Articulo de referencia

Cicatriz glial

La formación de una cicatriz glial ( gliosis ) es un proceso celular reactivo que involucra la astrogliosis y que ocurre después de una lesión en el sistema nervioso central . A...

La formación de una cicatriz glial ( gliosis ) es un proceso celular reactivo que involucra la astrogliosis y que ocurre después de una lesión en el sistema nervioso central . Al igual que ocurre con las cicatrices en otros órganos y tejidos, la cicatriz glial es el mecanismo del cuerpo para protegerse e iniciar el proceso de curación en el sistema nervioso.

En el contexto de la neurodegeneración , se ha demostrado que la formación de la cicatriz glial tiene efectos tanto beneficiosos como perjudiciales. En particular, las células dentro de la cicatriz secretan numerosas moléculas inhibidoras del neurodesarrollo que impiden la recuperación física y funcional completa del sistema nervioso central tras una lesión o enfermedad. Por otro lado, la ausencia de la cicatriz glial se ha asociado con deficiencias en la reparación de la barrera hematoencefálica . [ 1 ]

Componentes de la cicatriz

La cicatriz glial se compone de varios componentes que se describen brevemente a continuación.

astrocitos reactivos

Los astrocitos reactivos son el principal componente celular de la cicatriz glial. [ 2 ] Tras una lesión, los astrocitos experimentan cambios morfológicos, extienden sus prolongaciones y aumentan la síntesis de la proteína ácida fibrilar glial (GFAP). La GFAP es una importante proteína de filamento intermedio que permite a los astrocitos comenzar a sintetizar más estructuras de soporte del citoesqueleto y extender pseudópodos . Finalmente, los astrocitos forman una densa red de sus prolongaciones de membrana plasmática que llena el espacio vacío generado por las células neuronales muertas o moribundas (un proceso llamado astrogliosis). La intensa proliferación de astrocitos también modifica la matriz extracelular que rodea la región dañada mediante la secreción de numerosas moléculas, como laminina , fibronectina , tenascina C y proteoglicanos . [ 3 ] [ 4 ] Estas moléculas son importantes moduladores del crecimiento neuronal. Por consiguiente, su presencia tras una lesión contribuye a la inhibición de la regeneración. [ 5 ] [ 6 ]

Otra advertencia importante sobre la respuesta astrocítica a las lesiones del SNC es su heterogeneidad. En particular, la respuesta de los astrocitos a la lesión varía según factores como la naturaleza de la lesión y el microambiente en el lugar de la lesión. [ 7 ] [ 8 ] Además, los astrocitos reactivos en la proximidad inmediata de la lesión aumentan la expresión génica, lo que agrava la respuesta de otros astrocitos y contribuye a la heterogeneidad. En particular, los astrocitos más cercanos a la lesión generalmente secretan más moléculas inhibidoras en la matriz extracelular. [ 2 ]

Microglía

Las microglías son el segundo tipo celular más abundante en la cicatriz glial. Son el equivalente en el sistema nervioso de los macrófagos del sistema inmunitario . Las microglías se activan rápidamente cerca de la lesión y secretan diversas citocinas , lípidos bioactivos, factores de coagulación, intermediarios reactivos de oxígeno y factores neurotróficos . [ 9 ] La expresión de estas moléculas depende de la ubicación de las células microgliales con respecto a la lesión, siendo las más cercanas a la lesión las que secretan la mayor cantidad de estas moléculas biológicamente activas.

Células endoteliales y fibroblastos

Las diversas moléculas biológicamente activas secretadas por la microglía estimulan y reclutan células endoteliales y fibroblastos . Estas células ayudan a estimular la angiogénesis y la secreción de colágeno en la zona lesionada. En última instancia, la cantidad de capilares que se extienden hacia la zona lesionada duplica la de las regiones del sistema nervioso central no lesionadas. [ 10 ]

