Articulo de referencia

codón de parada

Codón de parada (punto rojo) del gen MT-ATP8 del ADN mitocondrial humano y codón de inicio (círculo azul) del gen MT-ATP6 . Para cada triplete de nucleótidos (corchetes), se ind...

Codón de parada (punto rojo) del gen MT-ATP8 del ADN mitocondrial humano y codón de inicio (círculo azul) del gen MT-ATP6 . Para cada triplete de nucleótidos (corchetes), se indica el aminoácido correspondiente (código de una letra), ya sea en el marco de lectura +1 para MT-ATP8 (en rojo) o en el marco +3 para MT-ATP6 (en azul). En esta región genómica, los dos genes se solapan .

En biología molecular , un codón de parada (o codón de terminación ) es un codón ( triplete de nucleótidos dentro del ARN mensajero ) que señala la terminación del proceso de traducción de la proteína actual . [ 1 ] La mayoría de los codones en el ARN mensajero corresponden a la adición de un aminoácido a una cadena polipeptídica en crecimiento , que finalmente puede convertirse en una proteína; los codones de parada señalan la terminación de este proceso mediante la unión de factores de liberación , que hacen que las subunidades ribosómicas se disocien, liberando la cadena de aminoácidos.

Si bien los codones de inicio necesitan secuencias cercanas o factores de iniciación para comenzar la traducción, un codón de parada por sí solo es suficiente para iniciar la terminación.

Propiedades

Codones estándar

En el código genético estándar, existen tres codones de terminación diferentes:

Codones de parada alternativos

Hay variaciones en el código genético estándar , y se han encontrado codones de parada alternativos en los genomas mitocondriales de vertebrados , [ 2 ] Scenedesmus obliquus , [ 3 ] y Thraustochytrium . [ 4 ]

Codones de parada reasignados

El código genético nuclear es flexible, como lo ilustran los códigos genéticos variantes que reasignan los codones de parada estándar a los aminoácidos. [ 5 ]

Traducción

En 1986, se aportaron pruebas convincentes de que la selenocisteína (Sec) se incorporaba cotraduccionalmente. Además, se identificó el codón que dirige parcialmente su incorporación en la cadena polipeptídica como UGA, también conocido como codón de terminación opal. [ 6 ] Se han identificado diferentes mecanismos para anular la función de terminación de este codón en procariotas y eucariotas. [ 7 ] Una diferencia particular entre estos reinos es que los elementos cis parecen estar restringidos a la vecindad del codón UAG en procariotas, mientras que en eucariotas esta restricción no está presente. En cambio, dichas ubicaciones parecen desfavorecidas, aunque no prohibidas. [ 8 ]

En 2003, un artículo histórico describió la identificación de todas las selenoproteínas conocidas en humanos: 25 en total. [ 9 ] Se han realizado análisis similares para otros organismos.

El codón UAG puede traducirse en pirrolisina (Pyl) de manera similar.

Distribución genómica

La distribución de los codones de parada dentro del genoma de un organismo no es aleatoria y puede correlacionarse con el contenido de GC . [ 10 ] [ 11 ] Por ejemplo, el genoma de E. coli K-12 contiene 2705 TAA (63%), 1257 TGA (29%) y 326 TAG (8%) codones de parada (contenido de GC 50,8%). [ 12 ] Además, los sustratos para los codones de parada factor de liberación 1 o factor de liberación 2 están fuertemente correlacionados con la abundancia de codones de parada. [ 11 ] Un estudio a gran escala de bacterias con un amplio rango de contenidos de GC muestra que, si bien la frecuencia de aparición de TAA está correlacionada negativamente con el contenido de GC y la frecuencia de aparición de TGA está correlacionada positivamente con el contenido de GC, la frecuencia de aparición del codón de parada TAG, que suele ser el codón de parada menos utilizado en un genoma, no está influenciada por el contenido de GC. [ 13 ]

Reconocimiento

El reconocimiento de codones de parada en bacterias se ha asociado con el llamado "anticodón tripéptido" [ 14 ] , un motivo de aminoácidos altamente conservado en RF1 (PxT) y RF2 (SPF). Si bien esto está respaldado por estudios estructurales, se ha demostrado que la hipótesis del anticodón tripéptido es una simplificación excesiva [ 15 ] .

