Articulo de referencia

sacarosa-fosfato sintasa

La sacarosa-fosfato sintasa ( SPS ) es una enzima vegetal involucrada en la biosíntesis de sacarosa . Específicamente, esta enzima cataliza la transferencia de un grupo hexosilo...

La sacarosa-fosfato sintasa ( SPS ) es una enzima vegetal involucrada en la biosíntesis de sacarosa . Específicamente, esta enzima cataliza la transferencia de un grupo hexosilo de la uridina difosfato glucosa ( UDP-glucosa ) a la D - fructosa 6-fosfato para formar UDP y D-sacarosa-6-fosfato. [ 1 ] [ 2 ] Este paso reversible actúa como el punto de control regulatorio clave en la biosíntesis de sacarosa y es un excelente ejemplo de diversas estrategias clave de regulación enzimática, como el control alostérico y la fosforilación reversible . [ 3 ]

Esta enzima participa en el metabolismo del almidón y la sacarosa . [ 2 ]

Nomenclatura

Esta enzima pertenece a la familia de las glucosiltransferasas , específicamente a las hexosiltransferasas . El nombre sistemático de esta clase de enzimas es UDP-glucosa:D-fructosa 6-fosfato 2-alfa-D-glucosiltransferasa. Otros nombres de uso común incluyen UDP-glucosa-fructosa-fosfato glucosiltransferasa, sacarosafosfato-UDP glucosiltransferasa, UDP-glucosa-fructosa-fosfato glucosiltransferasa, SPS, uridina difosfoglucosa-fructosa fosfato glucosiltransferasa, sacarosa 6-fosfato sintasa, sacarosa fosfato sintetasa y sacarosa fosfato-uridina difosfato glucosiltransferasa.

Estructura

RCSB PDB 2R66: La estructura cristalina muestra dos dominios de pliegue de Rossmann en SPS. El dominio A se representa en azul y el dominio B en rojo.

Los estudios de difracción de rayos X han revelado que la estructura de la SPS de Halothermothrix orenii pertenece a la familia de pliegues GT-B. [ 1 ] Al igual que otras proteínas GT-B, la SPS contiene dos dominios de pliegue Rossmann denominados dominio A y dominio B. [ 4 ] En general, la estructura de estos dominios es bastante similar, ya que ambos contienen láminas beta centrales rodeadas de hélices alfa . Sin embargo, el dominio A consta de ocho hebras beta paralelas y siete hélices alfa, mientras que el dominio B contiene seis hebras beta paralelas y nueve hélices alfa. Estos dominios están unidos por bucles de residuos para formar una hendidura de unión al sustrato , donde se une el grupo aceptor de glucosilo. [ 1 ]

Aunque H. orenii es una bacteria no fotosintética , diversos estudios indican que la estructura de su SPS es similar a la de la SPS vegetal. En primer lugar, los anticuerpos con alta especificidad para la SPS vegetal también se dirigen a la SPS bacteriana, lo que indica que la estructura está suficientemente conservada como para que el anticuerpo reconozca la enzima como un antígeno. Además, estudios genómicos revelan que homólogos vegetales estrechamente relacionados presentan hasta un 54 % de identidad de secuencia. [ 1 ]

Mecanismo

Esquema de reacción que muestra la transferencia del grupo hexosilo de la UDP-glucosa a la fructosa 6-fosfato.

En la conformación abierta de la SPS de H. orenii , la fructosa 6-fosfato forma enlaces de hidrógeno con los residuos Gly-33 y Gln-35 en el dominio A, mientras que la UDP-glucosa interactúa con el dominio B. Los estudios de estructuras cristalinas revelan que, tras la unión, los dos dominios giran para estrechar la entrada de la hendidura de unión del sustrato de 20 Å a 6 Å. En esta conformación cerrada, el residuo Gly-34 del dominio A interactúa con la UDP-glucosa y obliga al sustrato a adoptar una estructura plegada, facilitando la donación del grupo hexosilo. [ 4 ]

