Articulo de referencia

ADN polimerasa I

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La ADN polimerasa I (o Pol I ) es una enzima que participa en el proceso de replicación del ADN procariota . Descubierta por Arthur Kornberg en 1956, [ 1 ] fue la primera ADN polimerasa conocida (y la primera polimerasa conocida de cualquier tipo ). Se caracterizó inicialmente en E. coli y es ubicua en procariotas . En E. coli y muchas otras bacterias, el gen que codifica la Pol I se conoce como polA . La enzima Pol I de E.  coli está compuesta por 928 aminoácidos y es un ejemplo de enzima procesiva : puede catalizar secuencialmente múltiples pasos de polimerización sin liberar la plantilla de cadena simple. [ 2 ] La función fisiológica de la Pol I es principalmente apoyar la reparación del ADN dañado, pero también contribuye a conectar los fragmentos de Okazaki eliminando los cebadores de ARN y reemplazando los ribonucleótidos con ADN.

Descubrimiento

En 1956, Arthur Kornberg y sus colegas descubrieron la Pol I utilizando extractos de Escherichia coli ( E. coli ) para desarrollar un ensayo de síntesis de ADN. Los científicos añadieron timidina marcada con 14C para poder recuperar un polímero radiactivo de ADN, no de ARN. Para iniciar la purificación de la ADN polimerasa, los investigadores añadieron sulfato de estreptomicina al extracto de E. coli . Esto separó el extracto en un sobrenadante libre de ácidos nucleicos (fracción S) y un precipitado que contenía ácidos nucleicos (fracción P). La fracción P también contenía Pol I y factores termoestables esenciales para las reacciones de síntesis de ADN. Estos factores se identificaron como nucleósido trifosfatos , los bloques de construcción de los ácidos nucleicos. La fracción S contenía múltiples desoxinucleósido quinasas . [ 3 ] En 1959, el Premio Nobel de Fisiología o Medicina fue otorgado a Arthur Kornberg y Severo Ochoa "por su descubrimiento de los mecanismos involucrados en la síntesis biológica del ácido ribonucleico y el ácido desoxirribonucleico ". [ 4 ]

Arthur Kornberg 1969

Estructura y función

Estructura general

La Pol I funciona principalmente en la reparación del ADN dañado. Estructuralmente, la Pol I es un miembro de la superfamilia de proteínas alfa/beta, que abarca proteínas en las que las hélices α y las hebras β se presentan en secuencias irregulares. La ADN Pol I de E. coli consta de múltiples dominios con tres actividades enzimáticas distintas. Tres dominios, a menudo denominados dominio pulgar, dedo y palma, trabajan juntos para mantener la actividad de la ADN polimerasa. [ 5 ] Un cuarto dominio, junto al dominio palma, contiene un sitio activo de exonucleasa que elimina los nucleótidos incorporados incorrectamente en dirección 3' a 5' en un proceso conocido como corrección de pruebas. Un quinto dominio contiene otro sitio activo de exonucleasa que elimina ADN o ARN en dirección 5' a 3' y es esencial para la eliminación del cebador de ARN durante la replicación del ADN o del ADN durante los procesos de reparación del ADN.

La bacteria E. coli produce 5 polimerasas de ADN diferentes: ADN Pol I, ADN Pol II, ADN Pol III, ADN Pol IV y ADN Pol V. [ 6 ]

Similitud estructural y funcional con otras polimerasas

En la replicación del ADN, la cadena principal de ADN se extiende continuamente en la dirección del movimiento de la horquilla de replicación, mientras que la cadena rezagada de ADN corre discontinuamente en la dirección opuesta como fragmentos de Okazaki . [ 7 ] Las ADN polimerasas tampoco pueden iniciar cadenas de ADN, por lo que deben ser iniciadas por segmentos cortos de ARN o ADN conocidos como cebadores. [ 5 ] Para que tenga lugar la polimerización del ADN, deben cumplirse dos requisitos. En primer lugar, todas las ADN polimerasas deben tener tanto una cadena molde como una cadena cebadora. A diferencia del ARN, las ADN polimerasas no pueden sintetizar ADN a partir de una cadena molde. La síntesis debe ser iniciada por un segmento corto de ARN, conocido como cebador de ARN , sintetizado por la primasa en la dirección 5' a 3'. La síntesis de ADN entonces ocurre por la adición de un dNTP al grupo hidroxilo 3' en el extremo de la cadena de ADN preexistente o del cebador de ARN. En segundo lugar, las ADN polimerasas solo pueden agregar nuevos nucleótidos a la cadena preexistente a través de enlaces de hidrógeno. [ 6 ] Dado que todas las ADN polimerasas tienen una estructura similar, todas comparten un mecanismo de polimerización catalizado por dos iones metálicos. Uno de los iones metálicos activa el grupo hidroxilo 3' del cebador, que luego ataca el fosfato 5' primario del dNTP. El segundo ion metálico estabiliza la carga negativa del oxígeno saliente y, posteriormente, quelata los dos grupos fosfato salientes. [ 8 ]