Nomenclatura

Históricamente, los codones de parada recibieron muchos nombres diferentes, ya que cada uno correspondía a una clase distinta de mutantes que se comportaban de manera similar. Estos mutantes se aislaron por primera vez en bacteriófagos ( T4 y lambda ), virus que infectan a la bacteria Escherichia coli . Las mutaciones en los genes virales debilitaban su capacidad infecciosa, creando en ocasiones virus que solo podían infectar y crecer en ciertas variedades de E. coli .

mutaciones ámbar ( UAG )

Fueron el primer conjunto de mutaciones sin sentido que se descubrieron, aisladas por Richard H. Epstein y Charles Steinberg y nombradas en honor a su amigo y estudiante de posgrado de Caltech, Harris Bernstein, cuyo apellido significa " ámbar " en alemán ( cf. Bernstein ). [ 16 ] [ 17 ] [ 18 ]

Los virus con mutaciones ámbar se caracterizan por su capacidad de infectar solo ciertas cepas de bacterias, conocidas como supresoras ámbar. Estas bacterias portan su propia mutación que permite la recuperación de la función en los virus mutantes. Por ejemplo, una mutación en el ARNt que reconoce el codón de parada ámbar permite que la traducción "lea" el codón y produzca una proteína de longitud completa, recuperando así la forma normal de la proteína y "suprimiendo" la mutación ámbar. [ 19 ] Por lo tanto, los mutantes ámbar son una clase completa de mutantes virales que pueden crecer en bacterias que contienen mutaciones supresoras ámbar. Se conocen supresores similares para los codones de parada ocre y opal también.

Se han diseñado moléculas de ARNt que contienen aminoácidos no naturales para reconocer el codón de parada ámbar en el ARN bacteriano. Esta tecnología permite la incorporación de aminoácidos ortogonales (como la p -azidofenilalanina ) en ubicaciones específicas de la proteína diana.

mutaciones ocre ( UAA )

Fue la segunda mutación de codón de parada que se descubrió. Con reminiscencias del color amarillo-naranja-marrón habitual asociado al ámbar, a este segundo codón de parada se le dio el nombre de " ocre " , un pigmento mineral de color naranja-rojizo-marrón. [ 17 ]

Los virus mutantes ocres presentaban una propiedad similar a la de los mutantes ámbar, ya que recuperaban la capacidad infecciosa dentro de ciertas cepas supresoras de bacterias. El conjunto de supresores ocres era distinto al de los supresores ámbar, por lo que se infirió que los mutantes ocres correspondían a un triplete de nucleótidos diferente. Mediante una serie de experimentos de mutación que comparaban estos mutantes entre sí y con otros codones de aminoácidos conocidos, Sydney Brenner concluyó que las mutaciones ámbar y ocre correspondían a los tripletes de nucleótidos "UAG" y "UAA". [ 20 ]

mutaciones de ópalo o tierra de sombra ( UGA )

El tercer y último codón de parada en el código genético estándar se descubrió poco después y corresponde al triplete de nucleótidos "UGA". [ 21 ]

Para seguir la temática de los minerales de colores, el tercer codón sin sentido pasó a conocerse como " ópalo " , un tipo de sílice que muestra una variedad de colores. [ 17 ] Las mutaciones sin sentido que crearon este codón de parada prematuro se denominaron posteriormente mutaciones de ópalo o mutaciones de umber .

Mutaciones y enfermedades

Disparates

Las mutaciones sin sentido son cambios en la secuencia de ADN que introducen un codón de parada prematuro, lo que provoca que la proteína resultante se acorte de forma anormal. Esto suele causar una pérdida de función en la proteína, ya que partes cruciales de la cadena de aminoácidos dejan de ensamblarse. Debido a esta terminología, los codones de parada también se conocen como codones sin sentido .

