga, que tiene lugar durante la meiosis en eucariotas, es esencial para la reparación de roturas de doble cadena de ADN y promueve la variación genética al permitir el movimiento de información genética durante el entrecruzamiento cromosómico. La recombinación homóloga, un mecanismo clave de reparación del ADN en bacterias, permite la inserción de material genético adquirido mediante transferencia horizontal de genes y su transformación en ADN. La recombinación homóloga en virus influye en el curso de la evolución viral. La recombinación homóloga, un tipo de manipulación genética utilizada en ingeniería genética, implica la introducción de una mutación diseñada en un gen específico para obtener más información sobre su función. Este método consiste en insertar ADN extraño en una célula que tiene una secuencia similar al gen objetivo, flanqueada por secuencias idénticas aguas arriba y aguas abajo del gen objetivo. El ADN del gen objetivo se sustituye por la secuencia de ADN extraño durante la replicación cuando la célula detecta las regiones flanqueantes similares como homólogas. El gen objetivo se "desactiva" mediante este intercambio. Al utilizar esta técnica para dirigirnos a alelos específicos en células madre embrionarias de ratones, es posible crear ratones knockout. Con la ayuda de la focalización genética, se han desactivado numerosos genes de ratón, lo que ha llevado a la creación de cientos de modelos de ratón distintos de diversas enfermedades humanas, como cáncer, diabetes, enfermedades cardiovasculares y trastornos neurológicos. Mario Capecchi, Sir Martin J. Evans y Oliver Smithies realizaron una investigación pionera sobre la recombinación homóloga en células madre de ratón y compartieron el Premio Nobel de Fisiología o Medicina de 2007 por sus hallazgos. [ 5 ] Tradicionalmente, la recombinación homóloga era el método principal para causar la desactivación de un gen. Este método consiste en crear una construcción de ADN que contiene la mutación deseada. Para fines de inactivación génica, esto generalmente implica un marcador de resistencia a fármacos en lugar del gen inactivado deseado. [ 6 ] La construcción también contendrá un mínimo de 2 kb de homología con la secuencia objetivo. La construcción se puede introducir en las células madre mediante microinyección o electroporación . Este método se basa en los mecanismos de reparación propios de la célula para recombinar la construcción de ADN con el ADN existente. Esto da como resultado la alteración de la secuencia del gen y, en la mayoría de los casos, el gen se traducirá.en una proteína no funcional , si es que se traduce. Sin embargo, este es un proceso ineficiente, ya que la recombinación homóloga representa solo de 10 −2 a 10 −3 integraciones de ADN. [ 6 ] [ 7 ] A menudo, el marcador de selección de fármacos en el constructo se utiliza para seleccionar células en las que ha ocurrido el evento de recombinación.
Estas células madre, ahora sin el gen, podrían utilizarse in vivo , por ejemplo en ratones, insertándolas en embriones tempranos. Si el ratón quimérico resultante contuviera la alteración genética en su línea germinal, esta podría transmitirse a la descendencia. [ 6 ]
En los organismos diploides , que contienen dos alelos para la mayoría de los genes y que también pueden contener varios genes relacionados que colaboran en la misma función, se realizan rondas adicionales de transformación y selección hasta que se inactiva cada gen objetivo. Puede ser necesario el cruzamiento selectivo para producir animales homocigotos con el gen inactivado.
