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Cochinilla harinosa

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Las cochinillas harinosas son insectos de la familia Pseudococcidae , cochinillas sin armadura que habitan en ambientes cálidos y húmedos. De las más de 2000 especies descritas, muchas se consideran plagas , ya que se alimentan de la savia de plantas de invernadero , plantas de interior y árboles subtropicales, y también actúan como vectores de diversas enfermedades vegetales. Algunas hormigas viven en simbiosis con ellas, protegiéndolas de los depredadores y alimentándose de la melaza que excretan.

Descripción

Un vídeo de una cochinilla algodonosa

Las cochinillas presentan dimorfismo sexual : las hembras se presentan como ninfas, con una morfología reducida y sin alas, aunque, a diferencia de muchas cochinillas hembras, suelen conservar las patas y pueden moverse. Los machos son más pequeños, parecidos a mosquitos y tienen alas. Dado que las cochinillas, al igual que todos los demás hemípteros , son insectos hemimetábolos , no experimentan una metamorfosis completa en el sentido estricto de la palabra. Sin embargo, los machos de cochinilla experimentan un cambio radical durante su ciclo de vida, pasando de ninfas ovoides sin alas a adultos voladores parecidos a avispas .

Las hembras de la cochinilla algodonosa se alimentan de la savia de las plantas, normalmente en las raíces u otras grietas, y en algunos casos en la parte inferior de la fruta almacenada. Se adhieren a la planta y secretan una capa cerosa pulverulenta (de ahí el nombre de "cochinilla algodonosa") que utilizan para protegerse mientras succionan los jugos de la planta. Los machos tienen una vida corta, ya que no se alimentan en absoluto en su etapa adulta y solo viven para fertilizar a las hembras. Los machos de la cochinilla algodonosa de los cítricos vuelan hacia las hembras y se parecen a mosquitos esponjosos .

Algunas especies de cochinilla algodonosa depositan sus huevos en la misma capa cerosa que utilizan para protegerse, en cantidades de 50 a 100; otras especies nacen directamente de la hembra.

Las plagas más graves son las cochinillas harinosas que se alimentan de cítricos . Otras especies dañan la caña de azúcar , las uvas , la piña (Jahn et al. 2003), los cafetos , la yuca , los helechos , los cactus , las gardenias , la papaya , el plátano , la morera , el girasol y las orquídeas . Las cochinillas harinosas solo tienden a ser plagas graves en presencia de hormigas porque estas las protegen de depredadores y parásitos. [ 2 ] Las cochinillas harinosas también son vectores de virus en las vides, propagando los virus del enrollamiento de la hoja de la vid y de la mancha roja de la vid. [ 3 ]

Las cochinillas harinosas también infestan algunas especies de plantas carnívoras como Sarracenia (plantas jarra). En estos casos, es difícil erradicarlas sin aplicaciones repetidas de insecticidas como el diazinón . Las infestaciones pequeñas pueden no causar daños significativos. Sin embargo, en grandes cantidades, pueden provocar la caída de las hojas. En los últimos años, algunas especies de cochinillas harinosas se han convertido en plagas invasoras en ciertas localidades, lo que supone un grave problema para los nuevos agroecosistemas . En la India , se ha informado que la planta Withania somnifera es un nuevo huésped reservorio para la especie invasora de cochinilla harinosa Phenacoccus solenopsis . [ 4 ]

Algunas cochinillas del género Hypogeococcus se utilizan como controles biológicos de plagas de cactus invasores en Sudáfrica , incluyendo Harrisia balansae , H. martinii y Opuntia cespitosa . [ 5 ]

Se han recuperado especímenes fósiles de hormigas del género Acropyga de depósitos de ámbar dominicano del estadio Burdigaliense , y varios individuos se conservan portando el género extinto de cochinillas Electromyrmococcus . [ 6 ] Estos fósiles representan el registro más antiguo de la simbiosis entre cochinillas y hormigas del género Acropyga . [ 6 ]

Métodos de control

Se han utilizado insecticidas como los piretroides ( por ejemplo , permetrina , bifentrina , ciflutrina ) para el control, [ 7 ] pero este enfoque a menudo se considera contraproducente debido a la mortalidad de los enemigos naturales de la cochinilla algodonosa .