Sin escalas

Una mutación sin codón de parada , también llamada variante de pérdida de codón de parada , es una mutación puntual que ocurre dentro de un codón de parada. Las mutaciones sin codón de parada provocan la traducción continua de una cadena de ARNm en lo que debería ser una región no traducida. La mayoría de los polipéptidos resultantes de un gen con una mutación sin codón de parada pierden su función debido a su longitud extrema y al impacto en el plegamiento normal. Las mutaciones sin codón de parada se diferencian de las mutaciones sin sentido en que no crean un codón de parada, sino que lo eliminan. Las mutaciones sin codón de parada también se diferencian de las mutaciones de sentido erróneo , que son mutaciones puntuales donde un solo nucleótido cambia para causar su reemplazo por un aminoácido diferente . Las mutaciones sin codón de parada se han relacionado con muchas enfermedades hereditarias, incluidos trastornos endocrinos , [ 22 ] enfermedades oculares [ 23 ] y trastornos del neurodesarrollo . [ 24 ] [ 25 ]

Paradas ocultas

Un ejemplo de eliminación de una sola base que forma un codón de parada.

Los codones de parada ocultos son codones que no son de parada y que se leerían como codones de parada si se desplazaran +1 o −1 marcos de lectura. Estos terminan prematuramente la traducción si el desplazamiento del marco de lectura correspondiente (como el causado por un deslizamiento del ARN ribosómico) ocurre antes del codón de parada oculto. Se hipotetiza que esto disminuye el desperdicio de recursos en proteínas no funcionales y la producción de posibles citotoxinas . Investigadores de la Universidad Estatal de Luisiana proponen la hipótesis de la emboscada , según la cual los codones de parada ocultos son seleccionados. Los codones que pueden formar codones de parada ocultos se utilizan con mayor frecuencia en los genomas en comparación con los codones sinónimos que, de otro modo, codificarían el mismo aminoácido. El ARNr inestable en un organismo se correlaciona con una mayor frecuencia de codones de parada ocultos. [ 26 ] Sin embargo, esta hipótesis no pudo validarse con un conjunto de datos más amplio. [ 27 ]

Los codones de parada y las paradas ocultas se denominan colectivamente señales de parada. Investigadores de la Universidad de Memphis descubrieron que las proporciones de las señales de parada en los tres marcos de lectura de un genoma (denominadas proporción de señales de parada de traducción o TSSR) de bacterias genéticamente relacionadas, a pesar de sus grandes diferencias en el contenido genético, son muy similares. Este valor de TSSR genómico casi idéntico en bacterias genéticamente relacionadas podría sugerir que la expansión del genoma bacteriano está limitada por el sesgo único de las señales de parada de esa especie bacteriana. [ 28 ]

Lectura de traducción

La supresión del codón de parada o lectura traslacional ocurre cuando, durante la traducción, un codón de parada se interpreta como un codón de sentido, es decir, cuando un aminoácido (estándar) es "codificado" por el codón de parada. Los ARNt mutados pueden ser la causa de la lectura traslacional, pero también ciertos motivos de nucleótidos cercanos al codón de parada. La lectura traslacional es muy común en virus y bacterias, y también se ha encontrado como un principio de regulación génica en humanos, levaduras, bacterias y drosophila. [ 29 ] [ 30 ] Este tipo de lectura traslacional endógena constituye una variación del código genético , porque un codón de parada codifica para un aminoácido. En el caso de la malato deshidrogenasa humana , el codón de parada se lee con una frecuencia de aproximadamente el 4 %. [ 31 ] El aminoácido insertado en el codón de parada depende de la identidad del propio codón de parada: se han encontrado Gln, Tyr y Lys para los codones UAA y UAG, mientras que Cys, Trp y Arg para el codón UGA se han identificado mediante espectrometría de masas. [ 32 ] El grado de lectura completa en mamíferos tiene alcances muy variables y puede diversificar ampliamente el proteoma y afectar la progresión del cáncer. [ 33 ]

Utilizar como marca de agua

En 2010, cuando Craig Venter presentó la primera célula reproductiva totalmente funcional controlada por ADN sintético , describió cómo su equipo utilizó codones de parada frecuentes para crear marcas de agua en el ARN y el ADN para ayudar a confirmar que los resultados eran efectivamente sintéticos (y no contaminados o de otro tipo), usándolo para codificar los nombres de los autores y las direcciones de los sitios web. [ 34 ]

