Articulo de referencia

Bacteriófago MS2

El bacteriófago MS2 ( Emesvirus zinderi ), comúnmente llamado MS2, es un virus de ARN monocatenario de sentido positivo , icosaédrico, que infecta a la bacteria Escherichia coli...

El bacteriófago MS2 ( Emesvirus zinderi ), comúnmente llamado MS2, es un virus de ARN monocatenario de sentido positivo , icosaédrico, que infecta a la bacteria Escherichia coli y a otros miembros de la familia Enterobacteriaceae . [ 1 ] MS2 pertenece a una familia de virus bacterianos estrechamente relacionados que incluye los bacteriófagos f2 , , R17 y GA. [ 2 ] [ 3 ]

Es pequeño y contiene una proteína de maduración, una proteína de recubrimiento y ARN genómico. Además, posee uno de los genomas más pequeños conocidos, que codifica cuatro proteínas.

El ciclo de vida del MS2 implica la infección de bacterias con el factor de fertilidad, lo que permite que el virus se adhiera al pilus , aunque el mecanismo por el cual el ARN viral ingresa a la bacteria aún se desconoce. Una vez dentro, el ARN viral comienza a funcionar como ARN mensajero para producir proteínas virales. El MS2 replica su genoma de cadena positiva creando una cadena negativa de ARN como plantilla. Luego, el virus se ensambla y la célula bacteriana se lisa , liberando nuevos virus.

El virus fue aislado en 1961 y su genoma fue el primero en ser secuenciado completamente, en 1976, lo que proporcionó una comprensión crucial de los códigos genéticos. En aplicaciones prácticas, los componentes estructurales del MS2 se han utilizado para detectar ARN en células vivas. El virus también está siendo investigado por sus posibles usos en la administración de fármacos, la obtención de imágenes de tumores y la captación de luz. Además, debido a sus similitudes estructurales con los norovirus , sus condiciones de proliferación preferidas y su falta de patogenicidad para los humanos, el MS2 sirve como sustituto en estudios de la transmisión de la enfermedad por norovirus.

Virología

genoma

subtítulo
genoma del bacteriófago MS2

El genoma MS2 es uno de los más pequeños conocidos, compuesto por 3569 nucleótidos de ARN monocatenario. [ 4 ] Codifica solo cuatro proteínas: la proteína de maduración ( proteína A ), la proteína de lisis ( lys ), la proteína de la cubierta ( cp ) y la proteína replicasa ( rep ). [ 1 ] El gen que codifica lys se superpone tanto al extremo 3' del gen corriente arriba ( cp ) como al extremo 5' del gen corriente abajo ( rep ), y fue uno de los primeros ejemplos conocidos de genes superpuestos . El genoma de ARN de cadena positiva actúa como ARN mensajero y se traduce tras el desensamblaje viral dentro de la célula huésped. Aunque las cuatro proteínas están codificadas por el mismo ARN mensajero/viral, no todas se expresan al mismo nivel.

Estructura

Dibujo esquemático de un virión de Levivirus (sección transversal y vista lateral).

Un virión MS2 (partícula viral) tiene  un diámetro de aproximadamente 27 nm, según lo determinado por microscopía electrónica. [ 5 ] Consta de una copia de la proteína de maduración y 180 copias de la proteína de la cubierta (organizadas como 90 dímeros ) dispuestas en una envoltura icosaédrica con número de triangulación T=3 , que protege el ARN genómico en su interior. [ 6 ] El virión tiene un punto isoeléctrico (pI) de 3,9. [ 7 ]

La estructura de la proteína de la cubierta es una lámina β de cinco hebras con dos hélices α y una horquilla . Cuando se ensambla la cápside , las hélices y la horquilla se orientan hacia el exterior de la partícula, mientras que la lámina β se orienta hacia el interior. [ 8 ]

Ciclo vital

El virus MS2 infecta bacterias entéricas que portan el factor de fertilidad (F) , un plásmido que permite a las células actuar como donantes de ADN en la conjugación bacteriana . Los genes del plásmido F especifican las proteínas del pilus F , entre las que se incluye la proteína F-pilina, que actúa como receptor viral. El MS2 se une a la F-pilina en el lateral del pilus mediante su única proteína de maduración.