Tras la unión, la fructosa 6-fosfato interactúa con el UDP mediante un enlace de hidrógeno, lo que reduce la energía de activación de la reacción y estabiliza el estado de transición . Finalmente, el átomo C1 de la UDP-glucosa sufre un ataque nucleofílico por parte de un átomo de oxígeno de la fructosa 6-fosfato, lo que resulta en la transferencia del grupo glucosilo a la fructosa 6-fosfato. Actualmente se desconoce si este mecanismo requiere un ion divalente, pero los intentos fallidos de atrapar y detectar la presencia del catión magnesio sugieren que este mecanismo es independiente de iones metálicos. [ 1 ] [ 4 ]

Estrategias regulatorias

Fosforilación

La SPS- quinasa fosforila reversiblemente un residuo de serina y posteriormente desactiva la SPS. En espinaca y maíz , el sitio de regulación de la fosforilación se ha identificado como Ser158 y Ser162, respectivamente. Si bien actualmente no está claro si este homólogo del residuo de serina en otras SPS de plantas se fosforila para suprimir la actividad de la SPS, se ha observado la conservación de los residuos vecinos en otras especies de plantas. Esta secuencia conservada podría potencialmente ayudar en el reconocimiento de una SPS-quinasa reguladora. Una vez fosforilada, la enzima inactivada puede ser desfosforilada y reactivada por la SPS-fosfatasa. Además de controlar los niveles de sacarosa en la célula, la regulación a través de la fosforilación puede ayudar a la célula a adaptarse a condiciones hiperosmóticas; en tiempos de estrés osmótico , el residuo de serina se fosforila y la actividad enzimática disminuye. [ 3 ] Esta estrategia de regulación también controla el flujo de carbono de la fotosíntesis, ya que los estudios indican que la vía de transducción de señales responsable de la activación de la SPS responde al estímulo de la luz . [ 5 ] [ 6 ] [ 7 ]

Alostería

La glucosa 6-fosfato se une a un sitio alostérico, lo que produce cambios conformacionales en la SPS que aumentan la afinidad de la enzima por el sustrato aceptor de glucosa. El fosfato inorgánico también puede unirse a este sitio alostérico, impidiendo la activación de la SPS por la glucosa 6-fosfato. Al igual que la regulación por fosforilación, esta estrategia de regulación también está estrechamente relacionada con la fotosíntesis, ya que las altas tasas de fotosíntesis agotarán los niveles de fosfato inorgánico y aumentarán las concentraciones de glucosa 6-fosfato en el cloroplasto . [ 8 ] En general, el aumento de las tasas de fotosíntesis aumentará la actividad de la SPS.

Función

La SPS desempeña un papel fundamental en la distribución del carbono entre la sacarosa y el almidón en los tejidos fotosintéticos y no fotosintéticos , afectando el crecimiento y desarrollo de la planta. [ 2 ] [ 8 ] [ 9 ] En los frutos en maduración, la SPS es responsable de convertir el almidón en sacarosa y otros azúcares solubles. [ 10 ] [ 11 ] [ 12 ] Además, la SPS también está activa en las células que degradan principalmente la sacarosa, participando en ciclos fútiles que permiten grandes y rápidos cambios en el flujo de sacarosa . [ 3 ]

A bajas temperaturas, aumentan la actividad de la SPS y las tasas de biosíntesis de sacarosa. La acumulación de sacarosa es ventajosa a bajas temperaturas, ya que la sacarosa es una forma de almacenamiento de energía que puede metabolizarse rápidamente para fines respiratorios. Además, mayores cantidades de sacarosa pueden ayudar a la planta a resistir la congelación. [ 13 ]

