Articulo de referencia

ARN largo no codificante

Diferentes tipos de ARN largos no codificantes. [ 1 ] Los ARN largos no codificantes ( ARNnc largos , lncRNA ) son un tipo de ARN, generalmente definido como transcripciones de ...

Diferentes tipos de ARN largos no codificantes. [ 1 ]

Los ARN largos no codificantes ( ARNnc largos , lncRNA ) son un tipo de ARN, generalmente definido como transcripciones de más de 200 nucleótidos que no se traducen en proteínas. [ 2 ] Este límite arbitrario distingue a los ARNnc largos de los ARN pequeños no codificantes, como los microARN (miRNA), los ARN de interferencia pequeños (siRNA), los ARN que interactúan con Piwi (piRNA), los ARN nucleolares pequeños (snoRNA) y otros ARN cortos. [ 3 ] Dado que algunos lncRNA genuinos pueden codificar proteínas pequeñas, la definición más reciente de lncRNA es una clase de transcripciones de más de 200 nucleótidos que tienen una capacidad de codificación nula o limitada. [ 4 ]

La definición de lncRNA difiere de la de otros ARN como siRNA, mRNA, miRNA y snoRNA porque no está relacionada con la función del ARN. Un lncRNA es cualquier transcrito que no pertenece a ninguno de los otros ARN bien caracterizados y tiene una longitud superior a 200-500 nucleótidos. Algunos científicos creen que la mayoría de los lncRNA no tienen una función biológicamente relevante porque son transcripciones de ADN basura . [ 5 ] [ 6 ]

Abundancia

Los transcritos largos no codificantes se encuentran en muchas especies. Los proyectos de secuenciación de ADN complementario (ADNc) a gran escala, como FANTOM, revelan la complejidad de estos transcritos en humanos. [ 7 ] El proyecto FANTOM3 identificó ~35.000 transcritos no codificantes que presentan muchas características de los ARN mensajeros , incluyendo la adición de una caperuza 5' , el empalme y la poliadenilación , pero tienen poco o ningún marco de lectura abierto (ORF). [ 7 ] Este número representa una estimación inferior conservadora, ya que omitió muchos transcritos únicos y transcritos no poliadenilados ( los datos de los microarrays muestran que más del 40% de los transcritos no están poliadenilados). [ 8 ] La identificación de los ARNnc dentro de estas bibliotecas de ADNc es un desafío, ya que puede ser difícil distinguir los transcritos codificantes de proteínas de los no codificantes. Se ha sugerido a través de múltiples estudios que los testículos [ 9 ] y los tejidos neurales expresan la mayor cantidad de ARN largos no codificantes de cualquier tipo de tejido . [ 10 ] Utilizando FANTOM5, se han identificado 27.919 ncRNA largos en diversas fuentes humanas. [ 11 ]

Cuantitativamente, estos transcritos demuestran una abundancia aproximadamente 10 veces menor que los ARNm , [ 12 ] [ 13 ] lo cual se explica en gran medida por una mayor variación célula a célula en los niveles de expresión de los lncRNA en las células individuales, en comparación con los genes codificadores de proteínas y los genes no codificantes bien caracterizados. [ 14 ] Esto es consistente con la idea de que muchos de estos transcritos son transcritos espurios no funcionales y las regiones transcritas no son genes según ninguna definición estándar. [ 5 ] [ 6 ]

En general, la mayoría (~78%) de los lncRNA se caracterizan por ser específicos de tejido , en comparación con solo ~19% de los mRNA. [ 12 ] Además de una mayor especificidad tisular, los lncRNA se caracterizan por una mayor especificidad de etapa de desarrollo , [ 15 ] y especificidad de subtipo celular en tejidos como la neocorteza humana [ 16 ] y otras partes del cerebro, regulando el correcto desarrollo y función cerebral. [ 17 ] En 2022, una integración exhaustiva de lncRNA de bases de datos existentes reveló que hay 95 243 lncRNA y 323 950 transcritos en humanos. [ 18 ]

En comparación con los mamíferos, relativamente pocos estudios se han centrado en la prevalencia de lncRNAs en plantas . Sin embargo, un estudio extenso que consideró 37 especies de plantas superiores y seis algas identificó ~200.000 transcripciones no codificantes utilizando un enfoque in silico , [ 19 ] que también estableció la base de datos asociada Green Non-Coding Database ( GreeNC ), un repositorio de lncRNAs de plantas.

Organización genómica

En 2005, el panorama del genoma de los mamíferos se describió como numerosos "focos" de transcripción separados por largos tramos de espacio intergénico . [ 7 ] Si bien algunos ncRNA largos se encuentran dentro de los tramos intergénicos, la mayoría son transcripciones superpuestas en sentido y antisentido que a menudo incluyen genes codificadores de proteínas, [ 20 ] dando lugar a una jerarquía compleja de isoformas superpuestas. [ 21 ] Las secuencias genómicas dentro de estos focos transcripcionales a menudo se comparten dentro de una serie de transcripciones codificantes y no codificantes en las direcciones de sentido y antisentido. [ 22 ] Por ejemplo, 3012 de 8961 cDNA previamente anotados como secuencias codificantes truncadas dentro de FANTOM2 fueron designados posteriormente como variantes genuinas de ncRNA de cDNA codificadores de proteínas. [ 7 ] Si bien la abundancia y conservación de estas disposiciones sugieren que tienen relevancia biológica, la complejidad de estos focos dificulta una evaluación sencilla.

El consorcio GENCODE ha recopilado y analizado un conjunto exhaustivo de anotaciones de lncRNA humanos y su organización genómica , modificaciones, localizaciones celulares y perfiles de expresión tisular. [ 10 ] Su análisis indica que los lncRNA humanos muestran un sesgo hacia los transcritos de dos exones . [ 10 ]

Traducción

Ha habido un debate considerable sobre si los lncRNA han sido mal anotados y si en realidad codifican proteínas . Se ha descubierto que varios lncRNA codifican péptidos con una función biológicamente significativa. [ 23 ] [ 24 ] [ 25 ] Los estudios de perfilado de ribosomas han sugerido que entre el 40 % y el 90 % de los lncRNA anotados se traducen , [ 26 ] [ 27 ] aunque existe desacuerdo sobre el método correcto para analizar los datos de perfilado de ribosomas. [ 28 ] Además, se cree que muchos de los péptidos producidos por los lncRNA pueden ser altamente inestables y carecer de función biológica. [ 27 ]

Conservación

Las secuencias de la mayoría de los transcritos largos no codificantes no están conservadas, lo que apoya la idea de que la mayoría de ellos son transcritos espurios sin función biológica. Los estudios iniciales sobre la conservación de lncRNA observaron que algunos de ellos estaban enriquecidos en elementos de secuencia conservados , [ 29 ] empobrecidos en tasas de sustitución e inserción/deleción [ 30 ] y empobrecidos en variantes de frecuencia rara, [ 31 ] indicativo de selección purificadora que mantiene la función del lncRNA. Sin embargo, investigaciones posteriores sobre lncRNA de vertebrados revelaron que, si bien algunos lncRNA están conservados en secuencia, no están conservados en transcripción . [ 32 ] [ 33 ] [ 9 ] En otras palabras, incluso cuando la secuencia de un lncRNA humano está conservada en otra especie de vertebrado, a menudo no hay transcripción de un lncRNA en la región genómica ortóloga . Algunos argumentan que estas observaciones sugieren la falta de funcionalidad de la mayoría de los lncRNA, [ 34 ] [ 35 ] [ 5 ] mientras que otros argumentan que pueden ser indicativas de una rápida selección adaptativa específica de la especie . [ 36 ]

Aunque la mayoría de los transcritos largos no codificantes no están conservados, cientos de lncRNA se conservan a nivel de secuencia. Se han realizado varios intentos para delimitar las diferentes categorías de firmas de selección observadas entre los lncRNA, incluyendo: lncRNA con una fuerte conservación de secuencia a lo largo de toda la longitud del gen , lncRNA en los que solo una porción del transcrito (por ejemplo , el extremo 5′ , los sitios de empalme ) está conservada, y lncRNA que se transcriben a partir de regiones sinténicas del genoma pero no tienen similitud de secuencia reconocible. [ 37 ] [ 38 ] [ 39 ] Además, se han realizado intentos para identificar estructuras secundarias conservadas en los lncRNA, aunque estos estudios han dado lugar a resultados contradictorios. [ 40 ] [ 41 ] Varios de los lncRNA mejor estudiados han indicado conservación de la estructura dentro de los dominios funcionales del lncRNA, con falta de similitud de secuencia entre especies. [ 42 ]

Funciones

Algunos grupos han afirmado que la mayoría de los ARN largos no codificantes en mamíferos probablemente sean funcionales, [ 43 ] [ 44 ] pero otros grupos han afirmado lo contrario. [ 5 ] [ 6 ] Esta es un área de investigación activa.

Algunos lncRNAs han sido anotados funcionalmente en LncRNAdb (una base de datos de lncRNAs descritos en la literatura), [ 45 ] [ 46 ] y la mayoría de ellos se han descrito en humanos . Más de 2600 lncRNAs humanos con evidencias experimentales han sido curados por la comunidad en LncRNAWiki (una plataforma wiki , de edición pública y contenido abierto para la curación comunitaria de lncRNAs humanos). [ 47 ] Según la curación de los mecanismos funcionales de los lncRNAs basada en la literatura, se informa ampliamente que los lncRNAs participan en la regulación de ceRNA , la regulación transcripcional y la regulación epigenética. [ 47 ] Otro estudio de secuenciación a gran escala proporciona evidencia de que muchos transcritos que se creía que eran lncRNAs pueden, de hecho, traducirse en proteínas . [ 48 ]

En la regulación de la transcripción genética

En la transcripción específica de genes

En los eucariotas , la transcripción del ARN es un proceso estrictamente regulado. Los ARN no codificantes actúan sobre diferentes aspectos de este proceso, dirigiéndose a moduladores transcripcionales, la ARN polimerasa (RNAP) II e incluso el dúplex de ADN para regular la expresión génica. [ 49 ] [ 50 ]

Los ARN no codificantes modulan la transcripción mediante varios mecanismos, incluyendo su función como correguladores, la modificación de la actividad de los factores de transcripción o la regulación de la asociación y actividad de los correguladores. Por ejemplo, el ARN no codificante Evf-2 funciona como un coactivador del factor de transcripción homeobox Dlx2 , que desempeña funciones importantes en el desarrollo del prosencéfalo y la neurogénesis . [ 51 ] [ 52 ] Sonic hedgehog induce la transcripción de Evf-2 a partir de un elemento ultraconservado ubicado entre los genes Dlx5 y Dlx6 durante el desarrollo del prosencéfalo. [ 51 ] Evf-2 luego recluta al factor de transcripción Dlx2 al mismo elemento ultraconservado, donde Dlx2 posteriormente induce la expresión de Dlx5. La existencia de otros elementos ultra- o altamente conservados similares dentro del genoma de los mamíferos que se transcriben y cumplen funciones potenciadoras sugiere que Evf-2 podría ser un ejemplo de un mecanismo generalizado que regula genes del desarrollo con patrones de expresión complejos durante el crecimiento de los vertebrados. [ 53 ] [ 54 ] De hecho, se ha demostrado que la transcripción y expresión de elementos ultraconservados no codificantes similares son anormales en la leucemia humana y contribuyen a la apoptosis en células de cáncer de colon , lo que sugiere su implicación en la tumorigénesis de forma similar al ARN codificante de proteínas. [ 55 ] [ 56 ] [ 57 ]

Los ARN no codificantes locales también pueden reclutar programas transcripcionales para regular la expresión de genes codificadores de proteínas adyacentes .