Una vez que el ARN viral ha entrado en la célula, comienza a funcionar como ARN mensajero para la producción de proteínas del fago. El gen de la proteína más abundante, la proteína de la cápside, puede traducirse inmediatamente. El inicio de la traducción del gen de la replicasa normalmente está oculto dentro de la estructura secundaria del ARN, pero puede abrirse transitoriamente cuando los ribosomas pasan a través del gen de la proteína de la cápside. La traducción de la replicasa también se detiene una vez que se han producido grandes cantidades de proteína de la cápside; los dímeros de la proteína de la cápside se unen y estabilizan la " horquilla operadora " del ARN, bloqueando el inicio de la replicasa. El inicio del gen de la proteína de maduración es accesible en el ARN que se está replicando, pero está oculto dentro de la estructura secundaria del ARN en el ARN MS2 completo; esto asegura la traducción de solo unas pocas copias de la proteína de maduración por ARN. Finalmente, el gen de la proteína de lisis solo puede iniciarse mediante ribosomas que han completado la traducción del gen de la proteína de la cápside y "retroceden" al inicio del gen de la proteína de lisis, con una frecuencia aproximada del 5%. [ 1 ]

Ciclo de vida del bacteriófago MS2

La replicación del genoma de cadena positiva MS2 requiere la síntesis del ARN de cadena negativa complementario, que luego puede usarse como plantilla para la síntesis de un nuevo ARN de cadena positiva. La replicación de MS2 ha sido mucho menos estudiada que la del bacteriófago Qβ , estrechamente relacionado , en parte porque la replicasa de MS2 ha sido difícil de aislar, pero es probable que sea similar. [ 1 ]

Se cree que la formación del virión se inicia mediante la unión de la proteína de maduración al ARN MS2; [ 9 ] de hecho, el complejo de proteína de maduración y ARN es infeccioso. El ensamblaje de la envoltura icosaédrica o cápside a partir de las proteínas de la cubierta puede ocurrir en ausencia de ARN; sin embargo, el ensamblaje de la cápside se inicia mediante la unión del dímero de proteína de la cubierta a la horquilla operadora, y el ensamblaje ocurre a concentraciones mucho menores de proteína de la cubierta cuando el ARN MS2 está presente. [ 1 ]

La lisis bacteriana y la liberación de los viriones recién formados ocurren cuando se ha acumulado suficiente proteína de lisis. La proteína de lisis (L) forma poros en la membrana citoplasmática, lo que conduce a la pérdida del potencial de membrana y la ruptura de la pared celular . [ 1 ] Se sabe que la proteína de lisis se une a DnaJ a través de un importante residuo P330. [ 10 ] Un motivo de dipéptido LS en la proteína L se encuentra en todo el género Levivirus y parece ser esencial para la actividad de lisis, aunque sus diferentes ubicaciones sugieren que han evolucionado independientemente. [ 11 ]

Máster 2 en Historia de la Ciencia y su Uso

En 1961, MS2 fue aislado por Alvin John Clark y reconocido como un fago que contenía ARN muy similar al bacteriófago f2 . [ 12 ]

En 1976, el genoma MS2 fue el primero en ser secuenciado completamente. [ 4 ] Esto fue logrado por Walter Fiers y su equipo, basándose en su hito anterior de 1972, el primer gen en ser secuenciado completamente, la proteína de la cápside MS2. [ 13 ] Estas secuencias se determinaron a nivel de ARN. [ 14 ] El primer intento de análisis estadístico del genoma MS2 fue la búsqueda de patrones en la secuencia de nucleótidos. Se identificaron varias secuencias no codificantes; sin embargo, en el momento de esta investigación (1979), se desconocían las funciones de los patrones no codificantes. [ 15 ]

Desde 1998, [ 16 ] la horquilla operadora MS2 y la proteína de la cubierta han demostrado su utilidad en la detección de ARN en células vivas (véase el etiquetado MS2 ). Actualmente, MS2 y otras cápsides virales también se están investigando como agentes en la administración de fármacos, la obtención de imágenes de tumores y aplicaciones de captación de luz. [ 17 ]

MS2, debido a sus similitudes estructurales con los norovirus , sus condiciones óptimas de proliferación similares y su no patogenicidad para los humanos, se ha utilizado como sustituto de los norovirus en estudios de transmisión de enfermedades. [ 18 ]