Algunos jardineros utilizan especies de escarabajos depredadores ( por ejemplo, Cryptolaemus ) y larvas de crisopas verdes ( Chrysopidae ) para controlar las infestaciones de cochinillas harinosas, ya que las larvas de crisopas son depredadoras voraces de pulgones y otros insectos pequeños. [ 8 ]

Metabolismo

Las cochinillas tienen un metabolismo muy sofisticado que involucra no uno, sino dos endosimbiontes bacterianos , uno dentro del otro. Los endosimbiontes producen aminoácidos esenciales que la cochinilla no puede obtener directamente de su dieta. Genéticamente, las cochinillas dependen de un "mosaico" de vías metabólicas en las que las proteínas se transportan a través de las membranas entre organismos que alguna vez fueron independientes. [ 9 ]

Uso en la industria textil

En Oaxaca, México, donde la cochinilla algodonosa se conoce como cochinilla algodonosa, estos insectos se cultivan y crían intencionalmente. Las cochinillas secas se muelen hasta convertirlas en polvo, del cual se obtiene un tinte rojo que se utiliza para teñir telas, en pinturas artísticas y en cosméticos.

Cabe señalar que, si bien a las cochinillas se las suele llamar pulgones harinosos y comparten una apariencia física y un tamaño muy similares, los pulgones harinosos (Pseudococcidae) pertenecen a una familia diferente a la de las cochinillas (Dactylopiidae), de la cual existen varias especies.

Genera

Los siguientes están incluidos en BioLib.cz : [ 10 ]