La proteína de unión a ARN TLS se une e inhibe las actividades de la proteína de unión a CREB y la histona acetiltransferasa p300 en un gen diana reprimido, la ciclina D1 . El reclutamiento de TLS al promotor de la ciclina D1 está dirigido por ARN no codificantes largos expresados ​​a niveles bajos y anclados a regiones reguladoras 5' en respuesta a señales de daño en el ADN. [ 58 ] Además, estos ARN no codificantes locales actúan cooperativamente como ligandos para modular las actividades de TLS. En sentido amplio, este mecanismo permite a la célula aprovechar las proteínas de unión a ARN , que constituyen una de las clases más grandes dentro del proteoma de los mamíferos , e integrar su función en programas transcripcionales. Se ha demostrado que los ARN no codificantes largos nacientes aumentan la actividad de la proteína de unión a CREB, lo que a su vez aumenta la transcripción de ese ARN no codificante. [ 59 ] Un estudio encontró que un lncRNA en la dirección antisentido de la apolipoproteína A1 (APOA1) regula la transcripción de APOA1 a través de modificaciones epigenéticas . [ 60 ]

Evidencia reciente ha planteado la posibilidad de que la transcripción de genes que escapan a la inactivación del cromosoma X pueda estar mediada por la expresión de ARN no codificante largo dentro de los dominios cromosómicos que escapan . [ 61 ]

Regulación de la maquinaria de transcripción basal

Los ncRNA también se dirigen a factores de transcripción generales necesarios para la transcripción de todos los genes por la RNAP II . [ 49 ] Estos factores generales incluyen componentes del complejo de iniciación que se ensamblan en promotores o participan en la elongación de la transcripción. Un ncRNA transcrito desde un promotor menor corriente arriba del gen de la dihidrofolato reductasa (DHFR) forma un triplex estable de ARN-ADN dentro del promotor mayor de DHFR para evitar la unión del cofactor transcripcional TFIIB . [ 62 ] Este novedoso mecanismo de regulación de la expresión génica puede representar un método generalizado de control del uso de promotores, ya que existen miles de triplex de ARN-ADN en el cromosoma eucariota . [ 63 ] El ncRNA U1 puede inducir la transcripción uniéndose a TFIIH y estimulándolo para fosforilar el dominio C-terminal de la RNAP II. [ 64 ] Por el contrario , el ncRNA 7SK es capaz de reprimir la elongación de la transcripción al, en combinación con HEXIM1 / 2 , formar un complejo inactivo que impide que PTEFb fosforile el dominio C-terminal de la RNAP II, [ 64 ] [ 65 ] [ 66 ] reprimiendo la elongación global en condiciones de estrés. Estos ejemplos, que evitan modos específicos de regulación en promotores individuales, proporcionan un medio para afectar rápidamente los cambios globales en la expresión génica .

La capacidad de mediar rápidamente en cambios globales también es evidente en la rápida expresión de secuencias repetitivas no codificantes . Los elementos Alu nucleares cortos intercalados ( SINE ) en humanos y los elementos B1 y B2 análogos en ratones han logrado convertirse en los elementos móviles más abundantes dentro de los genomas, comprendiendo ~10% del genoma humano y ~6% del genoma del ratón , respectivamente. [ 67 ] [ 68 ] Estos elementos son transcritos como ncRNA por la RNAP III en respuesta a estrés ambiental como el choque térmico , [ 69 ] donde luego se unen a la RNAP II con alta afinidad y previenen la formación de complejos de preiniciación activos. [ 70 ] [ 71 ] [ 72 ] [ 73 ] Esto permite la represión amplia y rápida de la expresión génica en respuesta al estrés. [ 70 ] [ 73 ]

Una disección de las secuencias funcionales dentro de los transcritos de ARN Alu ha esbozado una estructura modular análoga a la organización de dominios en factores de transcripción de proteínas. [ 74 ] El ARN Alu contiene dos 'brazos', cada uno de los cuales puede unirse a una molécula de ARN polimerasa II, así como dos dominios reguladores que son responsables de la represión transcripcional de la ARN polimerasa II in vitro. [ 73 ] Estos dos dominios de estructura laxa pueden incluso concatenarse a otros ARN no codificantes, como los elementos B1, para impartir su función represora. [ 73 ] La abundancia y distribución de elementos Alu y elementos repetitivos similares en todo el genoma de los mamíferos puede deberse en parte a que estos dominios funcionales se han incorporado a otros ARN no codificantes largos durante la evolución, siendo la presencia de dominios de secuencia repetida funcional una característica común de varios ARN no codificantes largos conocidos, incluidos Kcnq1ot1 , Xlsirt y Xist . [ 75 ] [ 76 ] [ 77 ] [ 78 ]

Además del choque térmico , la expresión de elementos SINE (incluidos los ARN Alu, B1 y B2) aumenta durante el estrés celular como la infección viral [ 79 ] en algunas células cancerosas [ 80 ] donde pueden regular de manera similar los cambios globales en la expresión génica. La capacidad de los ARN Alu y B2 para unirse directamente a la ARN polimerasa II proporciona un mecanismo amplio para reprimir la transcripción. [ 71 ] [ 73 ] Sin embargo, hay excepciones específicas a esta respuesta global donde los ARN Alu o B2 no se encuentran en los promotores activados de los genes que se están induciendo, como los genes de choque térmico . [ 73 ] Esta jerarquía adicional de regulación que exime a los genes individuales de la represión generalizada también involucra un ARN no codificante largo, el ARN de choque térmico-1 (HSR-1). Se argumentó que el HSR-1 está presente en las células de mamíferos en un estado inactivo, pero ante el estrés se activa para inducir la expresión de los genes de choque térmico . [ 81 ] Esta activación implica una alteración conformacional de HSR-1 en respuesta al aumento de las temperaturas, lo que permite su interacción con el activador transcripcional HSF-1, que trimeriza e induce la expresión de genes de choque térmico. [ 81 ] En sentido amplio, estos ejemplos ilustran un circuito regulador anidado dentro de los ncRNA en el que los ARN Alu o B2 reprimen la expresión génica general , mientras que otros ncRNA activan la expresión de genes específicos .

Transcrito por la ARN polimerasa III

Muchos de los ncRNA que interactúan con factores de transcripción generales o con la propia RNAP II (incluidos 7SK , Alu y los ARN B1 y B2) son transcritos por la RNAP III , [ 82 ] desacoplando su expresión de la RNAP II, a la que regulan. La RNAP III también transcribe otros ncRNA, como BC2, BC200 y algunos microARN y snoARN, además de genes de ncRNA de mantenimiento celular como los ARNt , los ARNr 5S y los snARN . [ 82 ] La existencia de un transcriptoma de ncRNA dependiente de la RNAP III que regula su contraparte dependiente de la RNAP II está respaldada por el hallazgo de un conjunto de ncRNA transcritos por la RNAP III con homología de secuencia a genes codificadores de proteínas. Esto llevó a los autores a postular una red reguladora funcional 'cogen/gen', [ 83 ] mostrando que uno de estos ncRNA, 21A, regula la expresión de su gen socio antisentido, CENP-F en trans.

En la regulación postranscripcional

Además de regular la transcripción, los ARN no codificantes (ARNnc) también controlan diversos aspectos del procesamiento postranscripcional del ARNm . Al igual que los ARN reguladores pequeños, como los microARN y los ARNsno , estas funciones suelen implicar el apareamiento de bases complementarias con el ARNm diana. La formación de dúplex de ARN entre ARNnc complementario y ARNm puede enmascarar elementos clave dentro del ARNm necesarios para la unión de factores trans, afectando potencialmente cualquier paso de la expresión génica postranscripcional , incluyendo el procesamiento y empalme del pre-ARNm , el transporte, la traducción y la degradación. [ 84 ]

En el empalme

El empalme del ARNm puede inducir su traducción y diversificar funcionalmente el repertorio de proteínas que codifica. El ARNm de Zeb2 requiere la retención de un intrón 5'UTR que contiene un sitio de entrada ribosómica interna para una traducción eficiente. [ 85 ] La retención del intrón depende de la expresión de un transcrito antisentido que complementa el sitio de empalme 5' intrónico . [ 85 ] Por lo tanto, la expresión ectópica del transcrito antisentido reprime el empalme e induce la traducción del ARNm de Zeb2 durante el desarrollo mesenquimal . De manera similar, la expresión de un transcrito antisentido superpuesto Rev-ErbAa2 controla el empalme alternativo del ARNm del receptor de la hormona tiroidea ErbAa2 para formar dos isoformas antagónicas. [ 86 ] Otro lncRNA bien caracterizado involucrado en el empalme es MALAT1 ( transcrito 1 de adenocarcinoma de pulmón asociado a metástasis ). MALAT1 se localiza predominantemente en las manchas nucleares y se ha informado que regula la distribución y la actividad de los factores de empalme, influyendo así en el empalme alternativo de un subconjunto de pre-ARNm. [ 87 ] [ 88 ] [ 89 ]

En traducción

El ARNnc también puede ejercer presiones reguladoras adicionales durante la traducción , una propiedad particularmente explotada en neuronas donde la traducción dendrítica o axonal del ARNm en respuesta a la actividad sináptica contribuye a cambios en la plasticidad sináptica y la remodelación de las redes neuronales. Los ARNnc BC1 y BC200 transcritos por la ARN polimerasa III, que previamente derivaron de los ARNt , se expresan en el sistema nervioso central del ratón y del ser humano , respectivamente. [ 90 ] [ 91 ] La expresión de BC1 se induce en respuesta a la actividad sináptica y la sinaptogénesis y se dirige específicamente a las dendritas en las neuronas. [ 92 ] La complementariedad de secuencia entre BC1 y regiones de varios ARNm específicos de neuronas también sugiere un papel para BC1 en la represión traslacional dirigida. [ 93 ] De hecho, recientemente se demostró que BC1 está asociado con la represión traslacional en las dendritas para controlar la eficiencia de la transmisión mediada por el receptor de dopamina D2 en el estriado [ 94 ] y los ratones con deleción de ARN de BC1 exhiben cambios de comportamiento con exploración reducida y mayor ansiedad . [ 95 ]