Membrana basal

La membrana basal es una característica histopatológica de la matriz extracelular que se forma en el centro de la lesión y cubre parcialmente las prolongaciones astrocíticas. Está compuesta por tres capas, siendo la lámina basal la más prominente. A nivel molecular, la membrana basal está formada por protómeros de glicoproteínas y proteoglicanos. Además, dentro de la membrana basal se forman dos redes independientes de colágeno IV y laminina que proporcionan soporte estructural. Otros componentes moleculares de la membrana basal incluyen fibulina -1, fibronectina , entactina y el proteoglicano perlecano, derivado del sulfato de heparina. Finalmente, los astrocitos se adhieren a la membrana basal, y el complejo rodea los vasos sanguíneos y el tejido nervioso para formar la cubierta inicial de la herida. [ 2 ]

Efectos beneficiosos de la cicatriz

La función principal de la cicatriz glial es restablecer la integridad física y química del SNC. Esto se logra mediante la formación de una barrera en la zona lesionada que sella el límite entre el tejido nervioso y el no nervioso. Esto también permite la regeneración de la barrera selectiva para prevenir nuevas infecciones microbianas y la propagación del daño celular. Además, la cicatriz glial estimula la revascularización de los capilares sanguíneos para aumentar el soporte nutricional, trófico y metabólico del tejido nervioso. [ 2 ]

Efectos perjudiciales de la cicatriz

La cicatriz glial también impide la regeneración neuronal. Tras un traumatismo en el SNC, los axones comienzan a brotar e intentan extenderse a través del sitio de la lesión para reparar las regiones dañadas. Sin embargo, la cicatriz impide la extensión axonal por medios físicos y químicos. Los astrocitos forman una densa red de uniones comunicantes que genera una barrera física para la regeneración axonal. Además, los astrocitos secretan varias moléculas inhibidoras del crecimiento que impiden químicamente la extensión axonal. Asimismo, se espera que el componente de la membrana basal genere una barrera física y química adicional para la extensión axonal. [ 2 ]

Inductores moleculares primarios de cicatrices

La formación de la cicatriz glial es un proceso complejo. Se han identificado varias clases principales de mediadores moleculares de la gliosis, las cuales se describen brevemente a continuación.

Factor de crecimiento transformante β

Dos subclases de importancia neuronal de la familia de moléculas del factor de crecimiento transformante son TGFβ-1 y TGFβ-2, que estimulan directamente a los astrocitos, las células endoteliales y los macrófagos. Se ha observado que TGFβ-1 aumenta inmediatamente después de una lesión en el sistema nervioso central, mientras que la expresión de TGFβ-2 ocurre más lentamente cerca del sitio de la lesión. Además, se ha demostrado que TGFβ-2 estimula la producción de proteoglicanos inhibidores del crecimiento por parte de los astrocitos. [ 11 ] Se ha demostrado que la reducción experimental de TGFβ-1 y TGFβ-2 reduce parcialmente la cicatrización glial. [ 12 ]

interleucinas

Las interleucinas son otra familia potencial de mensajeros celulares inductores de cicatrices. En particular, la interleucina-1, una proteína producida por los fagocitos mononucleares , ayuda a iniciar la respuesta inflamatoria en los astrocitos, lo que conduce a la astrogliosis reactiva y a la formación de la cicatriz glial. [ 13 ] [ 14 ]

Citocinas

La familia de citocinas inductoras de cicatrices gliales incluye el interferón-γ (IFNγ) y el factor de crecimiento de fibroblastos 2 (FGF2). Se ha demostrado que el IFNγ induce la proliferación de astrocitos y aumenta la extensión de la cicatriz glial en modelos de cerebro lesionado. [ 15 ] Además, la producción de FGF2 aumenta después de una lesión en el cerebro y la médula espinal. También se ha demostrado que el FGF2 aumenta la proliferación de astrocitos in vitro . [ 16 ] [ 17 ]