  1. Acaciacoccus Williams y Matile-Ferrero, 1994
  2. Acinicoccus Williams, 1985
  3. Acrocordonus Cox, 1987
  4. Adelosoma Borchsenius, 1948
  5. Aemulantonina Williams, 2004
  6. Agastecoco Cox, 1987
  7. Albertinia de Lotto, 1971
  8. Allococcus Ezzat y McConnell, 1956
  9. Allomyrmococcus Takahashi, 1941
  10. Allotrionymus Takahashi, 1958
  11. Amonostherium Morrison & Morrison, 1922
  12. Anaparaputo Borchsenius, 1962
  13. Anisococcus Ferris, 1950
  14. Annulococcus James, 1936
  15. Anthelococcus McKenzie, 1964
  16. Antonina Signoret, 1875
  17. Antoninella Kiritchenko, 1938
  18. Antoninoides Ferris, 1953
  19. Apodastococcus Williams, 1985
  20. Archaeomyrmococcus Williams, 2002
  21. Artemicoccus Balachowsky, 1953
  22. Asaphococcus Cox, 1987
  23. Asphodelococcus Morrison, 1945
  24. Asteliacoccus Williams, 1985
  25. Atriplicicoccus Williams y Granara de Willink, 1992
  26. Atrococcus Goux, 1941
  27. Australicoccus Williams, 1985
  28. Australiputo Williams, 1985
  29. Balachowskya Gómez-Menor, 1956
  30. Balanococcus Williams, 1962
  31. Benedictycoccina Kozár y Foldi, 2004
  32. Bessenayla Goux, 1988
  33. Birendracoccus Ali, 1975
  34. Bolbococcus Williams, 2002
  35. Boninococcus Kawai, 1973
  36. Boreococcus Danzig, 1960
  37. Borneococcus Williams, 2002
  38. Bouhelia Balachowsky, 1938
  39. Brevennia Goux, 1940
  40. Brevicoccus Hambleton, 1946
  41. Calicoccus Balachowsky, 1959
  42. Callitricoccus Williams, 1985
  43. Calyptococcus Borchsenius, 1948
  44. Cannococcus Borchsenius, 1960
  45. Casuarinaloma Froggatt, 1933
  46. Cataenococcus Ferris, 1955
  47. Caulococcus Borchsenius, 1960
  48. Chaetococcus Maskell, 1898
  49. Chaetotrionymus Williams, 1985
  50. Chloeoon Anderson, 1788
  51. Chlorizococcus McKenzie, 1960 [ 11 ]
  52. Chlorococcus Beardsley, 1971
  53. Criseococcus Cox, 1987
  54. Cintococcus Goux, 1940
  55. Circaputo McKenzie, 1962
  56. Clavicoccus Ferris, 1948
  57. Coccidella Hambleton, 1946
  58. Coccidohystrix Lindinger, 1943
  59. Coccura Šulc, 1908
  60. Coleococcus Borchsenius, 1962
  61. Conicoccus Goux, 1994
  62. Conicosoma de Lotto, 1971
  63. Conulicoccus Williams, 1985
  64. Coorongia Williams, 1985
  65. Cormiococcus Williams, 1989
  66. Crenicoccus Williams, 2004
  67. Criniticoccus Williams, 1960
  68. Crisicoccus Ferris, 1950
  69. Crocydococcus Cox, 1987
  70. Cryptoripersia Cockerell, 1899
  71. Cucullococcus Ferris, 1941
  72. Cyperia De Lotto, 1964
  73. Cypericoccus Williams, 1985
  74. Cyphonococcus Cox, 1987
  75. Dawa Williams, 1985
  76. Delococcus Ferris, 1955
  77. Delottococcus Cox y Ben-Dov, 1986
  78. Dicranococcus Williams, 2002
  79. Discococcus Ferris, 1953
  80. Distichlicoccus Ferris, 1950
  81. Diversicrus de Lotto, 1971
  82. Doryphorococcus Williams, 2002
  83. Drymococcus Borchsenius, 1962
  84. Dysmicoccus Ferris, 1950
  85. Eastia De Lotto, 1964
  86. Ehrhornia Ferris, 1918
  87. Epicoccus Cockerell, 1902
  88. Eriocorys de Lotto, 1967
  89. Erioides Green, 1922
  90. Erium Cockerell, 1897
  91. Eucalyptococcus Williams, 1985
  92. Eumirococcus Ter-Grigorian, 1964
  93. Eumyrmococcus Silvestri, 1926
  94. Eupeliococcus Sãvescu, 1985
  95. Euripersia Borchsenius, 1948
  96. Eurycoccus Ferris, 1950
  97. Exallomochlus Williams, 2004
  98. Exilipedronia Williams, 1960