En la regulación génica dirigida por siRNA

Además de enmascarar elementos clave dentro del ARN monocatenario , la formación de dúplex de ARN bicatenario también puede proporcionar un sustrato para la generación de siARN endógenos (endo-siARN) en ovocitos de Drosophila y ratón . [ 96 ] El apareamiento de secuencias complementarias, como regiones antisentido o repetitivas entre transcritos , forma un dúplex de ARN que puede ser procesado por Dicer-2 en endo-siARN. Además, los ARN no codificantes largos que forman horquillas intramoleculares extendidas pueden ser procesados ​​en siARN, como lo ilustran de manera convincente los transcritos esi-1 y esi-2. [ 97 ] Los endo-siARN generados a partir de estos transcritos parecen particularmente útiles para suprimir la propagación de elementos transponibles móviles dentro del genoma en la línea germinal. Sin embargo, la generación de endo-siRNAs a partir de transcritos antisentido o pseudogenes también puede silenciar la expresión de sus contrapartes funcionales a través de complejos efectores RISC , actuando como un nodo importante que integra varios modos de regulación de ARN largos y cortos, como lo ejemplifican Xist y Tsix (ver más arriba). [ 98 ]

En la regulación epigenética

Las modificaciones epigenéticas, incluyendo la metilación de histonas y ADN , la acetilación de histonas y la sumoilación , afectan muchos aspectos de la biología cromosómica, principalmente la regulación de un gran número de genes mediante la remodelación de amplios dominios de cromatina . [ 99 ] [ 100 ] Si bien se sabe desde hace algún tiempo que el ARN es un componente integral de la cromatina, [ 101 ] [ 102 ] es solo recientemente que estamos empezando a apreciar los medios por los cuales el ARN está involucrado en las vías de modificación de la cromatina. [ 103 ] [ 104 ] [ 105 ] Por ejemplo, Oplr16 induce epigenéticamente la activación de factores centrales de células madre al coordinar el bucle intracromosómico y el reclutamiento de la desmetilasa de ADN TET2 . [ 106 ]

En Drosophila , los ncRNA largos inducen la expresión del gen homeótico Ubx , reclutando y dirigiendo las funciones modificadoras de la cromatina de la proteína trithorax Ash1 a los elementos reguladores Hox . [ 105 ] Se han propuesto modelos similares en mamíferos, donde se cree que fuertes mecanismos epigenéticos subyacen a los perfiles de expresión embrionaria de los genes Hox que persisten a lo largo del desarrollo humano. [ 107 ] [ 104 ] De hecho, los genes Hox humanos están asociados con cientos de ncRNA que se expresan secuencialmente a lo largo de los ejes espacial y temporal del desarrollo humano y definen dominios de cromatina de metilación diferencial de histonas y accesibilidad de la ARN polimerasa . [ 104 ] Un ncRNA, denominado HOTAIR , que se origina en el locus HOXC reprime la transcripción a través de 40 kb del locus HOXD al alterar el estado de trimetilación de la cromatina. Se cree que HOTAIR logra esto dirigiendo la acción de los complejos de remodelación de cromatina Polycomb en trans para gobernar el estado epigenético de las células y la expresión génica subsiguiente . Los componentes del complejo Polycomb, incluidos Suz12 , EZH2 y EED, contienen dominios de unión a ARN que potencialmente pueden unirse a HOTAIR y probablemente a otros ncRNA similares. [ 108 ] [ 109 ] [ 110 ] Este ejemplo ilustra bien un tema más amplio en el que los ncRNA reclutan la función de un conjunto genérico de proteínas modificadoras de cromatina a loci genómicos específicos , lo que subraya la complejidad de los mapas genómicos publicados recientemente. [ 100 ] Curiosamente, los ncRNA largos interactúan con proteínas modificadoras de cromatina como el complejo PRC2 para guiar el silenciamiento génico en varias neoplasias malignas. En el mieloma múltiple (MM), el ARN no codificante largo PVT1 interactúa con EZH2, la subunidad catalítica de PRC2, para guiar el silenciamiento de genes con propiedades proapoptóticas y supresoras de tumores, facilitando así el crecimiento y la progresión tumoral. [ 111 ] De hecho, la prevalencia de ARN no codificantes largos asociados con genes codificadores de proteínas puede contribuir a patrones localizados de modificaciones de la cromatina que regulan la expresión génica durante el desarrollo. Por ejemplo, la mayoría de los genes codificadores de proteínas tienen socios antisentido, incluidos muchos genes supresores de tumores que frecuentemente son silenciados por mecanismos epigenéticos en el cáncer. [ 112 ]Un estudio reciente observó un perfil de expresión inverso del gen p15 y un ncRNA antisentido en la leucemia. [ 112 ] Un análisis detallado mostró que el ncRNA antisentido de p15 ( CDKN2BAS ) era capaz de inducir cambios en la heterocromatina y el estado de metilación del ADN de p15 por un mecanismo desconocido, regulando así la expresión de p15. [ 112 ] Por lo tanto, la expresión anómala de los ncRNA antisentido asociados puede silenciar posteriormente el gen supresor de tumores, contribuyendo al cáncer .

Impresión

Muchos temas emergentes de modificación de la cromatina dirigida por ARN no codificante (ARNnc) se hicieron evidentes por primera vez dentro del fenómeno de la impronta genómica , en el que solo se expresa un alelo de un gen a partir del cromosoma materno o paterno . En general, los genes improntados se agrupan en los cromosomas, lo que sugiere que el mecanismo de impronta actúa sobre dominios cromosómicos locales en lugar de genes individuales. Estos grupos también suelen estar asociados con ARNnc largos cuya expresión se correlaciona con la represión del gen codificante de proteínas vinculado en el mismo alelo. [ 113 ] De hecho, un análisis detallado ha revelado un papel crucial de los ARNnc Kcnqot1 e Igf2r /Air en la dirección de la impronta genómica. [ 114 ]

Casi todos los genes en los loci Kcnq1 se heredan por vía materna, excepto el ncRNA antisentido Kcnqot1 expresado por vía paterna. [ 115 ] Los ratones transgénicos con Kcnq1ot truncado no logran silenciar los genes adyacentes, lo que sugiere que Kcnqot1 es crucial para la impronta de genes en el cromosoma paterno. [ 116 ] Parece que Kcnqot1 es capaz de dirigir la trimetilación de la lisina 9 ( H3K9me3 ) y 27 de la histona 3 ( H3K27me3 ) a un centro de impronta que se superpone al promotor de Kcnqot1 y que en realidad reside dentro de un exón sentido de Kcnq1. [ 117 ] De forma similar a HOTAIR (véase más arriba), los complejos Eed-Ezh2 Polycomb son reclutados al cromosoma paterno de los loci Kcnq1, posiblemente por Kcnqot1, donde pueden mediar el silenciamiento génico a través de la metilación represiva de histonas . [ 117 ] Un centro de impronta diferencialmente metilado también se superpone al promotor de un ncRNA antisentido largo Air que es responsable del silenciamiento de genes vecinos en el locus Igf2r en el cromosoma paterno. [ 118 ] [ 119 ] La presencia de metilación de histonas específica de alelo en el locus Igf2r sugiere que Air también media el silenciamiento a través de la modificación de la cromatina. [ 120 ]

Xist e inactivación del cromosoma X

La inactivación de un cromosoma X en mamíferos placentarios hembra está dirigida por uno de los ARN no codificantes largos más tempranos y mejor caracterizados, Xist . [ 121 ] La expresión de Xist a partir del futuro cromosoma X inactivo, y su posterior recubrimiento del cromosoma X inactivo, ocurre durante la diferenciación temprana de las células madre embrionarias . La expresión de Xist es seguida por capas irreversibles de modificaciones de la cromatina que incluyen la pérdida de la acetilación de la histona (H3K9) y la metilación de H3K4 que están asociadas con la cromatina activa, y la inducción de modificaciones represivas de la cromatina que incluyen hipoacetilación de H4, trimetilación de H3K27 , [ 121 ] hipermetilación de H3K9 y monometilación de H4K20 , así como monoubiquitinación de H2AK119. Estas modificaciones coinciden con el silenciamiento transcripcional de los genes ligados al cromosoma X. [ 122 ] El ARN Xist también localiza la variante de histona macroH2A en el cromosoma X inactivo. [ 123 ] Hay otros ARN no codificantes que también están presentes en los loci Xist, incluido un transcrito antisentido Tsix , que se expresa desde el futuro cromosoma activo y puede reprimir la expresión de Xist mediante la generación de siRNA endógeno. [ 98 ] En conjunto, estos ARN no codificantes aseguran que solo un cromosoma X esté activo en los mamíferos hembra .

ARN no codificantes teloméricos

Los telómeros forman la región terminal de los cromosomas de los mamíferos y son esenciales para la estabilidad y el envejecimiento, además de desempeñar funciones centrales en enfermedades como el cáncer . [ 124 ] Durante mucho tiempo se consideró que los telómeros eran complejos de ADN-proteína transcripcionalmente inertes, hasta que a finales de la década de 2000 se demostró que las repeticiones teloméricas pueden transcribirse como ARN teloméricos (TelRNA) [ 125 ] o ARN que contienen repeticiones teloméricas . [ 126 ] Estos ARN no codificantes son heterogéneos en longitud, se transcriben a partir de varios loci subteloméricos y se localizan físicamente en los telómeros. Su asociación con la cromatina, que sugiere una participación en la regulación de modificaciones de heterocromatina específicas de los telómeros, está reprimida por proteínas SMG que protegen los extremos de los cromosomas de la pérdida de telómeros. [ 126 ] Además, los TelRNA bloquean la actividad de la telomerasa in vitro y, por lo tanto, pueden regular dicha actividad. [ 125 ] Aunque preliminares, estos estudios sugieren una participación de los ncRNA teloméricos en diversos aspectos de la biología de los telómeros.

En la regulación del momento de la replicación del ADN y la estabilidad cromosómica

Los ARN autosómicos de replicación asincrónica (ASAR) son ARN no codificantes muy largos (~200 kb) que no se empalman, no se poliadenilan y son necesarios para la sincronización normal de la replicación del ADN y la estabilidad cromosómica. [ 127 ] [ 128 ] [ 129 ] La deleción de cualquiera de los loci genéticos que contienen ASAR6, ASAR15 o ASAR6-141 da como resultado el mismo fenotipo de sincronización de replicación retardada y condensación mitótica retardada (DRT/DMC) de todo el cromosoma. DRT/DMC da como resultado errores de segregación cromosómica que conducen a una mayor frecuencia de reordenamientos secundarios y un cromosoma inestable. De manera similar a Xist , los ASAR muestran expresión monoalélica aleatoria y existen en dominios de replicación de ADN asincrónica. Aunque el mecanismo de funcionamiento de ASAR aún está bajo investigación, se hipotetiza que actúan mediante mecanismos similares a los del lncRNA Xist, pero en dominios autosómicos más pequeños, lo que da lugar a cambios específicos de alelo en la expresión génica.