Factor neurotrófico ciliar

El factor neurotrófico ciliar (CNTF) es una proteína citosólica que no se secreta. Se ha demostrado que el CNTF promueve la supervivencia de cultivos neuronales in vitro y también puede actuar como factor diferenciador y trófico en células gliales. Además, se ha demostrado previamente que el CNTF afecta la diferenciación de células precursoras gliales in vitro ; sin embargo, la influencia del CNTF en el contexto in vivo se ha determinado recientemente. Winter et al. utilizaron ratones transgénicos con sobreexpresión de CNTF, así como controles de tipo salvaje con niveles de CNTF elevados artificialmente mediante inyección, y los sometieron a daño neuronal utilizando ZnSO₄ ( un factor degenerativo neuronal conocido), que se inyectó intranasalmente en el epitelio olfatorio . Luego se evaluó el bulbo olfatorio para la expresión de ARNm de GFAP , un marcador común de la cicatriz glial. Se determinó que los ratones con niveles elevados de CNTF aumentaron su expresión de ARNm de GFAP al doble. Estos datos sugieren que el CNTF puede mediar la formación de cicatrices gliales tras un daño en el SNC. [ 18 ]

Regulación positiva de la proteína de filamento intermedio nestina

La nestina es una proteína de filamento intermedio (FI) que participa en la polimerización de los FI y en la estabilidad de las macromoléculas. Los filamentos intermedios son esenciales para la motilidad celular, un requisito para cualquier migración o reacción celular importante. La nestina está presente normalmente durante el desarrollo del sistema nervioso central (SNC) y se reactiva tras estrés leve en este sistema. Sin embargo, Frisen et al. determinaron que la nestina también se sobreexpresa durante estrés severo, como lesiones que implican la formación de la cicatriz glial. Las lesiones de la médula espinal torácica media y las lesiones del nervio óptico , pero no las del nervio ciático , han mostrado aumentos marcados en la expresión de nestina durante las primeras 48 horas posteriores al traumatismo. Además, se ha demostrado que la sobreexpresión de nestina persiste hasta 13 meses después de la lesión. Estos datos sugieren que la sobreexpresión de nestina podría estar asociada con la cicatrización glial del SNC. [ 19 ]

Supresión de la formación de cicatrices gliales

Se han ideado diversas técnicas para impedir la formación de cicatrices. Estas técnicas pueden combinarse con otras técnicas de neuroregeneración para favorecer la recuperación funcional.

Olomoucina

La olomoucina, un derivado de purina, es un inhibidor de la cinasa dependiente de ciclina (CDK). La CDK es una proteína que promueve el ciclo celular y que, junto con otras proteínas pro-crecimiento, se activa de forma anómala durante la formación de la cicatriz glial. Estas proteínas pueden aumentar la proliferación de astrocitos y también provocar la muerte celular , exacerbando así el daño celular en el sitio de la lesión. Se ha demostrado que la administración intraperitoneal de olomoucina suprime la función de la CDK. Además, se ha demostrado que la olomoucina reduce la muerte neuronal, disminuye la proliferación astroglial (y, por lo tanto, reduce la astrogliosis) y aumenta la expresión de GAP-43, un marcador proteico útil para el crecimiento de neuritas. Asimismo, la reducción de la proliferación de astrocitos disminuye la expresión de proteoglicanos de sulfato de condroitina (CSPG), moléculas importantes de la matriz extracelular asociadas con la inhibición de la neuroregeneración después de un traumatismo en el SNC. [ 20 ]

Trabajos recientes también han demostrado que la olomucina suprime la proliferación microglial dentro de la cicatriz glial. Esto es particularmente importante porque la microglía desempeña un papel crucial en el daño secundario posterior a una lesión del SNC, durante la formación de la cicatriz. Las células microgliales se activan mediante diversas citocinas proinflamatorias (algunas de las cuales se mencionaron anteriormente). Modelos de lesión de la médula espinal en ratas han mostrado mejoras notables tras la administración de olomucina. Una hora después de la administración, la olomucina suprimió la proliferación microglial y redujo el edema tisular normalmente presente durante las primeras etapas de la formación de la cicatriz glial. Además, 24 horas después de la administración, se observó una reducción en la concentración de interleucina-1β . Adicionalmente, se ha demostrado que la administración de olomucina también disminuye la muerte celular neuronal . [ 21 ]

Inhibición de la fosfodiesterasa 4 (PDE4)