Véase también

Referencias

  1. Griffiths AJF, Miller JH, Suzuki DT, Lewontin RC, Gelbart WM (2000). "10. Biología molecular de la función genética: Código genético: §Codones de parada". Introducción al análisis genético (7.ª  ed.). WH Freeman. ISBN 978-0-7167-3520-5OCLC 42049331 
  2. Barrell, BG; Bankier, AT; Drouin, J. (1979-11-08). "Un código genético diferente en las mitocondrias humanas" . Nature . 282 ( 5735): 189– 194. Bibcode : 1979Natur.282..189B . doi : 10.1038/282189a0 . ISSN 0028-0836 . PMID 226894. S2CID 4335828 .   
  3. Nedelcu, AM; Lee, RW; Lemieux, G.; Gray, MW; Burger, G. (junio de 2000). " La secuencia completa del ADN mitocondrial de Scenedesmus obliquus refleja una etapa intermedia en la evolución del genoma mitocondrial de las algas verdes" . Genome Research . 10 (6): 819– 831. doi : 10.1101/gr.10.6.819 . PMC 310893. PMID 10854413 .  
  4. Wideman, Jeremy G.; Monier, Adam; Rodríguez-Martínez, Raquel; Leonard, Guy; Cook, Emily; Poirier, Camille; Maguire, Finlay; Milner, David S.; Irwin, Nicholas AT; Moore, Karen; Santoro, Alyson E. (2019-11-25). "Diversidad inesperada del genoma mitocondrial revelada por genómica dirigida de células individuales de protistas flagelados heterótrofos" . Nature Microbiology . 5 (1 ) : 154– 165. doi : 10.1038/s41564-019-0605-4 . hdl : 10871/39819 . ISSN 2058-5276 . PMID 31768028. S2CID 208279678 .   
  5. Swart, Estienne Carl; Serra, Valentina; Petroni, Giulio; Nowacki, Mariusz (2016). "Códigos genéticos sin codón de parada dedicado: terminación de la traducción dependiente del contexto" . Cell . 166 ( 3): 691–702 . doi : 10.1016/j.cell.2016.06.020 . PMC 4967479. PMID 27426948 .  
  6. Zinoni, F; Birkmann, A; Stadtman, T; Böck, A (1986). "Secuencia de nucleótidos y expresión del polipéptido que contiene selenocisteína de la formiato deshidrogenasa (formato-hidrogeno-liasa-ligada) de Escherichia coli" . Actas de la Academia Nacional de Ciencias . 83 (13): 4650– 4. Bibcode : 1986PNAS...83.4650Z . doi : 10.1073/pnas.83.13.4650 . PMC 323799. PMID 2941757 .  
  7. Böck, A (2013). "Síntesis de selenoproteínas" . Enciclopedia de química biológica . págs. 210-213 . doi : 10.1016/B978-0-12-378630-2.00025-6 . ISBN  978-0-12-378631-9Consultado el 23 de agosto de 2021 .
  8. Mix, H; Lobanov, A; Gladyshev, V (2007). "Los elementos SECIS en las regiones codificantes de los transcritos de selenoproteínas son funcionales en eucariotas superiores" . Nucleic Acids Research . 35 (2): 414– 423. doi : 10.1093/nar/gkl1060 . PMC 1802603. PMID 17169995 .  
  9. Kryukov, G; Gladyshev, V (2003). "Caracterización de los selenoproteomas de mamíferos" . Science . 300 ( 5624): 1439– 43. Bibcode : 2003Sci...300.1439K . doi : 10.1126/science.1083516 . PMID 12775843. S2CID 10363908 .  
  10. Povolotskaya IS, Kondrashov FA, Ledda A, Vlasov PK (2012). " Los codones de parada en bacterias no son selectivamente equivalentes" . Biology Direct . 7 30. doi : 10.1186/1745-6150-7-30 . PMC 3549826. PMID 22974057 .  
  11. 1 2 Korkmaz, Gürkan; Holm, Mikael; Wiens, Tobias; Sanyal, Suparna (2014). "Análisis exhaustivo del uso de codones de parada en bacterias y su correlación con la abundancia de factores de liberación" . The Journal of Biological Chemistry . 289 (44): 775– 806. doi : 10.1074/jbc.M114.606632 . PMC 4215218. PMID 25217634 .  