La reparación incorrecta de las roturas de doble cadena del ADN (DSB), que conduce a reordenamientos cromosómicos, es una de las principales causas de la oncogénesis. Varios lncRNA son cruciales en las diferentes etapas de las principales vías de reparación de DSB en células eucariotas : la unión de extremos no homólogos ( NHEJ ) y la reparación dirigida por homología ( HDR ). Las mutaciones genéticas o las variaciones en los niveles de expresión de estos ARN pueden provocar defectos locales en la reparación del ADN, aumentando la frecuencia de aberraciones cromosómicas. Además, se ha demostrado que algunos ARN pueden estimular reordenamientos cromosómicos de largo alcance. [ 130 ]

Estructura

Transcurrieron más de dos décadas desde el descubrimiento de los primeros transcritos largos no codificantes humanos hasta que se reconoció plenamente la importancia funcional de las estructuras de los lncRNA. Los primeros estudios estructurales llevaron a la propuesta de varias hipótesis para clasificar las arquitecturas de los lncRNA. Una hipótesis sugiere que los lncRNA podrían presentar una estructura terciaria compacta, similar a la de ribozimas como el ribosoma o los intrones de autoescisión. Otra posibilidad es que los lncRNA tengan sitios de unión a proteínas estructurados, dispuestos en un andamiaje descentralizado, sin un núcleo compacto. Una tercera hipótesis plantea que los lncRNA podrían exhibir una arquitectura en gran medida desestructurada, con dominios de unión a proteínas poco organizados intercalados con largas regiones de ARN monocatenario desordenado. [ 131 ]

El estudio de la estructura terciaria de los lncRNA mediante métodos convencionales como la cristalografía de rayos X, la crio-EM y la resonancia magnética nuclear (RMN) se ve, lamentablemente, aún obstaculizado por su tamaño y dinámica conformacional, y por el hecho de que, por ahora, todavía sabemos muy poco sobre su mecanismo para reconstruir complejos lncRNA-ribonucleoproteína estables y funcionalmente activos. Sin embargo, algunos estudios pioneros demostraron que los lncRNA ya pueden estudiarse mediante métodos de partícula única y en solución de baja resolución, como la microscopía de fuerza atómica (AFM) y la dispersión de rayos X de ángulo pequeño (SAXS), en algunos casos incluso en complejos con moduladores de moléculas pequeñas. [ 132 ]

Por ejemplo, se demostró que el lncRNA MEG3 regula el factor de transcripción p53 gracias a su núcleo de estructura compacta. [ 133 ] Además, se demostró que el lncRNA Braveheart (Bvht) tiene una estructura 3D bien definida, aunque flexible, que se remodela al unirse a CNBP (proteína de unión a ácidos nucleicos celulares), la cual reconoce dominios distales en el ARN. [ 134 ] Finalmente, se demostró que Xist, un regulador maestro de la inactivación del cromosoma X, se une específicamente a un compuesto de molécula pequeña, que altera la conformación del motivo RepA de Xist y desplaza dos factores proteicos interactuantes conocidos (PRC2 y SPEN) del ARN. Mediante este mecanismo de acción, el compuesto anula el inicio de la inactivación del cromosoma X. [ 135 ]