  99. Extanticoccus Williams, 2004
  100. Farinococcus Morrison, 1922
  101. Ferrisia Fullaway, 1923
  102. Ferrisicoccus Ezzat y McConnell, 1956
  103. Fijicoccus Williams & Watson, 1988
  104. Fonscolombia Lichtenstein, 1877
  105. Formicococcus Takahashi, 1928
  106. Gallulacoccus Beardsley, 1971
  107. Geococcus Green, 1902
  108. Glycycnyza Danzig, 1974
  109. Gouxia Koçak y Kemal, 2009 [ a ]
  110. Gómezmenoricoccus Kozar y Walter, 1985
  111. Greenoripersia Bodenheimer, 1929
  112. Cerebro de Grewiacoccus , 1918
  113. Cerebro de Grewiacococcus , 1918
  114. Hadrococcus Williams, 1985
  115. Hambletonrhizoecus Kozár y Konczné Benedicty, 2005
  116. Heliococcus Šulc, 1912
  117. Hemisphaerococcus Borchsenius, 1934
  118. Heterococcopsis Borchsenius, 1948
  119. Heterococcus Ferris, 1918
  120. Hippeococcus Reyne, 1954
  121. Hopefoldia Foldi, 1988
  122. Hordeolicoccus Williams, 2004
  123. Humoccoccus Ferris, 1953
  124. Humococcus Ferris, 1953
  125. Hypogeococcus Rau, 1938 [ 5 ]
  126. Iberococcus Gómez-Menor Ortega, 1928
  127. Idiococcus Takahashi y Kanda, 1939
  128. Inopicoccus Danzig, 1971
  129. Ityococcus Williams, 1985
  130. Kaicoccus Takahashi, 1958
  131. Kenmorea Williams, 1985
  132. Kermicus Newstead, 1897
  133. Kiritshenkella Borchsenius, 1948
  134. Lachnodiella Hempel, 1910
  135. Lachnodiopsis Borchsenius, 1960
  136. Lacombia Goux, 1940
  137. Laingiococcus Morrison, 1945
  138. Laminicoccus Williams, 1960
  139. Lanceacoccus Williams, 2004
  140. Lantanacoccus Williams y Granara de Willink, 1992
  141. Lenania De Lotto, 1964
  142. Leococcus Kanda, 1959
  143. Leptococcus Reyne, 1961
  144. Leptorhizoecus Williams, 1998
  145. Liucoccus Borchsenius, 1960
  146. Lomatococcus Borchsenius, 1960
  147. Londiania De Lotto, 1964
  148. Longicoccus Danzig, 1975
  149. Maconellicoccus Ezzat, 1958
  150. Macrocepicoccus Morrison, 1919
  151. Macrocerococcus Leonardi, 1907
  152. Maculicoccus Williams, 1960
  153. Madacanthococcus Mamet, 1959
  154. Madagascar Mamet, 1962
  155. Madangiacoccus Williams, 1985
  156. Madeurycoccus Mamet, 1959
  157. Malaicoccus Takahashi, 1950
  158. Malekoccus Matile-Ferrero, 1988
  159. Mammicoccus Balachowsky, 1959
  160. Marendellea de Lotto, 1967
  161. Mascarenococcus Mamet, 1940
  162. Maskellococcus Cox, 1987
  163. Mediococcus Kiritschenko, 1936
  164. Melanococcus Williams, 1985
  165. Metadenopsis Matesova, 1966
  166. Metadenopus Sulc, 1933
  167. Miconicoccus Williams y Miller, 1999
  168. Mirococcopsis Borchsenius, 1948
  169. Mirococcus Borchsenius, 1947
  170. Miscanthicoccus Takahashi, 1958
  171. Misericoccus Ferris, 1953
  172. Mollicoccus Williams, 1960
  173. Mombasinia De Lotto, 1964
  174. Moystonia Williams, 1985
  175. Mutabilicoccus Williams, 1960
  176. Naiacoccus Green, 1919
  177. Nairobia De Lotto, 1964
  178. Natalensia Brain, 1915
  179. Neochavesia Williams y de Willink, 1992
  180. Neoclavicoccus Cohic, 1959
  181. Neorhizoecus Hambleton, 1916
  182. Neoripersia Kanda, 1943
  183. Neosimmondsia Laing, 1930
  184. Neotrionimo Borchsenius, 1948
  185. Nesococcus Ehrhorn, 1916
  186. Nesopedronia Beardsley, 1971
  187. Nesticoccus Tang, 1977
  188. Nipaecoccus Šulc, 1945
  189. Octococcus Hall, 1939
  190. Odacoccus Williams & Watson, 1988
  191. Ohiacoccus Beardsley, 1971
  192. Oraella Ferris, 1950