  12. " Escherichia coli str. K-12 substr. MG1655, genoma completo [ Número de acceso de GenBank: U00096 ] " . GenBank . NCBI . Consultado el 27-01-2013 .
  13. Wong, Tit-Yee; Fernandes, Sanjit; Sankhon, Naby; Leong, Patrick P; Kuo, Jimmy; Liu, Jong-Kang (2008). " Rol de los codones de parada prematuros en la evolución bacteriana" . Journal of Bacteriology . 190 (20): 6718– 25. doi : 10.1128/JB.00682-08 . PMC 2566208. PMID 18708500 .  
  14. Ito, Koichi; Uno, Makiko; Nakamura, Yoshikazu (1999). "Un 'anticodón' de tripéptido descifra los codones de parada en el ARN mensajero". Nature . 403 ( 6770): 680– 4. doi : 10.1038/35001115 . PMID 10688208. S2CID 4331695 .  
  15. Korkmaz, Gürkan; Sanyal, Suparna (2017). "La mutación R213I en el factor de liberación 2 (RF2) es un paso adelante para la ingeniería de un factor de liberación omnipotente en la bacteria Escherichia coli " . Journal of Biological Chemistry . 292 (36): 15134–42 . doi : 10.1074 / jbc.M117.785238 . PMC 5592688. PMID 28743745 .  
  16. Stahl FW (1995). " Los mutantes ámbar del fago T4" . Genetics . 141 (2): 439– 442. doi : 10.1093/genetics/141.2.439 . PMC 1206745. PMID 8647382 .  
  17. 1 2 3 Lewin, Benjamin; Krebs, Jocelyn E.; Goldstein, Elliott S.; Kilpatrick, Stephen T. (18 de abril de 2011). Genes esenciales de Lewin . Jones & Bartlett. ISBN 978-1-4496-4380-5.
  18. Edgar B (octubre de 2004). " El genoma del bacteriófago T4: una excavación arqueológica" . Genetics . 168 (2): 575–82 . doi : 10.1093/genetics/168.2.575 . PMC 1448817. PMID 15514035 .  
  19. Robin Cook. "Resumen de las mutaciones ámbar, ocre y ópalo" . Mundo de la genética . Gale.
  20. Brenner, S.; Stretton, AOW; Kaplan, S. (1965). "Código genético: los tripletes 'sin sentido' para la terminación de la cadena y su supresión". Nature . 206 ( 4988): 994–8 . Bibcode : 1965Natur.206..994B . doi : 10.1038/206994a0 . PMID 5320272. S2CID 28502898 .  
  21. Brenner, S.; Barnett, L.; Katz, ER; Crick, FHC (1967). "UGA: Un tercer triplete sin sentido en el código genético". Nature . 213 ( 5075): 449– 50. Bibcode : 1967Natur.213..449B . doi : 10.1038/213449a0 . PMID 6032223. S2CID 4211867 .  
  22. Pang S.; Wang W.; et al. (2002). "Una nueva mutación sin codón de parada y una nueva mutación de sentido erróneo en el gen de la 3beta-hidroxiesteroide deshidrogenasa (3beta-HSD) tipo II que causan, respectivamente, hiperplasia suprarrenal congénita por deficiencia de 3beta-HSD no clásica y clásica" . J Clin Endocrinol Metab . 87 (6): 2556–63 . doi : 10.1210/jcem.87.6.8559 . PMID 12050213 .  
  23. Doucette, L.; et al. (2011). "Una nueva mutación sin terminación en FOXE3 causa una forma autosómica dominante de disgenesia variable del segmento anterior que incluye la anomalía de Peters" . European Journal of Human Genetics . 19 (3): 293– 9. doi : 10.1038/ejhg.2010.210 . PMC 3062009. PMID 21150893 .   