Véase también

Referencias

  1. 1 2 3 4 5 6 van Duin J, Tsareva N (2006). "Fagos de ARN monocatenario. Capítulo 15". En Calendar RL (ed.). Los bacteriófagos (Segunda  edición). Oxford University Press. págs. 175–196 . ISBN  978-0195148503.
  2. Paranchych W, Graham AF (diciembre de 1962). "Aislamiento y propiedades de un bacteriófago que contiene ARN". Journal of Cellular and Comparative Physiology . 60 (3): 199– 208. doi : 10.1002/jcp.1030600303 . PMID 13941371 . 
  3. Ni CZ, White CA, Mitchell RS, Wickersham J, Kodandapani R, Peabody DS, Ely KR (diciembre de 1996). " Estructura cristalina de la proteína de la cubierta del bacteriófago GA: modelo del dímero no ensamblado" . Protein Science . 5 (12): 2485–93 . doi : 10.1002/pro.5560051211 . PMC 2143325. PMID 8976557 .  
  4. ^ Fiers W, Contreras R, Duerinck F, Haegeman G, Iserentant D, Merregaert J, Min Jou W, Molemans F, Raeymaekers A, Van den Berghe A, Volckaert G, Ysebaert M (abril de 1976) . "Secuencia completa de nucleótidos del ARN del bacteriófago MS2: estructura primaria y secundaria del gen de la replicasa". Naturaleza . 260 (5551): 500– 7. Bibcode : 1976Natur.260..500F . doi : 10.1038/260500a0 . PMID 1264203 . S2CID 4289674 .  
  5. Strauss JH, Sinsheimer RL (julio de 1963). "Purificación y propiedades del bacteriófago MS2 y de su ácido ribonucleico". Journal of Molecular Biology . 7 : 43–54 . doi : 10.1016/S0022-2836(63)80017-0 . PMID 13978804 . 
  6. Valegård K, Liljas L, Fridborg K, Unge T (mayo de 1990). "La estructura tridimensional del virus bacteriano MS2". Nature . 345 ( 6270): 36– 41. Bibcode : 1990Natur.345...36V . doi : 10.1038/345036a0 . PMID 2330049. S2CID 2803228 .  
  7. Dowd SE, Pillai SD, Wang S, Corapcioglu MY (1998). "Delimitación de la influencia específica del punto isoeléctrico y el tamaño del virus en la adsorción y el transporte de virus a través de suelos arenosos" . Appl . Environ. Microbiol. 64 (2): 405– 410. Bibcode : 1998ApEnM..64..405D . doi : 10.1128/aem.64.2.405-410.1998 . PMC 106058. PMID 9464373 .  
  8. Golmohammadi R, Valegård K, Fridborg K, Liljas L (diciembre de 1993). "La estructura refinada del bacteriófago MS2 a una resolución de 2,8 Å". Journal of Molecular Biology . 234 (3): 620– 39. doi : 10.1006/jmbi.1993.1616 . PMID 8254664 . 
  9. Johansson HE, Liljas L, Uhlenbeck OC (diciembre de 1997). "Reconocimiento de ARN por la proteína de la cubierta del fago MS2". Seminars in Virology . 8 (3): 176– 85. doi : 10.1006/smvy.1997.0120 .
  10. Chamakura KR, Tran JS, Young R (junio de 2017). "La lisis de Escherichia coli por MS2 depende de la chaperona del huésped DnaJ" . Journal of Bacteriology . 199 (12). doi : 10.1128/JB.00058-17 . PMC 5446614. PMID 28396351 .  
  11. Chamakura KR, Edwards GB, Young R (julio de 2017). " Análisis mutacional de la proteína de lisis L de MS2" . Microbiology . 163 (7): 961–969 . doi : 10.1099/mic.0.000485 . PMC 5775895. PMID 28691656 .  
  12. "Academia Nacional de Ciencias: Resúmenes de ponencias presentadas en la Reunión de Otoño, 29 de octubre, La Jolla, California, 30 de octubre-1 de noviembre de 1961, Los Ángeles". Science . 134 (3488): 1425–37 . Noviembre de 1961. Bibcode : 1961Sci...134.1425. . doi : 10.1126/science.134.3488.1425 . PMID 17795773 . 
  13. Min Jou W, Haegeman G, Ysebaert M, Fiers W (mayo de 1972). "Secuencia de nucleótidos del gen que codifica la proteína de la cápside del bacteriófago MS2". Nature . 237 ( 5350): 82–8 . Bibcode : 1972Natur.237...82J . doi : 10.1038/237082a0 . PMID 4555447. S2CID 4153893 .  
  14. Sanger F, Air GM, Barrell BG, Brown NL, Coulson AR, Fiddes CA, Hutchison CA, Slocombe PM, Smith M (febrero de 1977). "Secuencia de nucleótidos del ADN del bacteriófago phi X174". Nature . 265 ( 5596): 687– 95. Bibcode : 1977Natur.265..687S . doi : 10.1038/265687a0 . PMID 870828. S2CID 4206886 .  
  15. Erickson JW, Altman GG (abril de 1979). "Una búsqueda de patrones en la secuencia de nucleótidos del genoma MS2". Journal of Mathematical Biology . 7 (3): 219– 30. doi : 10.1007/BF00275725 . S2CID 85199492 . 
  16. Bertrand E, Chartrand P, Schaefer M, Shenoy SM, Singer RH, Long RM (octubre de 1998). "Localización de partículas de ARNm de ASH1 en levadura viva" . Molecular Cell . 2 (4): 437– 45. doi : 10.1016/S1097-2765(00)80143-4 . PMID 9809065 . 
  17. Glasgow J, Tullman-Ercek D (julio de 2014). "Producción y aplicaciones de cápsides virales modificadas". Microbiología Aplicada y Biotecnología . 98 (13): 5847– 58. doi : 10.1007/s00253-014-5787-3 . PMID 24816622. S2CID 6212583 .  
  18. Fox M (8 de septiembre de 2014). "Los virus se propagan 'como locos' en una oficina, según un estudio" . The Today Show .
  • Genoma completo (también incluye los aislados R17 , DL16 y J20 )