Véase también

Referencias

  1. Fernandes JC, Acuña SM, Aoki JI, Floeter-Winter LM, Muxel SM (febrero de 2019). "ARN largos no codificantes en la regulación de la expresión génica: fisiología y enfermedad" . Non-Coding RNA . 5 (1): 17. doi : 10.3390/ ncrna5010017 . PMC 6468922. PMID 30781588 .  
  2. Perkel JM (junio de 2013). "Visitando "noncodarnia"" . BioTechniques (artículo). 54 (6): 301, 303– 301, 304. doi : 10.2144/000114037 . PMID 23750541 . "Estamos denominando a los ARN largos no codificantes una clase, cuando en realidad la única definición es que tienen una longitud superior a 200 pares de bases", afirma Ana Marques, investigadora de la Universidad de Oxford que utiliza enfoques evolutivos para comprender la función de los ARN largos no codificantes.
  3. Ma L, Bajic VB, Zhang Z (junio de 2013). " Sobre la clasificación de los ARN largos no codificantes" . RNA Biology . 10 (6): 925– 933. doi : 10.4161/rna.24604 . PMC 4111732. PMID 23696037 .  
  4. Ma L, Zhang Z (septiembre de 2023). "La contribución de las bases de datos para comprender el universo de los ARN largos no codificantes". Nature Reviews. Biología Celular Molecular . 24 (9): 601– 602. doi : 10.1038/s41580-023-00612-z . ISSN 1471-0080 . PMID 37147495. S2CID 258528357 .   
  5. 1 2 3 4 Palazzo AF, Lee ES (2015-01-26). "ARN no codificante: ¿qué es funcional y qué es basura?" . Frontiers in Genetics . 6 : 2. doi : 10.3389/fgene.2015.00002 . PMC 4306305 . PMID 25674102 .  
  6. 1 2 3 Ponting CP, Haerty W (agosto de 2022). "Análisis de todo el genoma de los ARN largos no codificantes humanos: una revisión provocativa" . Annual Review of Genomics and Human Genetics . 23 : 153–172 . doi : 10.1146/annurev-genom-112921-123710 . hdl : 20.500.11820/ede40d70-b99c-42b0-a378-3b9b7b256a1b . PMID 35395170 . 
  7. ^ Carninci P, Kasukawa T , Katayama S , Gough J , Frith MC, Maeda N, et al. (Septiembre de 2005). "El panorama transcripcional del genoma de los mamíferos". Ciencia . 309 (5740): 1559– 1563. Bibcode : 2005Sci...309.1559F . doi : 10.1126/ciencia.1112014 . PMID 16141072 . S2CID 8712839 .   
  8. Cheng J, Kapranov P, Drenkow J, Dike S, Brubaker S, Patel S, et al. (mayo de 2005). "Mapas transcripcionales de 10 cromosomas humanos con una resolución de 5 nucleótidos". Science . 308 ( 5725): 1149– 1154. Bibcode : 2005Sci...308.1149C . doi : 10.1126/science.1108625 . PMID 15790807. S2CID 13047538 .   
  9. 1 2 Necsulea A, Soumillon M, Warnefors M, Liechti A, Daish T, Zeller U, et al. (enero de 2014). " La evolución de los repertorios de lncRNA y los patrones de expresión en tetrápodos" . Nature . 505 (7485): 635– 640. Bibcode : 2014Natur.505..635N . doi : 10.1038/nature12943 . PMID 24463510. S2CID 1179101 .   
  10. 1 2 3 Derrien T, Johnson R, Bussotti G, Tanzer A, Djebali S, Tilgner H, et al. (septiembre de 2012). " El catálogo GENCODE v7 de ARN largos no codificantes humanos: análisis de su estructura genética, evolución y expresión" . Genome Research . 22 (9): 1775– 1789. doi : 10.1101/gr.132159.111 . PMC 3431493. PMID 22955988 .   
  11. Hon CC, Ramilowski JA, Harshbarger J, Bertin N, Rackham OJ, Gough J, et al. (marzo de 2017). " Un atlas de ARN largos no codificantes humanos con extremos 5′ precisos" . Nature . 543 (7644): 199–204 . Bibcode : 2017Natur.543..199H . doi : 10.1038/nature21374 . PMC 6857182. PMID 28241135 .   
  12. 1 2 Cabili MN, Trapnell C, Goff L, Koziol M, Tazon-Vega B, Regev A, et al. (septiembre de 2011). "Anotación integradora de ARN no codificantes intergénicos grandes humanos revela propiedades globales y subclases específicas" . Genes & Development . 25 (18): 1915–1927 . doi : 10.1101/ gad.17446611 . PMC 3185964. PMID 21890647 .   
  13. Ravasi T, Suzuki H, Pang KC, Katayama S, Furuno M, Okunishi R, et al. (enero de 2006). " Validación experimental de la expresión regulada de un gran número de ARN no codificantes del genoma del ratón" . Genome Research . 16 (1): 11– 19. doi : 10.1101/gr.4200206 . PMC 1356124. PMID 16344565 .   
  14. Yunusov D, Anderson L, DaSilva LF, Wysocka J, Ezashi T, Roberts RM, et al. (septiembre de 2016). "HIPSTR y miles de lncRNAs se expresan heterogéneamente en embriones humanos, células germinales primordiales y líneas celulares estables" . Scientific Reports . 6 32753. Bibcode : 2016NatSR...632753Y . doi : 10.1038/srep32753 . PMC 5015059. PMID 27605307 .   
  15. Yan L, Yang M, Guo H, Yang L, Wu J, Li R, et al. (septiembre de 2013). "Perfil de ARN-Seq de células individuales de embriones humanos preimplantacionales y células madre embrionarias". Nature Structural & Molecular Biology . 20 (9): 1131– 1139. doi : 10.1038/nsmb.2660 . PMID 23934149. S2CID 29209966 .   
  16. Liu SJ, Nowakowski TJ, Pollen AA, Lui JH, Horlbeck MA, Attenello FJ, et al. (abril de 2016). " Análisis de células individuales de ARN largos no codificantes en la neocorteza humana en desarrollo" . Genome Biology . 17 67. doi : 10.1186/s13059-016-0932-1 . PMC 4831157. PMID 27081004 .   
  17. Aliperti V, Skonieczna J, Cerase A (junio de 2021). "Funciones del ARN no codificante largo (lncRNA) en la biología celular, el neurodesarrollo y los trastornos neurológicos" . Non -Coding RNA . 7 (2): 36. doi : 10.3390/ncrna7020036 . PMC 8293397. PMID 34204536 .  
  18. Li Z, Liu L, Feng C, Qin Y, Xiao J, Zhang Z, et al. (2023-01-06). " LncBook 2.0: integración de ARN largos no codificantes humanos con anotaciones multiómicas" . Nucleic Acids Research . 51 (D1): D186– D191. doi : 10.1093/nar/gkac999 . ISSN 1362-4962 . PMC 9825513. PMID 36330950 .    
  19. Paytuví Gallart A, Hermoso Pulido A, Anzar Martínez de Lagrán I, Sanseverino W, Aiese Cigliano R (enero 2016). "GREENC: una base de datos basada en Wiki de lncRNA de plantas" . Investigación de ácidos nucleicos . 44 (D1): D1161– D1166. doi : 10.1093/nar/gkv1215 . PMC 4702861 . PMID 26578586 .  
  20. Kapranov P, Cheng J, Dike S, Nix DA, Duttagupta R, Willingham AT, et al. (junio de 2007). " Los mapas de ARN revelan nuevas clases de ARN y una posible función para la transcripción generalizada" . Science . 316 (5830): 1484–1488 . Bibcode : 2007Sci...316.1484K . doi : 10.1126/science.1138341 . PMID 17510325. S2CID 25609839 .   
  21. Kapranov P, Willingham AT, Gingeras TR (junio de 2007). " Transcripción a nivel genómico y sus implicaciones para la organización genómica". Nature Reviews Genetics . 8 (6): 413– 423. doi : 10.1038/nrg2083 . PMID 17486121. S2CID 6465064 .  
  22. Birney E, Stamatoyannopoulos JA, Dutta A, Guigó R, Gingeras TR, Margulies EH, et al. (junio de 2007). " Identificación y análisis de elementos funcionales en el 1% del genoma humano mediante el proyecto piloto ENCODE" . Nature . 447 (7146): 799–816 . Bibcode : 2007Natur.447..799B . doi : 10.1038/nature05874 . PMC 2212820. PMID 17571346 .   
  23. Anderson DM, Anderson KM, Chang CL, Makarewich CA, Nelson BR, McAnally JR, et al. (febrero de 2015). " Un micropéptido codificado por un supuesto ARN largo no codificante regula el rendimiento muscular" . Cell . 160 (4): 595– 606. doi : 10.1016/j.cell.2015.01.009 . PMC 4356254. PMID 25640239 .   
  24. Matsumoto A, Pasut A, Matsumoto M, Yamashita R, Fung J, Monteleone E, et al. (enero de 2017). "mTORC1 y la regeneración muscular están regulados por el polipéptido SPAR codificado por LINC00961". Nature . 541 ( 7636): 228– 232. Bibcode : 2017Natur.541..228M . doi : 10.1038/nature21034 . PMID 28024296. S2CID 205253245 .   
  25. Pauli A, Norris ML, Valen E, Chew GL, Gagnon JA, Zimmerman S, et al. (febrero de 2014). " Toddler: una señal embrionaria que promueve el movimiento celular a través de los receptores de apelina" . Science . 343 (6172) 1248636. doi : 10.1126/science.1248636 . PMC 4107353. PMID 24407481 .   
  26. Ingolia NT, Lareau LF, Weissman JS (noviembre de 2011). "El perfil de ribosomas de células madre embrionarias de ratón revela la complejidad y la dinámica de los proteomas de mamíferos" . Cell . 147 ( 4): 789–802 . Bibcode : 2011Cell..147..789I . doi : 10.1016/j.cell.2011.10.002 . PMC 3225288. PMID 22056041 .  
  27. 1 2 Ji Z, Song R, Regev A, Struhl K (diciembre de 2015). "Muchos lncRNA, 5'UTR y pseudogenes se traducen y es probable que algunos expresen proteínas funcionales" . eLife . 4 e08890 . doi : 10.7554/eLife.08890 . PMC 4739776. PMID 26687005 .  
  28. Guttman M, Russell P, Ingolia NT, Weissman JS, Lander ES (julio de 2013). "El perfilado de ribosomas proporciona evidencia de que los ARN no codificantes grandes no codifican proteínas" . Cell . 154 (1): 240–251 . Bibcode : 2013Cell..154..240G . doi : 10.1016/ j.cell.2013.06.009 . PMC 3756563. PMID 23810193 .  
  29. Guttman M, Amit I, Garber M, French C, Lin MF, Feldser D, et al. (marzo de 2009). " La firma de la cromatina revela más de mil ARN no codificantes grandes altamente conservados en mamíferos" . Nature . 458 (7235): 223–227 . Bibcode : 2009Natur.458..223G . doi : 10.1038/nature07672 . PMC 2754849. PMID 19182780 .   
  30. Ponjavic J, Ponting CP, Lunter G (mayo de 2007). "¿Funcionalidad o ruido transcripcional? Evidencia de selección dentro de los ARN largos no codificantes" . Genome Research . 17 (5): 556– 565. doi : 10.1101/gr.6036807 . PMC 1855172. PMID 17387145 .  
  31. Haerty W, Ponting CP (mayo de 2013). "Las mutaciones dentro de los lncRNA son efectivamente seleccionadas en contra en la mosca de la fruta pero no en humanos" . Genome Biology . 14 (5) R49. doi : 10.1186/gb-2013-14-5-r49 . PMC 4053968. PMID 23710818 .  
  32. Washietl S, Kellis M, Garber M (abril de 2014). "Dinámica evolutiva y especificidad tisular de los ARN largos no codificantes humanos en seis mamíferos" . Genome Research . 24 (4): 616– 628. doi : 10.1101/gr.165035.113 . PMC 3975061. PMID 24429298 .  
  33. Kutter C, Watt S, Stefflova K, Wilson MD, Goncalves A, Ponting CP, et al. (2012). " Rápida renovación de ARN largos no codificantes y la evolución de la expresión génica" . PLOS Genetics . 8 (7) e1002841. doi : 10.1371/journal.pgen.1002841 . PMC 3406015. PMID 22844254 .   