Las estructuras cristalinas por rayos X de los dominios de polimerasa de las ADN polimerasas se describen por analogía con la mano derecha humana. Todas las ADN polimerasas contienen tres dominios. El primer dominio, conocido como el "dominio de los dedos", interactúa con el dNTP y la base molde apareada. El "dominio de los dedos" también interactúa con la plantilla para posicionarla correctamente en el sitio activo. [ 9 ] El segundo dominio, conocido como el "dominio de la palma", cataliza la reacción de transferencia del grupo fosforilo. Por último, el tercer dominio, conocido como el "dominio del pulgar", interactúa con el ADN de doble cadena. [ 10 ] El dominio exonucleasa contiene su propio sitio catalítico y elimina las bases mal apareadas. Entre las siete familias diferentes de ADN polimerasas, el "dominio de la palma" se conserva en cinco de ellas. Los dominios de los dedos y del pulgar no son consistentes en cada familia debido a la variación de los elementos de estructura secundaria de las diferentes secuencias. [ 9 ]

Función

La Pol I posee cuatro actividades enzimáticas:

  1. Actividad de ADN polimerasa dependiente de ADN 5'→3' (hacia adelante), que requiere un sitio de cebado 3' y una cadena molde.
  2. Una actividad exonucleasa 3'→5' (inversa) que media la corrección de pruebas.
  3. Una actividad exonucleasa 5'→3' (hacia adelante) que media la traducción de muescas durante la reparación del ADN .
  4. Actividad de ADN polimerasa dependiente de ARN 5'→3' (hacia adelante). La Pol I opera sobre plantillas de ARN con una eficiencia considerablemente menor (0,1 0,4%) que sobre plantillas de ADN, y esta actividad probablemente tenga una importancia biológica limitada. [ 11 ]

Para determinar si la Pol I se utilizaba principalmente para la replicación del ADN o para la reparación del daño en el ADN, se realizó un experimento con una cepa mutante de E. coli deficiente en Pol I. La cepa mutante, que carecía de Pol I, se aisló y se trató con un mutágeno. La cepa mutante desarrolló colonias bacterianas que continuaron creciendo normalmente y que también carecían de Pol I. Esto confirmó que la Pol I no era necesaria para la replicación del ADN. Sin embargo, la cepa mutante también mostró características que implicaban una sensibilidad extrema a ciertos factores que dañan el ADN, como la luz ultravioleta . Por lo tanto, esto reafirmó que era más probable que la Pol I estuviera involucrada en la reparación del daño en el ADN que en la replicación del ADN. [ 6 ]

Mecanismo

En el proceso de replicación, la RNasa H elimina el cebador de ARN (creado por la primasa ) de la hebra rezagada y, a continuación, la polimerasa I rellena los nucleótidos necesarios entre los fragmentos de Okazaki (véase replicación del ADN ) en dirección 5'→3', corrigiendo errores a medida que avanza. Es una enzima dependiente de plantilla: solo añade nucleótidos que se aparean correctamente con una hebra de ADN existente que actúa como plantilla. Es crucial que estos nucleótidos tengan la orientación y geometría adecuadas para aparearse con la hebra de ADN plantilla, de modo que la ADN ligasa pueda unir los distintos fragmentos en una hebra continua de ADN . Estudios sobre la polimerasa I han confirmado que diferentes dNTP pueden unirse al mismo sitio activo de la polimerasa I. La polimerasa I es capaz de discriminar activamente entre los diferentes dNTP solo después de sufrir un cambio conformacional . Una vez que se ha producido este cambio, la Pol I comprueba la geometría y la alineación correctas del par de bases formado entre el dNTP unido y una base correspondiente en la hebra plantilla. La geometría correcta de los pares de bases A=T y G≡C es la única que puede encajar en el sitio activo . Sin embargo, es importante saber que uno de cada 10⁴ a 10⁵ nucleótidos se añade incorrectamente. No obstante, la Pol I puede corregir este error en la replicación del ADN mediante su método selectivo de discriminación activa. [ 5 ]

A pesar de su caracterización temprana, pronto se hizo evidente que la polimerasa I no era la enzima responsable de la mayor parte de la síntesis de ADN: la replicación del ADN en E. coli procede a aproximadamente 1000 nucleótidos/segundo, mientras que la tasa de síntesis de pares de bases por la polimerasa I promedia solo entre 10 y 20 nucleótidos/segundo. Además, su abundancia celular de aproximadamente 400 moléculas por célula no se correlacionaba con el hecho de que normalmente solo hay dos horquillas de replicación en E. coli . Adicionalmente, es insuficientemente procesiva para copiar un genoma completo , ya que se descompone después de incorporar solo 25-50 nucleótidos . Su papel en la replicación se demostró cuando, en 1969, John Cairns aisló un mutante viable de polimerasa I que carecía de actividad polimerasa. [ 12 ] La asistente de laboratorio de Cairns, Paula De Lucia, creó miles de extractos libres de células de colonias de E. coli y los analizó para detectar la actividad de la ADN polimerasa. El clon número 3478 contenía el mutante polA , que fue nombrado por Cairns en honor a "Paula" [De Lucia]. [ 13 ] No fue hasta el descubrimiento de la ADN polimerasa III que finalmente se identificó la principal ADN polimerasa replicativa.