  193. Orstomicoccus Mamet, 1962
  194. Oudablis Signoret, 1882
  195. Oxyacanthus Chevallier, 1836
  196. Palaucoccus Beardsley, 1966
  197. Palmicultor Williams, 1963
  198. Paludicoccus Ferris, 1918
  199. Pandanicola Beardsley, 1966
  200. Papuacoccus Williams & Watson, 1988
  201. Paracoccus Ezzat y McConnell, 1956
  202. Paradiscococcus Williams, 1985
  203. Paradoxococcus McKenzie, 1962
  204. Paraferrisia Williams y de Boer, 1973
  205. Paramococcus Foldi y Cox, 1989
  206. Paramonostherium Williams, 1985
  207. Paramirmococo Takahashi, 1941
  208. Parapaludicoccus Mamet, 1962
  209. Parapedronia Balachowsky, 1953
  210. Paraputo Laing, 1929
  211. Pararhodania Ter-Grigorian, 1964
  212. Paratrionymus Borchsenius, 1948
  213. Pedrococcus Mamet, 1942
  214. Pedronia Green, 1922
  215. Peliococcopsis Borchesenius, 1948
  216. Peliococcus Borchsenius, 1948
  217. Pellizzaricoccus Kozar, 1991
  218. Penthococcus Danzig, 1972
  219. Peridiococcus Williams, 1985
  220. Perystrix Gavrilov, 2004
  221. Phenacoccopsis Borchsenius, 1948
  222. Phenacoccus Cockerell, 1893
  223. Pilococcus Takahashi, 1928
  224. Planococcoides Ezzat & McConnell, 1956
  225. Planococcus Ferris, 1950
  226. Pleistocerarius Matile-Ferrero, 1970
  227. Plotococcus Miller y Denno, 1977
  228. Poecilococcus Brookes, 1981
  229. Polystomophora Borchsenius, 1948
  230. Porococcus Cockerell, 1898
  231. Promyrmococcus Williams, 2002
  232. Prorhizoecus Miller y McKenzie, 1971
  233. Prorsococcus Williams, 1985
  234. Pseudantonina Green, 1922
  235. Pseudococo Westwood, 1840
  236. Pseudorhizoecus Green, 1933
  237. Pseudorrodania Borchsenius, 1962
  238. Pseudoripersia Cockerell, 1899
  239. Pseudotrionymus Beardsley, 1971
  240. Pygmaeococcus McKenzie, 1960
  241. Quadrigallicoccus Williams & Miller, 1999
  242. Radicoccus Hambleton, 1946
  243. Rastrococcus Ferris, 1954
  244. Renicaula Cox, 1987
  245. Rhizoecus Künckel d'Herculais, 1878
  246. Rhodania Goux, 1935
  247. Ripersia Signoret, 1875
  248. Ritsemia Lichtenstein, 1879
  249. Saccharicoccus Ferris, 1950
  250. Saliococcus Kanda, 1934
  251. Sarococo Williams y de Boer, 1973
  252. Scaptococcus McKenzie, 1964
  253. Seabrina Neves, 1943
  254. Serrolecanium Shinji, 1935
  255. Seyneria Goux, 1990
  256. Sinococo Wu y Zheng, 2001
  257. Spartinacoccus Kosztarab, 1996
  258. Sphaerococcus Maskell, 1892
  259. Spilococcus Ferris, 1950
  260. Stachycoccus Borchsenius, 1962
  261. Stemmatomerinx Ferris, 1950
  262. Stipacoccus Tang, 1992
  263. Strandanna De Lotto, 1969
  264. Strombococcus Williams, 1985
  265. Synacanthococcus Morrison, 1920
  266. Syrmococcus Ferris, 1953
  267. Takahashicoccus Kanda, 1959
  268. Tasmanicoccus Williams, 1985
  269. Thaimyrmococcus Williams, 2002
  270. Tomentocera Beardsley, 1964
  271. Trabutina Marchal, 1904
  272. Trabutinella Borchsenius, 1948
  273. Trechocorys Curtis, 1843
  274. Tridiscus Ferris, 1950
  275. Trimerococcus Balachowsky, 1952
  276. Trionymus Berg, 1899
  277. Trochiscococcus Williams y Pellizzari, 1997
  278. Tylococcus Newstead, 1897
  279. Timpanococcus Williams, 1967
  280. Ventrispina Williams, 1985
  281. Villosicoccus Williams, 1985
  282. Volvicoccus Goux, 1945
  283. Vryburgia De Lotto, 1967
  284. Xenococcus Silvestri, 1924
  285. Yudnapinna Williams, 1985