  34. Brosius J (mayo de 2005). "No desperdicies, no te faltará nada: exceso de transcripción en eucariotas multicelulares". Trends in Genetics . 21 (5): 287– 288. doi : 10.1016/j.tig.2005.02.014 . PMID 15851065 . 
  35. Struhl K (febrero de 2007). "Ruido transcripcional y fidelidad de la iniciación por la ARN polimerasa II". Nature Structural & Molecular Biology . 14 (2): 103– 105. doi : 10.1038/nsmb0207-103 . PMID 17277804. S2CID 29398526 .  
  36. Kapusta A, Feschotte C (octubre de 2014). "Evolución volátil de los repertorios de ARN largos no codificantes: mecanismos e implicaciones biológicas" . Trends in Genetics . 30 (10): 439– 452. doi : 10.1016/j.tig.2014.08.004 . PMC 4464757. PMID 25218058 .  
  37. Chen J, Shishkin AA, Zhu X, Kadri S, Maza I, Guttman M, et al. (febrero de 2016). " Análisis evolutivo en mamíferos revela clases distintas de ARN largos no codificantes" . Genome Biology . 17 19. doi : 10.1186/s13059-016-0880-9 . PMC 4739325. PMID 26838501 .   
  38. Ulitsky I (octubre de 2016). "La evolución al rescate: uso de la genómica comparativa para comprender los ARN largos no codificantes". Nature Reviews Genetics . 17 (10): 601– 614. doi : 10.1038/nrg.2016.85 . PMID 27573374. S2CID 13833164 .  
  39. Hezroni H, Koppstein D, Schwartz MG, Avrutin A, Bartel DP, Ulitsky I (mayo de 2015). "Principios de la evolución del ARN no codificante largo derivados de la comparación directa de transcriptomas en 17 especies" . Cell Reports . 11 (7): 1110– 1122. Bibcode : 2015CellR..11.1110H . doi : 10.1016 / j.celrep.2015.04.023 . PMC 4576741. PMID 25959816 .  
  40. ^ Johnsson P, Lipovich L, Grandér D, Morris KV (marzo de 2014). "Conservación evolutiva de ARN largos no codificantes; secuencia, estructura, función" . Biochimica et Biophysica Acta (BBA) - Temas generales . 1840 (3): 1063– 1071. doi : 10.1016/j.bbagen.2013.10.035 . PMC 3909678 . PMID 24184936 .  
  41. Rivas E, Clements J, Eddy SR (enero de 2017). "Una prueba estadística para la estructura conservada del ARN muestra falta de evidencia de estructura en los lncRNA" . Nature Methods . 14 (1): 45–48 . doi : 10.1038/nmeth.4066 . PMC 5554622. PMID 27819659 .  
  42. Owens MC, Clark SC, Yankey A, Somarowthu S (26 de septiembre de 2019). "Identificación de dominios estructurales y regiones conservadas en el ARN no codificante largo lncTCF7" . International Journal of Molecular Sciences . 20 (19): 4770. doi : 10.3390/ijms20194770 . ISSN 1422-0067 . PMC 6801803. PMID 31561429 .   
  43. Mercer TR, Dinger ME, Mattick JS (marzo de 2009). " ARN largos no codificantes: perspectivas sobre sus funciones". Nature Reviews Genetics . 10 (3): 155– 159. doi : 10.1038/nrg2521 . PMID 19188922. S2CID 18441501 .  
  44. Dinger ME, Amaral PP, Mercer TR, Mattick JS (noviembre de 2009). "Transcripción generalizada del genoma eucariota: índices funcionales e implicaciones conceptuales" . Briefings in Functional Genomics & Proteomics . 8 (6): 407–423 . doi : 10.1093/bfgp/elp038 . PMID 19770204 . 
  45. Amaral PP, Clark MB, Gascoigne DK, Dinger ME, Mattick JS (enero de 2011). "lncRNAdb: una base de datos de referencia para ARN largos no codificantes" . Nucleic Acids Research . 39 (número especial de bases de datos): D146– D151. doi : 10.1093 / nar/gkq1138 . PMC 3013714. PMID 21112873 .  
  46. Quek XC, Thomson DW, Maag JL, Bartonicek N, Signal B, Clark MB, et al. (enero de 2015). "lncRNAdb v2.0: ampliando la base de datos de referencia para ARN largos no codificantes funcionales" . Nucleic Acids Research . 43 (número especial de bases de datos): D168– D173. doi : 10.1093/nar/ gku988 . PMC 4384040. PMID 25332394 .   
  47. 1 2 Liu L, Li Z, Liu C, Zou D, Li Q, Feng C, et al. (2022-01-07). "LncRNAWiki 2.0: una base de conocimiento de ARN largos no codificantes humanos con un modelo de curación y un sistema de base de datos mejorados" . Nucleic Acids Research . 50 (D1): D190– D195. doi : 10.1093/nar/gkab998 . ISSN 1362-4962 . PMC 8728265. PMID 34751395 .    
  48. Smith JE, Alvarez-Dominguez JR, Kline N, Huynh NJ, Geisler S, Hu W, et al. (junio de 2014). "Traducción de pequeños marcos de lectura abiertos dentro de transcripciones de ARN no anotadas en Saccharomyces cerevisiae" . Cell Reports . 7 (6): 1858–1866 . doi : 10.1016/j.celrep.2014.05.023 . PMC 4105149. PMID 24931603 .   
  49. 1 2 Goodrich JA, Kugel JF (agosto de 2006). "Reguladores de ARN no codificante de la transcripción de la ARN polimerasa II". Nature Reviews Molecular Cell Biology . 7 (8): 612– 616. Bibcode : 2006NRMCB...7..612G . doi : 10.1038/nrm1946 . PMID 16723972. S2CID 22274894 .  
  50. Bernard L, Dubois A, Heurtier V, Fischer V, Gonzalez I, Chervova A, et al. (julio de 2022). "OCT4 activa un lncRNA antisentido represor de Suv39h1 para acoplar la metilación de la lisina 9 de la histona H3 a la pluripotencia" . Nucleic Acids Research . 50 (13): 7367– 7379. doi : 10.1093/nar/gkac550 . hdl : 20.500.11820/19e92fef-5d5c-4b43-b73a-964bae704806 . PMC 9303268. PMID 35762231 .   
  51. 1 2 Feng J, Bi C, Clark BS, Mady R, Shah P, Kohtz JD (junio de 2006). "El ARN no codificante Evf-2 se transcribe a partir de la región ultraconservada Dlx-5/6 y funciona como un coactivador transcripcional de Dlx-2" . Genes & Development . 20 (11): 1470– 1484. doi : 10.1101/gad.1416106 . PMC 1475760. PMID 16705037 .  
  52. Panganiban G, Rubenstein JL (octubre de 2002). "Funciones del desarrollo de los genes homeobox Distal-less/Dlx" . Development . 129 (19): 4371–4386 . doi : 10.1242/dev.129.19.4371 . PMID 12223397 . 
  53. Pennacchio LA, Ahituv N, Moses AM, Prabhakar S, Nobrega MA, Shoukry M, et al. (noviembre de 2006). " Análisis de potenciadores in vivo de secuencias no codificantes conservadas humanas" . Nature . 444 (7118): 499– 502. Bibcode : 2006Natur.444..499P . doi : 10.1038/ nature05295 . OSTI 919760. PMID 17086198. S2CID 4307332 .    
  54. Visel A, Prabhakar S, Akiyama JA, Shoukry M, Lewis KD, Holt A, et al. (febrero de 2008). " La ultraconservación identifica un pequeño subconjunto de potenciadores del desarrollo extremadamente restringidos" . Nature Genetics . 40 (2): 158– 160. doi : 10.1038/ng.2007.55 . PMC 2647775. PMID 18176564 .   
  55. Pibouin L, Villaudy J, Ferbus D, Muleris M, Prospéri MT, Remvikos Y, et al. (febrero de 2002). "Clonación del ARNm de sobreexpresión en carcinoma de colon-1: una secuencia sobreexpresada en un subconjunto de carcinomas de colon". Cancer Genetics and Cytogenetics . 133 (1): 55– 60. doi : 10.1016/S0165-4608(01)00634-3 . PMID 11890990 .  
  56. Calin GA, Liu CG, Ferracin M, Hyslop T, Spizzo R, Sevignani C, et al. (septiembre de 2007). "Las regiones ultraconservadas que codifican ARN no codificantes se alteran en las leucemias y carcinomas humanos" . Cancer Cell . 12 (3): 215–229 . doi : 10.1016/j.ccr.2007.07.027 . PMID 17785203 .  
  57. Zhang T, Yu H, Bai Y, Guo Y (2023). "Análisis de densidad de mutación en ARN no codificante largo revelan patrones comparables a los del ARN codificante de proteínas y valor pronóstico" . Computational and Structural Biotechnology Journal . 21 : 4887–4894 . doi : 10.1016/j.csbj.2023.09.027 . ISSN 2001-0370 . PMC 10582829. PMID 37860228 .   
  58. Wang X, Arai S, Song X, Reichart D, Du K, Pascual G, et al. (julio de 2008). " Los ncRNA inducidos modifican alostéricamente las proteínas de unión a ARN en cis para inhibir la transcripción" . Nature . 454 (7200): 126–130 . Bibcode : 2008Natur.454..126W . doi : 10.1038/nature06992 . PMC 2823488. PMID 18509338 .   
  59. Adelman K, Egan E (marzo de 2017). "ARN no codificante: más usos para la basura genómica" . Nature . 543 (7644): 183–185 . Bibcode : 2017Natur.543..183A . doi : 10.1038/543183a . PMID 28277509 . 
  60. ^ Halley P, Kadakkuzha BM, Faghihi MA, Magistri M, Zeier Z, Khorkova O, et al. (Enero de 2014). "Regulación del grupo de genes de apolipoproteínas mediante un ARN largo no codificante" . Informes celulares . 6 (1): 222– 230. doi : 10.1016/j.celrep.2013.12.015 . PMC 3924898 . PMID 24388749 .   
  61. Reinius B, Shi C, Hengshuo L, Sandhu KS, Radomska KJ, Rosen GD, et al. (noviembre de 2010). " Expresión sesgada hacia el sexo femenino de ARN largos no codificantes en dominios que escapan a la inactivación del cromosoma X en ratones" . BMC Genomics . 11 : 614. doi : 10.1186/1471-2164-11-614 . PMC 3091755. PMID 21047393 .   
  62. Martianov I, Ramadass A, Serra Barros A, Chow N, Akoulitchev A (febrero de 2007). "Represión del gen de la dihidrofolato reductasa humana por un transcrito interferente no codificante". Nature . 445 ( 7128): 666– 670. Bibcode : 2007Natur.445..666M . doi : 10.1038/nature05519 . PMID 17237763. S2CID 3012142 .  
  63. Lee JS, Burkholder GD, Latimer LJ, Haug BL, Braun RP (febrero de 1987). "Un anticuerpo monoclonal contra el ADN triplex se une a los cromosomas eucariotas" . Nucleic Acids Research . 15 (3): 1047– 1061. doi : 10.1093 / nar/15.3.1047 . PMC 340507. PMID 2434928 .  
  64. 1 2 Kwek KY, Murphy S, Furger A, Thomas B, O'Gorman W, Kimura H, et al. (noviembre de 2002). "El ARNsn U1 se asocia con TFIIH y regula la iniciación transcripcional". Nature Structural Biology . 9 (11): 800– 805. doi : 10.1038/nsb862 . PMID 12389039. S2CID 22982547 .   
  65. Yang S, Tutton S, Pierce E, Yoon K (noviembre de 2001). "Interferencia específica de ARN de doble cadena en células madre embrionarias de ratón indiferenciadas" . Biología molecular y celular . 21 (22): 7807– 7816. doi : 10.1128/MCB.21.22.7807-7816.2001 . PMC 99950. PMID 11604515 .  
  66. Yik JH, Chen R, Nishimura R, Jennings JL, Link AJ, Zhou Q (octubre de 2003). "Inhibición de la transcripción de la quinasa P-TEFb (CDK9/Ciclina T) y la ARN polimerasa II por las acciones coordinadas de HEXIM1 y el snRNA 7SK" . Molecular Cell . 12 (4): 971–982 . doi : 10.1016/S1097-2765(03)00388-5 . PMID 14580347 . 
  67. Lander ES, Linton LM, Birren B, Nusbaum C, Zody MC, Baldwin J, et al. (febrero de 2001). "Secuenciación y análisis inicial del genoma humano" . Nature . 409 (6822): 860–921 . Bibcode : 2001Natur.409..860L . doi : 10.1038/35057062 . hdl : 2027.42/62798 . PMID 11237011 .  