Aplicaciones de investigación

ADN polimerasa I: Fragmento de Klenow (PDB 1KLN EBI) [ 14 ]

La ADN polimerasa I obtenida de E. coli se utiliza ampliamente en la investigación de biología molecular . Sin embargo, su actividad exonucleasa 5'→3' la hace inadecuada para muchas aplicaciones. Esta actividad enzimática indeseable puede eliminarse fácilmente de la holoenzima para dejar una molécula útil llamada fragmento de Klenow , ampliamente utilizada en biología molecular . De hecho, el fragmento de Klenow se utilizó durante los primeros protocolos de amplificación por reacción en cadena de la polimerasa (PCR) hasta que se descubrió Thermus aquaticus , la fuente de una Taq polimerasa I termotolerante , en 1976. [ 15 ] La exposición de la ADN polimerasa I a la proteasa subtilisina escinde la molécula en un fragmento más pequeño, que conserva solo las actividades de ADN polimerasa y corrección de errores.

Véase también

Referencias

  1. Lehman IR, Bessman MJ, Simms ES, Kornberg A (julio de 1958). "Síntesis enzimática de ácido desoxirribonucleico. I. Preparación de sustratos y purificación parcial de una enzima de Escherichia coli " . The Journal of Biological Chemistry . 233 (1): 163–70 . doi : 10.1016/S0021-9258(19)68048-8 . PMID 13563462 . 
  2. ^ Voet D, Voet JG, Pratt CW (1999). Fundamentos de Bioquímica . Nueva York: Wiley.
  3. Lehman IR (septiembre de 2003). "Descubrimiento de la ADN polimerasa" . The Journal of Biological Chemistry . 278 (37): 34733–8 . doi : 10.1074/jbc.X300002200 . PMID 12791679 . 
  4. "El Premio Nobel de Fisiología o Medicina de 1959" . www.nobelprize.org . Consultado el 8 de noviembre de 2016 .
  5. 1 2 3 Cox MM, Doudna J (2015). Biología molecular (2.ª ed.). Nueva York: WH Freeman. 
  6. 1 2 3 Cooper, Geoffrey M. Geoffrey (2000-01-01). "Replicación del ADN" . Sinauer Associates.{{cite journal}}: Para citar una revista se requiere |journal=( ayuda )
  7. ^ Hübscher U, Spadari S, Villani G, Maga G (2010). ADN polimerasas . doi : 10.1142/7667 . ISBN 978-981-4299-16-9.
  8. "ADN polimerasa I: Reacciones enzimáticas" .
  9. 1 2 "MBIO.4.14.5" . bioscience.jbpub.com . Archivado del original el 30-09-2017 . Recuperado el 14-05-2017 .
  10. Loeb LA, Monnat RJ (agosto de 2008). "ADN polimerasas y enfermedades humanas". Nature Reviews Genetics . 9 (8): 594– 604. doi : 10.1038/nrg2345 . PMID 18626473. S2CID 3344014 .  
  11. Ricchetti M, Buc H (febrero de 1993). " La ADN polimerasa I de E. coli como transcriptasa inversa" . The EMBO Journal . 12 (2): 387–96 . doi : 10.1002/j.1460-2075.1993.tb05670.x . PMC 413221. PMID 7679988 .  
  12. De Lucia P, Cairns J (diciembre de 1969). "Aislamiento de una cepa de E. coli con una mutación que afecta a la ADN polimerasa". Nature . 224 ( 5225): 1164– 6. Bibcode : 1969Natur.224.1164D . doi : 10.1038/2241164a0 . PMID 4902142. S2CID 4182917 .  
  13. Friedberg EC (febrero de 2006). "La enzima eureka: el descubrimiento de la ADN polimerasa". Nature Reviews Molecular Cell Biology . 7 (2): 143– 7. doi : 10.1038/nrm1787 . PMID 16493419. S2CID 39605644 .  
  14. EMBL-EBI. "Instituto Europeo de Bioinformática EMBL" . www.ebi.ac.uk. Consultado el 8 de noviembre de 2016 .
  15. van Pelt-Verkuil E, van Belkum A, Hays JP (2008). "Taq y otras ADN polimerasas termoestables". Principios y aspectos técnicos de la amplificación por PCR . págs. 103–18 . doi : 10.1007/978-1-4020-6241-4_7 . ISBN  978-1-4020-6240-7.