Referencias

  1. 1 2 3 4 5 Chua TK, Bujnicki JM, Tan TC, Huynh F, Patel BK, Sivaraman J (abril de 2008). " La estructura de la sacarosa fosfato sintasa de Halothermothrix orenii revela su mecanismo de acción y modo de unión" . The Plant Cell . 20 (4): 1059– 72. Bibcode : 2008PlanC..20.1059C . doi : 10.1105/tpc.107.051193 . PMC 2390747. PMID 18424616 .  
  2. 1 2 3 Levine M (2011). Temas de bioquímica dental . Springer. págs. 17-27 . ISBN  978-3-540-88115-5.
  3. 1 2 3 Huber SC, Huber JL (junio de 1996). "Función y regulación de la sacarosa-fosfato sintasa en plantas superiores". Annual Review of Plant Physiology and Plant Molecular Biology . 47 : 431–444 . CiteSeerX 10.1.1.473.6911 . doi : 10.1146/annurev.arplant.47.1.431 . PMID 15012296 .  
  4. 1 2 3 Breton C, Snajdrová L, Jeanneau C, Koca J, Imberty A (febrero de 2006). "Estructuras y mecanismos de las glicosiltransferasas" . Glycobiology . 16 (2): 29R– 37R. doi : 10.1093/glycob/cwj016 . PMID 16037492 . 
  5. Huber SC, Huber JL (agosto de 1992). "Función de la sacarosa-fosfato sintasa en el metabolismo de la sacarosa en las hojas" . Plant Physiology . 99 (4): 1275–8 . doi : 10.1104/pp.99.4.1275 . PMC 1080620. PMID 16669032 .  
  6. McMichael RW, Bachmann M, Huber SC (julio de 1995). "La sacarosa-fosfato sintasa y la nitrato reductasa de la hoja de espinaca son fosforiladas/inactivadas por múltiples quinasas de proteínas in vitro" . Plant Physiology . 108 (3): 1077– 1082. doi : 10.1104/pp.108.3.1077 . PMC 157459. PMID 12228528 .  
  7. Galtier N, Foyer CH, Huber J, Voelker TA, Huber SC (febrero de 1993). "Efectos de la actividad elevada de la sacarosa-fosfato sintasa en la fotosíntesis, la partición de asimilados y el crecimiento en tomate (Lycopersicon esculentum var UC82B)" . Plant Physiology . 101 (2): 535– 543. doi : 10.1104/pp.101.2.535 . PMC 160601. PMID 12231708 .  
  8. 1 2 Doehlert DC, Huber SC (diciembre de 1983). "Regulación de la sacarosa fosfato sintasa de la hoja de espinaca por glucosa-6-fosfato, fosfato inorgánico y pH" . Plant Physiology . 73 (4): 989–94 . doi : 10.1104/pp.73.4.989 . PMC 1066594. PMID 16663357 .  
  9. Huber SC (abril de 1983). "Función de la sacarosa-fosfato sintasa en la distribución del carbono en las hojas" . Plant Physiology . 71 (4): 818–21 . doi : 10.1104/pp.71.4.818 . PMC 1066128. PMID 16662913 .  
  10. Hubbard NL, Pharr DM, Huber SC (1991). "Sintasa de fosfato de sacarosa y otras enzimas metabolizadoras de sacarosa en frutos de diversas especies". Physiologia Plantarum . 82 (2): 191– 196. Bibcode : 1991PPlan..82..191H . doi : 10.1111/j.1399-3054.1991.tb00080.x .
  11. Hubbard NL, Huber SC, Pharr DM (diciembre de 1989). "Sintasa de fosfato de sacarosa e invertasa ácida como determinantes de la concentración de sacarosa en frutos de melón (Cucumis melo L.) en desarrollo" . Plant Physiology . 91 (4): 1527–34 . doi : 10.1104/pp.91.4.1527 . PMC 1062217. PMID 16667212 .  
  12. Miron D, Schaffer AA (febrero de 1991). "Actividades de sacarosa fosfato sintasa, sacarosa sintasa e invertasa en frutos en desarrollo de Lycopersicon esculentum Mill. y Lycopersicon hirsutum Humb. y Bonpl . , acumuladores de sacarosa". Plant Physiology . 95 (2): 623–7 . doi : 10.1104/pp.95.2.623 . PMC 1077577. PMID 16668028 .  
  13. Guy CL, Huber JL, Huber SC (septiembre de 1992). " Sintasa de fosfato de sacarosa y acumulación de sacarosa a baja temperatura" . Plant Physiology . 100 (1): 502–8 . doi : 10.1104/pp.100.1.502 . JSTOR 4274654. PMC 1075578. PMID 16652990 .   
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