La fosfodiesterasa 4 es un miembro de la familia de proteínas fosfodiesterasas que escinden los enlaces fosfodiéster . Este es un paso importante en la degradación del monofosfato de adenosina cíclico (AMPc), una importante molécula de señalización intracelular; por el contrario, el bloqueo de la PDE4 aumentará el AMPc. Se ha demostrado previamente que el aumento de los niveles intracelulares de AMPc en las neuronas induce el crecimiento axonal. [ 22 ] En 2004, Nikulina et al. demostraron que la administración de rolipram , un inhibidor de la PDE4, puede aumentar los niveles de AMPc en las neuronas después de una lesión de la médula espinal . Esto es parcialmente posible porque el rolipram es lo suficientemente pequeño como para atravesar la barrera hematoencefálica y comenzar inmediatamente a catalizar reacciones en las neuronas. La administración de rolipram durante 10 días en roedores con lesión de la médula espinal resultó en un crecimiento axonal considerable asociado con una reducción en la cicatriz glial a las 2 semanas posteriores a la lesión. Actualmente se desconoce el mecanismo de esta reducción de la cicatrización glial, pero entre los posibles mecanismos se incluyen extensiones axonales que impiden físicamente la proliferación de astrocitos reactivos, así como eventos de señalización química para reducir la astrogliosis reactiva. [ 23 ]

Ribavirina

La ribavirina es un análogo de nucleósido de purina que se usa generalmente como medicamento antiviral. Sin embargo, también se ha demostrado que disminuye la cantidad de astrocitos reactivos. Se ha demostrado que la administración diaria durante al menos cinco días después de un traumatismo cerebral disminuye significativamente el número de astrocitos reactivos. [ 24 ]

Retrovirus antisentido GFAP

Se ha implementado un retrovirus antisentido de GFAP (PLBskG) para reducir la expresión del ARNm de GFAP , con el fin de suprimir el crecimiento y detener los astrocitos en la fase G1 del ciclo celular. Sin embargo, una limitación importante para la aplicación clínica del uso de retrovirus son los efectos no selectivos de PLBskG tanto en astrocitos normales como dañados. Se necesitan más estudios in vivo para determinar los efectos sistémicos de la administración de PLBskG. [ 25 ]

Anticuerpo monoclonal recombinante contra el factor de crecimiento transformante β2

Como se indicó en la sección anterior, el factor de crecimiento transformante β2 (TGFβ2) es un importante estimulante de la cicatriz glial que afecta directamente la proliferación de astrocitos. Logan et al. desarrollaron anticuerpos monoclonales contra el TGFβ2, generaron heridas cerebrales en cerebros de ratas y administraron los anticuerpos a través de los ventrículos diariamente durante 10 días. El análisis posterior mostró una marcada reducción de la cicatriz glial. En particular, la deposición de proteínas de la matriz extracelular ( laminina , fibronectina y proteoglicanos de sulfato de condroitina ) se acercó a los niveles basales (niveles de expresión proteica en un animal no lesionado). Además, se observó una reducción de astrocitos y microglía, así como una reducción de la inflamación y la angiogénesis . [ 26 ]

Anticuerpo monoclonal recombinante contra el receptor de interleucina-6

Se cree que la interleucina-6 (IL-6) es un mediador molecular de la formación de la cicatriz glial. Se ha demostrado que promueve la diferenciación de células madre neurales en astrocitos. Se ha utilizado un anticuerpo monoclonal, MR16-1, para atacar y bloquear los receptores de IL-6 en modelos de lesión de la médula espinal en ratas. En un estudio de Okada et al. , se inyectó intraperitonealmente a ratones con una dosis única de MR16-1 inmediatamente después de generar una lesión de la médula espinal. El bloqueo de los receptores de IL-6 disminuyó el número de astrocitos presentes en la lesión de la médula espinal, y esta disminución se asoció con una reducción de la cicatriz glial. [ 27 ]

Tratamiento o eliminación de cicatrices gliales

Se ha demostrado que la condroitinasa ABC degrada las cicatrices gliales. [ 28 ] [ 29 ] Se ha demostrado que la degradación de la cicatriz glial con condroitinasa promueve la recuperación de la lesión de la médula espinal, [ 30 ] especialmente cuando se combina con otras técnicas como conductos de guía nerviosa , trasplantes de células de Schwann , [ 31 ] y autoinjertos de nervios periféricos. [ 32 ]