  24. Torres-Torronteras, J.; Rodriguez-Palmero, A.; et al. (2011). "Una nueva mutación sin codón de parada en TYMP no induce degradación de ARNm sin codón de parada en un paciente con MNGIE con neuropatía grave" ( PDF) . Hum. Mutat . 32 (4): E2061– E2068. doi : 10.1002/humu.21447 . PMID 21412940. S2CID 24446773 .   
  25. Spaull, R; Steel, D; Barwick, K; Prabhakar, P; Wakeling, E; Kurian, MA (23 de julio de 2022). "Mutación de pérdida de parada en STXBP1 asociada con trastorno del movimiento complejo de inicio temprano sin epilepsia" . Movement Disorders Clinical Practice . 9 (6): 837– 840. doi : 10.1002/mdc3.13509 . PMC 9346254. PMID 35937496 .  
  26. Seligmann, Hervé; Pollock, David D. (2004). "La hipótesis de la emboscada: los codones de parada ocultos impiden la lectura de genes fuera de marco". DNA and Cell Biology . 23 (10): 701– 5. doi : 10.1089/1044549042476910 . PMID 15585128 . 
  27. Cavalcanti, Andre; Chang, Charlotte H.; Morgens, David W. (2013). "Emboscada a la hipótesis de la emboscada: predicción y evaluación de las frecuencias de codones fuera de marco en genomas procariotas" . BMC Genomics . 14 (418): 1– 8. doi : 10.1186/1471-2164-14-418 . PMC 3700767. PMID 23799949 .  
  28. Wong, Tit-Yee; Schwartzbach, Steve (2015). "La terminación errónea de proteínas inicia enfermedades genéticas, cánceres y restringe la expansión del genoma bacteriano". Journal of Environmental Science and Health, Part C . 33 (3): 255– 85. Bibcode : 2015JESHC..33..255W . doi : 10.1080/10590501.2015.1053461 . PMID 26087060 . S2CID 20380447 .  
  29. Namy O, Rousset JP, Napthine S, Brierley I (2004). "Decodificación genética reprogramada en la expresión génica celular" . Molecular Cell . 13 (2): 157– 68. doi : 10.1016/S1097-2765(04)00031-0 . PMID 14759362 . 
  30. Schueren F, Lingner T, George R, Hofhuis J, Gartner J, Thoms S (2014). "La lactato deshidrogenasa peroxisomal se genera mediante lectura traslacional en mamíferos" . eLife . 3 e03640 . doi : 10.7554/eLife.03640 . PMC 4359377. PMID 25247702 .  
  31. Hofhuis J, Schueren F, Nötzel C, Lingner T, Gärtner J, Jahn O, Thoms S (2016). " La extensión funcional de lectura completa de la malato deshidrogenasa revela una modificación del código genético" . Open Biol . 6 (11) 160246. doi : 10.1098/rsob.160246 . PMC 5133446. PMID 27881739 .  
  32. Blanchet S, Cornu D, Argentini M, Namy O (2014). "Nuevas perspectivas sobre la incorporación de ARNt supresores naturales en codones de parada en Saccharomyces cerevisiae " . Nucleic Acids Res . 42 (15): 10061–72 . doi : 10.1093 / nar/gku663 . PMC 4150775. PMID 25056309 .  
  33. Ghosh, Souvik; Guimaraes, Joao C; Lanzafame, Manuela; Schmidt, Alexander; Syed, Afzal Pasha; Dimitriades, Beatrice; Börsch, Anastasiya; Ghosh, Shreemoyee; Mittal, Nitish; Montavon, Thomas; Correia, Ana Luisa; Danner, Johannes; Meister, Gunter; Terracciano, Luigi M; Pfeffer, Sébastien; Piscuoglio, Salvatore; Zavolan, Mihaela (15 de septiembre de 2020). "La prevención de la señalización de interferón inducida por dsRNA por AGO1x está relacionada con la proliferación de células de cáncer de mama" . The EMBO Journal . 39 (18) e103922. doi : 10.15252/embj.2019103922 . PMC 7507497 . PMID 32812257 .  
  34. Venter, Craig (21 de mayo de 2010). "Mírame revelar la 'vida sintética'"" Charla TED .