Articulo de referencia

Análisis combinado de restricción con bisulfito

Los primeros pasos de COBRA y los cambios moleculares que cada paso provoca en los sitios CpG metilados y no metilados. El análisis combinado de restricción con bisulfito (o COB...

La conversión con bisulfito transforma selectivamente la citosina no metilada en uracilo, sin afectar a la citosina metilada. Posteriormente, la PCR amplifica las secuencias, tras lo cual la digestión con enzimas de restricción de las islas CpG fragmenta las secuencias originalmente metiladas, mientras que estas últimas permanecen inalteradas.
Los primeros pasos de COBRA y los cambios moleculares que cada paso provoca en los sitios CpG metilados y no metilados.

El análisis combinado de restricción con bisulfito (o COBRA ) es una técnica de biología molecular que permite la cuantificación sensible de los niveles de metilación del ADN en un locus genómico específico de una secuencia de ADN en una pequeña muestra de ADN genómico. [ 1 ] La técnica es una variación de la secuenciación con bisulfito y combina la reacción en cadena de la polimerasa basada en la conversión con bisulfito con la digestión con enzimas de restricción . Desarrollada originalmente para manejar de forma fiable cantidades minúsculas de ADN genómico de muestras de tejido microdiseccionado e incluido en parafina , la técnica se ha utilizado ampliamente en la investigación del cáncer y en estudios epigenéticos . [ 2 ]

Procedimiento

Tratamiento con bisulfito

El ADN genómico de interés se trata con bisulfito de sodio , lo que introduce diferencias de secuencia dependientes de la metilación. Durante el tratamiento con bisulfito de sodio, los residuos de citosina no metilados se convierten en uracilo , mientras que los residuos de citosina metilados no se ven afectados.

Cuando se trata con bisulfito de sodio, la citosina se convierte en uracilo, mientras que la citosina metilada no se ve afectada.
La conversión con bisulfito transforma la citosina no metilada en uracilo , mientras que la 5-metilcitosina no se ve afectada por el tratamiento.

Amplificación por PCR

La etapa de cuantificación del análisis combinado de restricción con bisulfito se lleva a cabo después de la digestión con enzimas de restricción. Los fragmentos de PCR digeridos se separan y visualizan mediante electroforesis en gel, y el nivel de metilación del ADN de entrada se puede determinar cuantificando la cantidad de ADN en las bandas digeridas y no digeridas.
El paso final de cuantificación de COBRA consiste en determinar los niveles de metilación del ADN de la muestra de entrada original comparando y cuantificando el número de fragmentos digeridos y no digeridos.

El ADN tratado con bisulfito se amplifica mediante PCR, obteniéndose residuos de citosina en posiciones originalmente metiladas y residuos de timina en posiciones originalmente no metiladas (que se convirtieron en uracilo). Los cebadores utilizados en este paso no contienen sitios CpG (el objetivo común de la metilación de la citosina), por lo que el proceso de amplificación no discrimina entre las plantillas según su estado de metilación. Los productos de PCR se purifican para asegurar una digestión completa en el siguiente paso.

Restricción Digest

Los pasos anteriores dan lugar a la retención o pérdida, dependiente de la metilación, de sitios de restricción que contienen CpG , como los de TaqI (TCGA) y BstUI (CGCG), según si el residuo de citosina estaba metilado originalmente o no, respectivamente. Debido a la amplificación independiente de la metilación en el paso anterior, los productos de PCR resultantes serán una población mixta de fragmentos que han perdido o conservado sitios de restricción que contienen CpG, cuyos porcentajes respectivos estarán directamente correlacionados con el nivel original de metilación del ADN en la muestra.

Los productos de PCR se tratan con una enzima de restricción ( por ejemplo, BstUI), que solo corta los sitios que originalmente estaban metilados (CGCG), dejando intactos los que no lo estaban (TGTG). Para asegurar que todos los sitios CpG se conserven debido a su metilación original, y no como remanente de una conversión incompleta con bisulfito, se realiza una digestión de control con enzimas como Hsp92II , que reconoce la secuencia CATG. Ninguna de estas secuencias debería quedar después de la conversión con bisulfito (con la rara excepción de la metilación no CpG), por lo que no debería producirse ningún corte si la conversión con bisulfito fue completa.