  68. Waterston RH, Lindblad-Toh K, Birney E, Rogers J, Abril JF, Agarwal P, et al. (diciembre de 2002). "Secuenciación inicial y análisis comparativo del genoma del ratón" . Nature . 420 (6915): 520– 562. Bibcode : 2002Natur.420..520W . doi : 10.1038/nature01262 . PMID 12466850 .  
  69. Liu WM, Chu WM, Choudary PV, Schmid CW (mayo de 1995). "El estrés celular y los inhibidores de la traducción aumentan transitoriamente la abundancia de transcritos SINE de mamíferos" . Nucleic Acids Research . 23 (10): 1758– 1765. doi : 10.1093 / nar/23.10.1758 . PMC 306933. PMID 7784180 .  
  70. 1 2 Allen E, Xie Z, Gustafson AM, Sung GH, Spatafora JW, Carrington JC (diciembre de 2004). "Evolución de los genes de microARN mediante duplicación invertida de secuencias de genes diana en Arabidopsis thaliana". Nature Genetics . 36 (12): 1282– 1290. doi : 10.1038/ng1478 . PMID 15565108 . S2CID 11997028 .  
  71. 1 2 Espinoza CA, Allen TA, Hieb AR, Kugel JF, Goodrich JA (septiembre de 2004). "El ARN B2 se une directamente a la ARN polimerasa II para reprimir la síntesis de transcritos". Nature Structural & Molecular Biology . 11 (9): 822– 829. doi : 10.1038/nsmb812 . PMID 15300239. S2CID 22199826 .  
  72. Espinoza CA, Goodrich JA, Kugel JF (abril de 2007). "Caracterización de la estructura, función y mecanismo del ARN B2, un represor de ARN no codificante de la transcripción de la ARN polimerasa II" . RNA . 13 ( 4): 583– 596. doi : 10.1261/rna.310307 . PMC 1831867. PMID 17307818 .  
  73. 1 2 3 4 5 6 Mariner PD, Walters RD, Espinoza CA, Drullinger LF, Wagner SD, Kugel JF, et al. (febrero de 2008). "El ARN Alu humano es un represor transactivo modular de la transcripción del ARNm durante el choque térmico" . Molecular Cell . 29 (4): 499– 509. doi : 10.1016/j.molcel.2007.12.013 . PMID 18313387 .  
  74. Shamovsky I, Nudler E (febrero de 2008). "El ARN modular se calienta" . Molecular Cell . 29 (4): 415– 417. doi : 10.1016/j.molcel.2008.02.001 . PMID 18313380 . 
  75. Mattick JS (octubre de 2003). "Desafiando el dogma: la capa oculta de ARN no codificantes de proteínas en organismos complejos". BioEssays . 25 (10): 930– 939. CiteSeerX 10.1.1.476.7561 . doi : 10.1002/bies.10332 . PMID 14505360 .  
  76. Mohammad F, Pandey RR, Nagano T, Chakalova L, Mondal T, Fraser P, et al. (junio de 2008). " El ARN no codificante Kcnq1ot1/Lit1 media el silenciamiento transcripcional al dirigirse a la región perinucleolar" . Biología Molecular y Celular . 28 (11): 3713–3728 . doi : 10.1128/MCB.02263-07 . PMC 2423283. PMID 18299392 .   
  77. Wutz A, Rasmussen TP, Jaenisch R (febrero de 2002). "El silenciamiento cromosómico y la localización están mediados por diferentes dominios del ARN Xist". Nature Genetics . 30 (2): 167– 174. doi : 10.1038/ng820 . PMID 11780141. S2CID 28643222 .  
  78. Zearfoss NR, Chan AP, Kloc M, Allen LH, Etkin LD (abril de 2003). "Identificación de nuevos miembros de la familia Xlsirt en el ovocito de Xenopus laevis" . Mechanisms of Development . 120 (4): 503– 509. doi : 10.1016/S0925-4773(02)00459-8 . PMID 12676327. S2CID 16781978 .  
  79. Singh K, Carey M, Saragosti S, Botchan M (1985). "Expresión de niveles mejorados de transcritos de ARN polimerasa III pequeños codificados por las repeticiones B2 en células de ratón transformadas por el virus simio 40". Nature . 314 (6011): 553– 556. Bibcode : 1985Natur.314..553S . doi : 10.1038/314553a0 . PMID 2581137 . S2CID 4359937 .  
  80. Tang RB, Wang HY, Lu HY, Xiong J, Li HH, Qiu XH, et al. (febrero de 2005). "Aumento del nivel de ARN Alu transcrito por la polimerasa III en el tejido de carcinoma hepatocelular". Carcinogénesis molecular . 42 (2): 93– 96. doi : 10.1002/mc.20057 . PMID 15593371. S2CID 10513502 .   
  81. 1 2 Shamovsky I, Nudler E (octubre de 2006). "Control genético por ARN no codificantes grandes". Science's STKE . 2006 (355) pe40. doi : 10.1126/stke.3552006pe40 . PMID 17018852. S2CID 41151259 .  
  82. ^ Dieci G, Fiorino G, Castelnuovo M, Teichmann M, Pagano A (diciembre de 2007). "El transcriptoma de la ARN polimerasa III en expansión". Tendencias en Genética . 23 (12): 614– 622. doi : 10.1016/j.tig.2007.09.001 . hdl : 11381/1706964 . PMID 17977614 . 
  83. Pagano JM, Farley BM, McCoig LM, Ryder SP (marzo de 2007). "Base molecular del reconocimiento de ARN por el determinante de polaridad embrionaria MEX-5" . The Journal of Biological Chemistry . 282 (12): 8883–8894 . doi : 10.1074/jbc.M700079200 . PMID 17264081 . 
  84. Yoon JH, Abdelmohsen K, Gorospe M (octubre de 2013). "Regulación génica postranscripcional por ARN no codificante largo" . Journal of Molecular Biology . 425 (19): 3723– 3730. Bibcode : 2013JMBio.425.3723Y . doi : 10.1016 / j.jmb.2012.11.024 . PMC 3594629. PMID 23178169 .  
  85. 1 2 Beltran M, Puig I, Peña C, García JM, Alvarez AB, Peña R, et al. (marzo de 2008). "Un transcrito antisentido natural regula la expresión del gen Zeb2/Sip1 durante la transición epitelio-mesenquimal inducida por Snail1" . Genes & Development . 22 (6): 756– 769. doi : 10.1101/gad.455708 . PMC 2275429. PMID 18347095 .   
  86. Munroe SH, Lazar MA (noviembre de 1991). "Inhibición del empalme del ARNm de c-erbA por un ARN antisentido de origen natural" . The Journal of Biological Chemistry . 266 (33): 22083– 22086. doi : 10.1016/S0021-9258(18)54535-X . PMID 1657988 . 
  87. Nakagawa S, Ip JY, Shioi G, Tripathi V, Zong X, Hirose T, et al. (2012-08-01). "Malat1 no es un componente esencial de las manchas nucleares en ratones" . RNA . 18 ( 8): 1487– 1499. doi : 10.1261/rna.033217.112 . ISSN 1355-8382 . PMC 3404370. PMID 22718948 .    
  88. Arun G, Aggarwal D, Spector DL ​​(2020-06-03). "ARN largo no codificante MALAT1: implicaciones funcionales" . ARN no codificante . 6 (2): 22. doi : 10.3390/ncrna6020022 . ISSN 2311-553X . PMC 7344863. PMID 32503170 .   
  89. ^ Bitaraf A, Zafarani A, Jahandideh P, Hakak-Zargar B, Haghi A, Asgaritarghi G, et al. (2025-10-06). "MALAT1 como impulsor molecular de la progresión tumoral, la evasión inmunitaria y la resistencia a la terapia" . Cáncer molecular . 24 (1): 245. doi : 10.1186/s12943-025-02415-6 . ISSN 1476-4598 . PMC 12502584 . PMID 41053822 .    
  90. Tiedge H , Chen W, Brosius J (junio de 1993). "Estructura primaria, expresión específica neuronal y localización dendrítica del ARN humano BC200" . The Journal of Neuroscience . 13 (6): 2382–2390 . doi : 10.1523/JNEUROSCI.13-06-02382.1993 . PMC 6576500. PMID 7684772 .  
  91. Tiedge H, Fremeau RT, Weinstock PH, Arancio O, Brosius J (marzo de 1991). "Localización dendrítica del ARN BC1 neuronal" . Actas de la Academia Nacional de Ciencias de los Estados Unidos de América . 88 (6): 2093–2097 . Bibcode : 1991PNAS...88.2093T . doi : 10.1073/pnas.88.6.2093 . PMC 51175. PMID 1706516 .  
  92. Muslimov IA, Banker G, Brosius J, Tiedge H (junio de 1998). "Regulación dependiente de la actividad del ARN BC1 dendrítico en neuronas hipocampales en cultivo" . The Journal of Cell Biology . 141 (7): 1601– 1611. doi : 10.1083/jcb.141.7.1601 . PMC 1828539. PMID 9647652 .  
  93. Wang H, Iacoangeli A, Lin D, Williams K, Denman RB, Hellen CU, et al. (diciembre de 2005). " ARN BC1 dendrítico en mecanismos de control traslacional" . The Journal of Cell Biology . 171 (5): 811– 821. doi : 10.1083/jcb.200506006 . PMC 1828541. PMID 16330711 .   
  94. Centonze D, Rossi S, Napoli I, Mercaldo V, Lacoux C, Ferrari F, et al. (agosto de 2007). " El ARN citoplasmático cerebral BC1 regula la transmisión mediada por el receptor de dopamina D2 en el estriado" . The Journal of Neuroscience . 27 (33): 8885– 8892. doi : 10.1523/JNEUROSCI.0548-07.2007 . PMC 6672174. PMID 17699670 .   
  95. Lewejohann L, Skryabin BV, Sachser N, Prehn C, Heiduschka P, Thanos S, et al. (septiembre de 2004). "Función de un ARN pequeño no mensajero neuronal: alteraciones del comportamiento en ratones con deleción del ARN BC1". Behavioural Brain Research . 154 (1): 273– 289. CiteSeerX 10.1.1.572.8071 . doi : 10.1016/j.bbr.2004.02.015 . PMID 15302134. S2CID 18840384 .    
  96. Golden DE, Gerbasi VR, Sontheimer EJ (agosto de 2008). "Un trabajo interno para los siRNA" . Molecular Cell . 31 (3): 309– 312. doi : 10.1016/j.molcel.2008.07.008 . PMC 2675693. PMID 18691963 .  
  97. Czech B, Malone CD, Zhou R, Stark A, Schlingeheyde C, Dus M, et al. (junio de 2008). " Una vía endógena de ARN de interferencia pequeño en Drosophila" . Nature . 453 (7196): 798–802 . Bibcode : 2008Natur.453..798C . doi : 10.1038/nature07007 . PMC 2895258. PMID 18463631 .   
  98. 1 2 Ogawa Y, Sun BK, Lee JT (junio de 2008). "Intersección de las vías de interferencia de ARN e inactivación del cromosoma X" . Science . 320 (5881): 1336– 1341. Bibcode : 2008Sci...320.1336O . doi : 10.1126/science.1157676 . PMC 2584363. PMID 18535243 .  
  99. Kiefer JC (abril de 2007). "Epigenética en el desarrollo". Developmental Dynamics . 236 (4): 1144– 1156. doi : 10.1002/dvdy.21094 . PMID 17304537. S2CID 23292265 .  
  100. 1 2 Mikkelsen TS, Ku M, Jaffe DB, Issac B, Lieberman E, Giannoukos G, et al. (agosto de 2007). " Mapas de todo el genoma del estado de la cromatina en células pluripotentes y comprometidas con el linaje" . Nature . 448 (7153): 553– 560. Bibcode : 2007Natur.448..553M . doi : 10.1038/nature06008 . PMC 2921165. PMID 17603471 .   
  101. Nickerson JA, Krochmalnic G, Wan KM, Penman S (enero de 1989). "Arquitectura de la cromatina y ARN nuclear" . Actas de la Academia Nacional de Ciencias de los Estados Unidos de América . 86 (1): 177– 181. Bibcode : 1989PNAS...86..177N . doi : 10.1073/pnas.86.1.177 . PMC 286427. PMID 2911567 .  
  102. Rodríguez-Campos A, Azorín F (noviembre de 2007). "El ARN es un componente integral de la cromatina que contribuye a su organización estructural" . PLOS ONE . 2 (11) e1182. Bibcode : 2007PLoSO...2.1182R . doi : 10.1371/journal.pone.0001182 . PMC 2063516. PMID 18000552 .  