Véase también

Referencias

  1. Faulkner JR, Herrmann JE, Woo MJ, Tansey KE, Doan NB, Sofroniew MV (marzo de 2004). "Los astrocitos reactivos protegen el tejido y preservan la función después de una lesión de la médula espinal" . J. Neurosci . 24 (9): 2143– 55. doi : 10.1523/JNEUROSCI.3547-03.2004 . PMC 6730429. PMID 14999065 .  
  2. 1 2 3 4 5 Stichel CC, Müller HW (octubre de 1998). "La cicatriz de la lesión del SNC: nuevas perspectivas sobre una antigua barrera de regeneración". Cell Tissue Res . 294 (1): 1– 9. doi : 10.1007/s004410051151 . PMID 9724451. S2CID 13652357 .  
  3. Jones LL, Margolis RU, Tuszynski MH (agosto de 2003). "Los proteoglicanos de sulfato de condroitina neurocan, brevican, phosphacan y versican se regulan diferencialmente después de una lesión de la médula espinal". Exp . Neurol . 182 (2): 399– 411. doi : 10.1016/S0014-4886(03)00087-6 . PMID 12895450. S2CID 16748373 .  
  4. 14561854
  5. Davies SJ, Fitch MT, Memberg SP, Hall AK, Raisman G, Silver J (1997). "Regeneración de axones adultos en tractos de sustancia blanca del sistema nervioso central". Nature . 390 (6661): 680– 3. Bibcode : 1997Natur.390..680D . doi : 10.1038/37776 . PMID 9414159 . S2CID 205026020 .  
  6. Silver, Jerry (2004). "Regeneración más allá de la cicatriz glial" . Nature Reviews Neuroscience . 5 (2): 146– 156. doi : 10.1038/nrn1326 . PMID 14735117 . 
  7. David S, Ness R. (1993). "Heterogeneidad de los astrocitos reactivos". En: Fedoroff S (ed) Biología y patología de las interacciones astrocito-neurona . Plenum Press, Nueva York, pp. 303-312.
  8. Fernaud-Espinosa I, Nieto-Sampedro N, Bovolenta P. (1993). "Activación diferencial de microglia y astrocitos en tejido gliótico aniso- e isomórfico." Glia 8: 277-291.
  9. Elkabes S, DiCicco-Bloom EM, Black IB (1996). "Las microglías/macrófagos cerebrales expresan neurotrofinas que regulan selectivamente la proliferación y la función de la microglía", Journal of Neuroscience 16: 2508–2521
  10. Jaeger CB, Blight AR (1997). "Lesión por compresión espinal en cobayas: cambios estructurales del endotelio y sus asociaciones celulares perivasculares tras la ruptura y reparación de la barrera hematoencefálica." Neurología Experimental 144: 381-399.
  11. Asher RA, et al. (2000). "La neurocanina se regula positivamente en el cerebro lesionado y en los astrocitos tratados con citocinas." Journal of Neuroscience 20, 2427–2438.
  12. Moon LDF, Fawcett JW. (2001). "Reducción de la formación de cicatrices en el SNC sin aumento concomitante de la regeneración axonal tras el tratamiento del cerebro de ratas adultas con una combinación de anticuerpos contra TGFβ1 y β2." European Journal of Neuroscience 14, 1667–1677.
  13. Giulian D, et al. (1988). "La interleucina-1 inyectada en el cerebro de mamíferos estimula la astrogliosis y la neovascularización." Journal of Neuroscience 8, 2485–2490.
  14. Silver J, Miller J. (2004). "Regeneración más allá de la cicatriz glial." Nature Reviews Neuroscience . 5(2): 146-156.
  15. Yong VW et al. (1991). "El interferón γ promueve la proliferación de astrocitos humanos adultos in vitro y la gliosis reactiva en el cerebro de ratones adultos in vivo ." PNAS USA 88, 7016–7020.
  16. Lander C, et al. (1997). "Una familia de proteoglicanos de sulfato de condroitina de la superficie celular neuronal dependientes de la actividad en la corteza visual del gato." Journal of Neuroscience 17, 1928–1939.
  17. Mocchetti I, et al. (1996). "Aumento de la expresión del factor de crecimiento de fibroblastos básico tras una lesión medular por contusión." Neurología Experimental 141, 154–164.