Cuantificación

Los fragmentos digeridos se separan mediante electroforesis en gel de poliacrilamida, observándose la aparición de bandas correspondientes a un único fragmento grande no digerido y múltiples bandas más pequeñas correspondientes a fragmentos digeridos. La cantidad cuantitativa de ADN en estas bandas se puede determinar con un dispositivo como un fosfoimager , tras lo cual se puede calcular el porcentaje de metilación de la muestra original mediante:

%Metilación=100×Fragmentos digeridosFragmentos no digeridos + Fragmentos digeridos{\displaystyle \%\;{\text{Metilación}}=100\times {\frac {\text{Fragmentos digeridos}}{\text{Fragmentos no digeridos + Fragmentos digeridos}}}}

Uso y aplicaciones

COBRA se ha utilizado ampliamente en numerosas aplicaciones de investigación, como la detección de cambios en la metilación del ADN en promotores genéticos en estudios de cáncer, [ 3 ] [ 4 ] la detección de patrones de metilación alterados en genes improntados , [ 5 ] y la caracterización de patrones de metilación en el genoma durante el desarrollo en mamíferos. [ 6 ] [ 7 ]

En medicina, COBRA se ha utilizado como herramienta para ayudar a diagnosticar enfermedades humanas que implican metilación aberrante del ADN. Los investigadores utilizaron COBRA junto con cromatografía líquida de alto rendimiento desnaturalizante en el diagnóstico del síndrome de Russell-Silver, un trastorno de impronta genética en el que la hipometilación del gen H19, sujeto a impronta , es responsable del trastorno en hasta el 50 % de los pacientes. [ 8 ]

Fortalezas

  • Sencillo, rápido y económico : En COBRA, los niveles de metilación del ADN se miden de forma fácil y rápida sin necesidad de subclonación ni secuenciación laboriosas , como ocurre con la secuenciación con bisulfito. El ensayo es sencillo y se puede realizar con reactivos de biología molecular estándar y económicos.
  • Alta compatibilidad : Gracias a los pasos de PCR y purificación, el método no solo funciona con cantidades muy pequeñas de ADN genómico, sino también con muestras que han sido tratadas con parafina, dos aspectos que pueden resultar problemáticos en otros protocolos de cuantificación de la metilación del ADN, como la transferencia Southern y la digestión con enzimas de restricción sensibles a la metilación seguida de PCR.
  • Cuantitativo : Esto contrasta con la PCR específica de metilación , que es cualitativa. Con COBRA, los niveles de metilación del ADN se pueden cuantificar directamente en un locus determinado, lo que proporciona más información por ensayo.
  • Escalabilidad para el procesamiento de muestras de alto rendimiento : Con COBRA, se pueden procesar en paralelo numerosas regiones de interés en muestras separadas digeridas con la misma enzima de restricción. Esto contrasta con el análisis de secuenciación con bisulfito, donde cada región debe examinarse minuciosamente mediante la secuenciación de muchos clones por locus, lo que requiere más tiempo.
  • Múltiples consultas por ensayo : El estado de metilación se puede analizar en múltiples sitios de restricción que contienen CpG en un solo ensayo de digestión.

Debilidades

  • El ensayo se limita al uso de sitios de restricción existentes en la región de interés, y la metilación que no se produzca en el contexto de un sitio de restricción específico no se analizará.
  • La digestión incompleta por enzimas de restricción después de la PCR puede confundir el análisis: una digestión incompleta sugeriría falta de metilación del ADN (si se corta con una enzima sensible a la metilación como HpaII). También se sabe que BstUI puede cortar en sitios no convertidos, lo que lleva a una sobreestimación de los niveles de metilación y, por lo tanto, a menudo es necesario el uso de HpaII. [ 9 ]
  • En muestras complejas, la heterogeneidad celular puede dificultar el análisis, ya que el ADN no se secuencia. La heterogeneidad en las secuencias de diferentes células de la muestra ( es decir, distintas poblaciones celulares dentro de un tumor) que han adquirido mutaciones en la región analizada, como el cambio del dinucleótido CG a CA o CT, provocaría la pérdida del sitio de restricción, dando lugar a una región aparentemente metilada debido a la falta de digestión. Esto distorsionaría la cuantificación de los niveles de metilación del ADN en una muestra determinada.