  103. Chen X, Xu H, Yuan P, Fang F, Huss M, Vega VB, et al. (junio de 2008). " Integración de vías de señalización externas con la red transcripcional central en células madre embrionarias" . Cell . 133 (6): 1106–1117 . doi : 10.1016/j.cell.2008.04.043 . PMID 18555785. S2CID 1768190 .   
  104. 1 2 3 Rinn JL, Kertesz M, Wang JK, Squazzo SL, Xu X, Brugmann SA, et al. (junio de 2007). " Delimitación funcional de dominios de cromatina activa y silenciosa en loci HOX humanos mediante ARN no codificantes" . Cell . 129 (7): 1311– 1323. doi : 10.1016/j.cell.2007.05.022 . PMC 2084369. PMID 17604720 .   
  105. 1 2 Sanchez-Elsner T, Gou D, Kremmer E, Sauer F (febrero de 2006). "Los ARN no codificantes de los elementos de respuesta de trithorax reclutan a Drosophila Ash1 a Ultrabithorax". Science . 311 (5764): 1118– 1123. Bibcode : 2006Sci...311.1118S . doi : 10.1126/science.1117705 . PMID 16497925 . S2CID 16423723 .  (Retractado,  véase doi : 10.1126/science.344.6187.981-a , PMID 24876484 , Retraction Watch )  
  106. Jia L, Wang Y, Wang C, Du Z, Zhang S, Wen X, et al. (Abr 2020). "Oplr16 actúa como un nuevo factor de cromatina para controlar el destino de las células madre modulando el bucle cromosómico específico de pluripotencia y la desmetilación del ADN mediada por TET2" . Nucleic Acids Research . 48 (7): 3935– 3948. doi : 10.1093 / nar/gkaa097 . PMC 7144914. PMID 32055844 .    Este artículo incorpora texto de esta fuente, que está disponible bajo la licencia CC BY 4.0 .
  107. Mazo A, Hodgson JW, Petruk S, Sedkov Y, Brock HW (agosto de 2007). "Interferencia transcripcional: una capa inesperada de complejidad en la regulación génica". Journal of Cell Science . 120 (Pt 16): 2755– 2761. doi : 10.1242/jcs.007633 . PMID 17690303. S2CID 16059065 .  
  108. Cerase A, Tartaglia GG (septiembre de 2020). "Encuentro íntimo entre ARN no codificante largo y policomb" . Open Biology . 10 (9) 200126. doi : 10.1098/rsob.200126 . PMC 7536065. PMID 32898472 .  
  109. Denisenko O, Shnyreva M, Suzuki H, Bomsztyk K (octubre de 1998). "Las mutaciones puntuales en el dominio WD40 de Eed bloquean su interacción con Ezh2" . Biología Molecular y Celular . 18 (10): 5634– 5642. doi : 10.1128/MCB.18.10.5634 . PMC 109149. PMID 9742080 .  
  110. ^ Katayama S, Tomaru Y, Kasukawa T, Waki ​​K, Nakanishi M, Nakamura M, et al. (Septiembre de 2005). "Transcripción antisentido en el transcriptoma de mamíferos". Ciencia . 309 (5740): 1564– 1566. Bibcode : 2005Sci...309.1564R . doi : 10.1126/ciencia.1112009 . PMID 16141073 . S2CID 34559885 .   
  111. Nylund P, Garrido-Zabala B, Párraga AA, Vasquez L, Pyl PT, Harinck GM, et al. (27 de julio de 2023). "PVT1 interactúa con el complejo represor de policomb 2 para suprimir regiones genómicas con funciones proapoptóticas y supresoras de tumores en el mieloma múltiple" . Haematologica . 109 ( 2): 567– 577. doi : 10.3324/haematol.2023.282965 . PMC 10828784. PMID 37496441 .   
  112. 1 2 3 Yu W, Gius D, Onyango P, Muldoon-Jacobs K, Karp J, Feinberg AP, et al. (enero de 2008). "Silenciamiento epigenético del gen supresor de tumores p15 por su ARN antisentido" . Nature . 451 (7175): 202– 206. Bibcode : 2008Natur.451..202Y . doi : 10.1038/nature06468 . PMC 2743558. PMID 18185590 .   
  113. Pauler FM, Koerner MV, Barlow DP (junio de 2007). "Silenciamiento por ARN no codificantes improntados: ¿es la transcripción la respuesta?" . Trends in Genetics . 23 (6): 284– 292. doi : 10.1016/j.tig.2007.03.018 . PMC 2847181. PMID 17445943 .  
  114. Braidotti G, Baubec T, Pauler F, Seidl C, Smrzka O, Stricker S, et al. (2004). "El ARN no codificante Air: un transcrito de silenciamiento cis improntado" . Simposios de Cold Spring Harbor sobre biología cuantitativa . 69 : 55–66 . doi : 10.1101/sqb.2004.69.55 . PMC 2847179. PMID 16117633 .   
  115. Mitsuya K, Meguro M, Lee MP, Katoh M, Schulz TC, Kugoh H, et al. (julio de 1999). "LIT1, un ARN antisentido improntado en el locus KvLQT1 humano identificado mediante la detección de transcritos expresados ​​diferencialmente utilizando híbridos monocromosómicos". Human Molecular Genetics . 8 (7): 1209– 1217. doi : 10.1093/hmg/8.7.1209 . PMID 10369866 .  
  116. Mancini-Dinardo D, Steele SJ, Levorse JM, Ingram RS, Tilghman SM (mayo de 2006). "La elongación del transcrito Kcnq1ot1 es necesaria para la impronta genómica de genes vecinos" . Genes & Development . 20 (10): 1268– 1282. doi : 10.1101/gad.1416906 . PMC 1472902. PMID 16702402 .  
  117. 1 2 Umlauf D, Goto Y, Cao R, Cerqueira F, Wagschal A, Zhang Y, et al. (diciembre de 2004). "La impronta a lo largo del dominio Kcnq1 en el cromosoma 7 del ratón implica metilación represiva de histonas y reclutamiento de complejos del grupo Polycomb". Nature Genetics . 36 (12): 1296– 1300. doi : 10.1038/ng1467 . PMID 15516932 . S2CID 19084498 .   
  118. Sleutels F, Zwart R, Barlow DP (febrero de 2002). "El ARN Air no codificante es necesario para silenciar genes autosómicos con impronta". Nature . 415 ( 6873): 810– 813. Bibcode : 2002Natur.415..810S . doi : 10.1038/415810a . PMID 11845212. S2CID 4420245 .  
  119. Zwart R, Sleutels F, Wutz A, Schinkel AH, Barlow DP (septiembre de 2001). "Acción bidireccional del elemento de control de impronta Igf2r sobre genes improntados aguas arriba y aguas abajo" . Genes & Development . 15 (18): 2361– 2366. doi : 10.1101/gad.206201 . PMC 312779. PMID 11562346 .  
  120. Fournier C, Goto Y, Ballestar E, Delaval K, Hever AM, Esteller M, et al. (diciembre de 2002). "La metilación de lisina de histonas específica de alelo marca regiones reguladoras en genes de ratón con impronta" . The EMBO Journal . 21 (23): 6560– 6570. doi : 10.1093/emboj/cdf655 . PMC 136958. PMID 12456662 .   
  121. 1 2 Wutz A, Gribnau J (octubre de 2007). "X inactivation Xplained". Current Opinion in Genetics & Development . 17 (5): 387– 393. doi : 10.1016/j.gde.2007.08.001 . PMID 17869504 . 
  122. Morey C, Navarro P, Debrand E, Avner P, Rougeulle C, Clerc P (febrero de 2004). "La región 3′ a Xist media el recuento del cromosoma X y la dimetilación de H3 Lys-4 dentro del gen Xist" . The EMBO Journal . 23 (3): 594– 604. doi : 10.1038/sj.emboj.7600071 . PMC 1271805. PMID 14749728 .  
  123. Costanzi C, Pehrson JR (junio de 1998). "La macrohistona H2A1 se concentra en el cromosoma X inactivo de los mamíferos hembra". Nature . 393 ( 6685): 599– 601. Bibcode : 1998Natur.393..599C . doi : 10.1038/31275 . PMID 9634239. S2CID 205001095 .  
  124. Blasco MA (octubre de 2007). "Longitud de los telómeros, células madre y envejecimiento". Nature Chemical Biology . 3 (10): 640– 649. Bibcode : 2007NatCB...3..640B . doi : 10.1038/nchembio.2007.38 . PMID 17876321 . 
  125. 1 2 Schoeftner S, Blasco MA (febrero de 2008). "Transcripción regulada por el desarrollo de los telómeros de mamíferos por la ARN polimerasa II dependiente de ADN". Nature Cell Biology . 10 (2): 228– 236. doi : 10.1038/ncb1685 . PMID 18157120 . S2CID 5890629 .  
  126. 1 2 Azzalin CM, Reichenbach P, Khoriauli L, Giulotto E, Lingner J (noviembre de 2007). "ARN que contiene repeticiones teloméricas y factores de vigilancia del ARN en los extremos de los cromosomas de mamíferos" . Science . 318 ( 5851): 798– 801. Bibcode : 2007Sci...318..798A . doi : 10.1126/science.1147182 . PMID 17916692. S2CID 20693275 .  
  127. Donley N, Stoffregen EP, Smith L, Montagna C, Thayer MJ (abril de 2013). Bartolomei MS (ed.). " Replicación asíncrona, expresión monoalélica y efectos cis de largo alcance de ASAR6" . PLOS Genetics . 9 (4) e1003423. doi : 10.1371/journal.pgen.1003423 . PMC 3617217. PMID 23593023 .  
  128. Donley N, Smith L, Thayer MJ (enero de 2015). Bartolomei MS (ed.). "ASAR15, un locus cis-activo que controla el momento de replicación y la estabilidad del cromosoma 15 humano" . PLOS Genetics . 11 (1) e1004923. doi : 10.1371/journal.pgen.1004923 . PMC 4287527. PMID 25569254 .  
  129. Heskett MB, Smith LG, Spellman P, Thayer MJ (junio de 2020). "La expresión monoalélica recíproca de los genes lncRNA ASAR controla el momento de replicación del cromosoma 6 humano" . RNA . 26 ( 6): 724–738 . doi : 10.1261/rna.073114.119 . PMC 7266157. PMID 32144193 .  
  130. Murashko MM, Stasevich EM, Schwartz AM, Kuprash DV, Uvarova AN, Demin DE (abril de 2021). Blanco FJ (ed.). " El papel del ARN en las roturas del ADN, la reparación y los reordenamientos cromosómicos" . Biomolecules . 11 (4): 550. doi : 10.3390/biom11040550 . PMC 8069526. PMID 33918762 .  
  131. Novikova IV, Hennelly SP, Sanbonmatsu KY (noviembre de 2012). "Evaluando los ARN largos no codificantes: ¿Tienen los lncRNA estructura secundaria y terciaria?" . BioArchitecture . 2 (6): 189– 199. doi : 10.4161/bioa.22592 . ISSN 1949-0992 . OSTI 1629346 . PMC 3527312 . PMID 23267412 .    
  132. Chillón I, Marcia M (12 de octubre de 2020). "La estructura molecular de los ARN largos no codificantes: patrones emergentes e implicaciones funcionales". Critical Reviews in Biochemistry and Molecular Biology . 55 (6): 662– 690. doi : 10.1080/10409238.2020.1828259 . ISSN 1040-9238 . PMID 33043695 .  
  133. Uroda T, Anastasakou E, Rossi A, Teulon JM, Pellequer JL, Annibale P, et al. (septiembre de 2019). " Los pseudonudos conservados en el lncRNA MEG3 son esenciales para la estimulación de la vía p53" . Molecular Cell . 75 (5): 982–995.e9. doi : 10.1016/j.molcel.2019.07.025 . ISSN 1097-2765 . PMC 6739425. PMID 31444106 .    
  134. Kim DN, Thiel BC, Mrozowich T, Hennelly SP, Hofacker IL, Patel TR, et al. (2020-01-09). "La proteína de dedo de zinc CNBP altera la estructura 3-D del lncRNA Braveheart en solución" . Nature Communications . 11 (1) 148. Bibcode : 2020NatCo..11..148K . doi : 10.1038/ s41467-019-13942-4 . ISSN 2041-1723 . PMC 6952434. PMID 31919376 .    
  135. Aguilar R, Spencer KB, Kesner B, Rizvi NF, Badmalia MD, Mrozowich T, et al. (2022-03-30). " Dirigiendo Xist con compuestos que alteran la estructura del ARN y la inactivación del cromosoma X" . Nature . 604 (7904): 160– 166. Bibcode : 2022Natur.604..160A . doi : 10.1038/s41586-022-04537-z . ISSN 0028-0836 . PMC 11549687. PMID 35355011 .