Nucleasas específicas de sitio

Actualmente se utilizan tres métodos que implican la selección precisa de una secuencia de ADN para introducir una rotura de doble cadena. Una vez que esto ocurre, los mecanismos de reparación de la célula intentarán reparar esta rotura, a menudo mediante la unión de extremos no homólogos (NHEJ), que consiste en la ligación directa de los dos extremos cortados. [ 7 ] Esto puede hacerse de forma imperfecta, lo que a veces provoca inserciones o deleciones de pares de bases, causando mutaciones de cambio de marco de lectura . Estas mutaciones pueden hacer que el gen en el que ocurren sea no funcional, creando así una inactivación de ese gen. Este proceso es más eficiente que la recombinación homóloga y, por lo tanto, puede utilizarse más fácilmente para crear inactivaciones bialélicas. [ 7 ]
dedos de zinc
Las nucleasas de dedos de zinc constan de dominios de unión al ADN que pueden dirigirse con precisión a una secuencia de ADN. [ 7 ] Cada dedo de zinc puede reconocer codones de una secuencia de ADN deseada y, por lo tanto, puede ensamblarse modularmente para unirse a una secuencia particular. [ 9 ] Estos dominios de unión están acoplados a una endonucleasa de restricción que puede causar una ruptura de doble cadena (DSB) en el ADN. [ 7 ] Los procesos de reparación pueden introducir mutaciones que destruyen la funcionalidad del gen. [ 10 ]
TALENTOS
Las nucleasas efectoras tipo activador de la transcripción ( TALEN ) también contienen un dominio de unión al ADN y una nucleasa que puede cortar el ADN. [ 11 ] La región de unión al ADN consta de repeticiones de aminoácidos que reconocen cada una un único par de bases de la secuencia de ADN diana deseada. [ 9 ] Si este corte se dirige a una región codificante de un gen, y la reparación mediada por NHEJ introduce inserciones y deleciones, a menudo se produce una mutación de cambio de marco de lectura, lo que interrumpe la función del gen. [ 11 ]
CRISPR/Cas9
CRISPR (Repeticiones Palindrómicas Cortas Agrupadas y Regularmente Espaciadas) es una técnica de ingeniería genética que permite la edición precisa del genoma. Una aplicación de CRISPR es la eliminación de genes, que consiste en desactivar o "eliminar" un gen específico en un organismo. [ 12 ]
El proceso de inactivación génica con CRISPR consta de tres pasos principales: diseñar un ARN guía (ARNg) que se dirija a una ubicación específica en el genoma, introducir el ARNg y la enzima Cas9 (que actúa como tijeras moleculares) en la célula diana, y permitir que la célula repare el corte en el ADN. Al reparar el corte, la célula puede unir los extremos cortados, lo que da como resultado un gen no funcional, o introducir una mutación que interrumpe la función del gen.
Esta técnica puede utilizarse en diversos organismos, como bacterias, levaduras, plantas y animales , y permite a los científicos estudiar la función de genes específicos observando los efectos de su ausencia. La eliminación génica mediante CRISPR es una herramienta poderosa para comprender la base genética de las enfermedades y para desarrollar nuevas terapias.
La eliminación de genes basada en CRISPR, como cualquier técnica de ingeniería genética, tiene el potencial de producir efectos no deseados o dañinos en el organismo, por lo que debe usarse con precaución. [ 9 ] [ 13 ] El Cas9 acoplado causará una ruptura de doble cadena en el ADN. [ 9 ] Siguiendo el mismo principio que los dedos de zinc y los TALEN, los intentos de reparar estas rupturas de doble cadena a menudo resultan en mutaciones de cambio de marco que dan como resultado un gen no funcional. [ 9 ] La tecnología no invasiva CRISPR-Cas9 ha eliminado con éxito un gen asociado con la depresión y la ansiedad en ratones, siendo la primera administración exitosa que atraviesa la barrera hematoencefálica para permitir la modificación genética. [ 14 ]
Llamada de entrada
La técnica de inserción génica es similar a la de eliminación génica, pero consiste en reemplazar un gen por otro en lugar de eliminarlo.
Tipos
Eliminaciones condicionales
La eliminación condicional de un gen permite la supresión de un gen en un tejido de forma específica. Esto es necesario en lugar de la eliminación completa del gen si la mutación nula provocara la muerte embrionaria [ 15 ] o si se desea estudiar un tejido o tipo celular específico. Esto se logra introduciendo secuencias cortas llamadas sitios loxP alrededor del gen. Estas secuencias se introducen en la línea germinal mediante el mismo mecanismo que la eliminación completa. Esta línea germinal se puede cruzar con otra línea germinal que contenga la recombinasa Cre, una enzima viral que reconoce estas secuencias, las recombina y elimina el gen flanqueado por estos sitios [ 16 ] . Posteriormente, se han creado y empleado otras recombinasas en experimentos de eliminación condicional [ 17 ] .
Usar

Los organismos modificados genéticamente (knockouts) se utilizan principalmente para comprender la función de un gen o región de ADN específica , comparando el organismo modificado con un organismo de tipo silvestre con un trasfondo genético similar . [ 18 ]
Los organismos knockout también se utilizan como herramientas de cribado en el desarrollo de fármacos , para dirigirse a procesos biológicos o deficiencias específicas mediante el uso de un knockout específico, o para comprender el mecanismo de acción de un fármaco mediante el uso de una biblioteca de organismos knockout que abarcan todo el genoma , como en Saccharomyces cerevisiae . [ 19 ]
Véase también
Referencias
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- ↑ "YeastDeletionWebPages" . Archivado del original el 29 de septiembre de 2012. Consultado el 21 de febrero de 2017 .
Enlaces externos
- Diagrama de reemplazo genético dirigido
- Base de datos de genes inactivados de Frontiers in Bioscience (disponible solo en el archivo)
- Consorcio Internacional de Ratones Knockout
- Repositorio KOMP
- organismos genéticamente modificados
- Técnicas de biología molecular
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