Alternativas

En general, COBRA se suele combinar con otros análisis de metilación del ADN y se utiliza con frecuencia en la evaluación inicial de un locus de interés. Si COBRA sugiere patrones de metilación alterados, se pueden aplicar técnicas más rigurosas y laboriosas, como la secuenciación con bisulfito o MeDIP . La secuenciación PacBio también puede utilizarse para detectar la metilación del ADN.

Referencias

  1. Xiong, Zhenggang; Laird, Peter W. (1997). "COBRA: un ensayo de metilación de ADN sensible y cuantitativo" . Nucleic Acids Research . 25 (12): 2532– 2534. doi : 10.1093/nar/25.12.2532 . PMC 146738. PMID 9171110 .  
  2. Laird, Peter W. (2003). "El poder y la promesa de los marcadores de metilación del ADN". Nature Reviews Cancer . 3 (abril): 253–266 . doi : 10.1038/nrc1045 . PMID 12671664. S2CID 19574628 .  Este artículo tenía 576 referencias entre el 2 y el 11 de febrero, según Scopus.
  3. Shen, Lanlan; et al. (2005). "Metilación del promotor MGMT y defecto de campo en el cáncer colorrectal esporádico". Journal of the National Cancer Institute . 97 (18): 1330– 1338. CiteSeerX 10.1.1.536.6096 . doi : 10.1093/jnci/dji275 . PMID 16174854 .   
  4. Suter, Catherine, M.; et al. (2004). "Epimutación de la línea germinal en MLH1 en individuos con múltiples cánceres" . Nature Genetics . 36 (5): 497– 501. doi : 10.1038/ng1342 . PMID 15064764 .  {{cite journal}}: CS1 maint: varios nombres: lista de autores ( enlace )
  5. Bliek, Jet; et al. (2009). "Hipometilación en múltiples regiones improntadas metiladas maternamente, incluidos los loci PLAGL1 y GNAS en el síndrome de Beckwith-Wiedemann, y caracterización de los patrones de metilación del ADN en el genoma durante el desarrollo en mamíferos" ( PDF) . European Journal of Human Genetics . 17 (5): 611– 618. doi : 10.1038/ejhg.2008.233 . PMC 2986258. PMID 19092779 .   
  6. Wernig, Marius; et al. (2007). "Reprogramación in vitro de fibroblastos a un estado pluripotente similar al de las células madre embrionarias". Nature . 448 ( 7151): 318– 324. Bibcode : 2007Natur.448..318W . doi : 10.1038/nature05944 . PMID 17554336. S2CID 4377572 .   
  7. Mikkelsen, Tarjei S.; et al. (2008). "Disecando la reprogramación directa a través del análisis genómico integrador" . Nature . 454 ( julio): 49–56 . Bibcode : 2008Natur.454...49M . doi : 10.1038/nature07056 . PMC 2754827. PMID 18509334 .   
  8. Hattori, M.; et al. (2009). "Diagnóstico del síndrome de Russell-Silver mediante el ensayo combinado de análisis de restricción con bisulfito y cromatografía líquida de alto rendimiento desnaturalizante". Genetic Testing and Molecular Biomarkers . 13 (5): 623– 630. doi : 10.1089/gtmb.2009.0018 . PMID 19814617 .  
  9. Fraga, Mario F.; Esteller, Manel (2002). "Metilación del ADN: un perfil de métodos y aplicaciones" . BioTechniques . 33 (3): 633– 649. doi : 10.2144/02333rv01 . PMID 12238773 .