  18. Winger, CG, et al. (1995). "Un papel para el factor neurotrófico ciliar como inductor de la gliosis reactiva, la respuesta glial a la lesión del sistema nervioso central", Proc. Natl. Acad. Sci, USA , 92, 5865 - 5869.
  19. Frisen, J. (1995). "La inducción rápida, generalizada y de larga duración de nestina contribuye a la generación de tejido cicatricial glial después de una lesión del SNC", The Journal of Cell Biology 131(2): 453-464.
  20. Tian D, et al. (2006). "Supresión de la formación de cicatrices astrogliales y regeneración axonal mejorada asociada con la recuperación funcional en un modelo de rata con lesión de la médula espinal mediante el inhibidor del ciclo celular Olomoucina", Journal of Neuroscience Research 84: 1053-1063.
  21. Tian D., et al. (2007). "La inhibición del ciclo celular atenúa la respuesta inflamatoria inducida por la microglía y reduce la muerte celular neuronal tras una lesión de la médula espinal en ratas." Brain Research 1135: 177-185.
  22. Neumann, S., et al. (2002). "Regeneración de axones sensoriales dentro de la médula espinal lesionada inducida por elevación intraganglionar de cAMP." Neuron 34, 885–893.
  23. Nikulina, E. et al. (2004). "El inhibidor de la fosfodiesterasa rolipram administrado después de una lesión de la médula espinal promueve la regeneración axonal y la recuperación funcional", Proc Natl Acad Sci USA 101(23): 8786–8790.
  24. Pekovic, S., et al. (2006). "Regulación descendente de la cicatrización glial después de una lesión cerebral", Annals of the New York Academy of Sciences 1048(1): 296-310.
  25. Huang QL, Cai WQ, Zhang KC. (2000). "Efecto del control de la proliferación de astrocitos en la formación de cicatrices gliales por retrovirus antisentido GFAP", Chinese Science Bulletin 45(1): 38-44.
  26. Logan A, et al. (1999). "Inhibición de la cicatrización glial en el cerebro de rata lesionado mediante un anticuerpo monoclonal humano recombinante contra el factor de crecimiento transformante-β2", European Journal of Neuroscience 11: 2367-2374.
  27. Okada S, et al. (2004). "El bloqueo del receptor de interleucina-6 suprime la astrogliosis reactiva y mejora la recuperación funcional en la lesión experimental de la médula espinal", Journal of Neuroscience Research 76: 265-276.
  28. Bradbury, Elizabeth J. (2002). "La condroitinasa ABC promueve la recuperación funcional después de una lesión de la médula espinal". Nature . 416 (6881): 636– 640. Bibcode : 2002Natur.416..636B . doi : 10.1038/416636a . PMID 11948352. S2CID 4430737 .  
  29. "Una enzima modificada genéticamente podría ayudar a revertir el daño causado por lesiones en la médula espinal y accidentes cerebrovasculares" . 24 de agosto de 2020. Archivado del original el 25 de agosto de 2020. Consultado el 26 de agosto de 2020 .
  30. Bradbury, Elizabeth J. (2011). "Manipulación de la cicatriz glial: la condroitinasa ABC como terapia para la lesión de la médula espinal". Brain Research Bulletin . 84 ( 4–5 ): 306–316 . doi : 10.1016/j.brainresbull.2010.06.015 . PMID 20620201. S2CID 10605553 .  
  31. Fouad, Karim; Lisa Schnell; Mary B. Bunge; Martin E. Schwab; Thomas Liebscher; Damien D. Pearse (2 de febrero de 2005). "La combinación de puentes de células de Schwann e injertos de glía que envuelven el olfato con condroitinasa promueve la recuperación locomotora después de la transección completa de la médula espinal" . The Journal of Neuroscience . 25 (5): 1169– 1178. doi : 10.1523/JNEUROSCI.3562-04.2005 . PMC 6725952. PMID 15689553 .  
  32. Alilain, Warren J. (2011). "Regeneración funcional de las vías respiratorias después de una lesión de la médula espinal" . Nature . 475 (7355): 196– 200. doi : 10.1038/nature10199 . PMC 3163458. PMID 21753849 .