Géneros extintos:

Nota :

  1. sinónimo de Giraudia : monotípico Gouxia danielaferreroae (Goux, 1989) .

Referencias

  1. "Pseudococcidae Heymons, 1915" . Sistema Integrado de Información Taxonómica .
  2. Noe, Ronald (21 de noviembre de 2012). "Las hormigas rojas protegen a las cochinillas harinosas contra sus enemigos naturales utilizando los refugios de hojas construidos por el enrollador de hojas Sylepta derogata " . PLOS ONE . 7 (11) e49982. Biblioteca Nacional de Medicina de EE. UU. Institutos Nacionales de Salud. Bibcode : 2012PLoSO...749982Z . doi : 10.1371/journal.pone.0049982 . PMC 3503828. PMID 23185505 .  
  3. Bettiga, Larry J (8 de septiembre de 2015). "Evaluación del impacto de la enfermedad del enrollamiento de la hoja de la vid y la mancha roja en viñedos locales" . Blogs de ANR . Agricultura del Valle de Salinas . Consultado el 23 de diciembre de 2022 .
  4. ^ Sharma, A.; Pati, PK (2013). "Primer registro de Ashwagandha como nuevo huésped de la cochinilla invasora ( Phenacoccus solenopsis Tinsley) en la India". Noticias Entomológicas . 123 (1): 59– 62. doi : 10.3157/021.123.0114 . S2CID 85645762 . 
  5. 1 2 "Control de cactus en Klein Karoo" . Universidad de Rhodes . 17 de septiembre de 2014. Consultado el 19 de abril de 2021 .
  6. 1 2 Johnson, MS; et al. (2001). " Hormigas Acropyga y Azteca (Hymenoptera: Formicidae) con cochinillas (Sternorrhyncha: Coccoidea): 20 millones de años de simbiosis íntima" . American Museum Novitates (3335): 1–18 . doi : 10.1206/0003-0082(2001)335 < 0001:AAAAHF > 2.0.CO ; 2. S2CID 55067700 .  
  7. SP290-S-Cochinillas en plantas ornamentales (Informe). Servicio de Extensión Agrícola de la Universidad de Tennessee. 2003. SP290S-1.5M-5/03(Rev) E12-4615-00-030-03.
  8. "Cryptolaemus y crisopas para el control de cochinillas harinosas y escamas" (PDF) . Departamento de Estudios Primarios, NSW . Nueva Gales del Sur . Consultado el 25 de mayo de 2021 .
  9. Callier, Viviane (8 de junio de 2022). "Las mitocondrias y el origen de los eucariotas" . Revista Knowable . doi : 10.1146/knowable-060822-2 . Consultado el 18 de agosto de 2022 .
  10. BioLib.cz: familia: cochinillas harinosas - Pseudococcidae Heymons, 1915 (consultado el 14 de mayo de 2024)
  11. GBIF Chorizococcus McKenzie, 1960

Lecturas adicionales

  • Jahn, GC y JW Beardsley (1994). «Hormigas cabezonas, Pheidole megacephala : Interferencia con el control biológico de la cochinilla gris de la piña». En DF Williams [ed.] Hormigas exóticas: Biología, impacto y control de especies introducidas . Boulder, Col.: Westview Press, 199–205. ISBN 9780813386157.
  • Jahn, GC y JW Beardsley (1998). "Muestreo de presencia/ausencia de cochinillas, hormigas y depredadores principales en piña". J. Plant Protection in the Tropics 11(1):73–79.
  • Jahn, Gary C., JW Beardsley y H. González-Hernández (2003). "Una revisión de la asociación de hormigas con la enfermedad de marchitamiento por cochinilla harinosa de la piña" . Actas de la Sociedad Entomológica Hawaiana . 36:9–28.
  • NCIPM (Centro Nacional para el Manejo Integrado de Plagas) – Cochinillas del algodón
  • Cochinillas harinosas Pseudococcus spp. —Consejos de jardinería de la BBC
  • CISR – Cochinilla de la vid — Resumen del Centro de Investigación de Especies Invasoras sobre la cochinilla de la vid
  • En el sitio web de Criaturas Destacadas de la Universidad de Florida / Instituto de Ciencias Alimentarias y Agrícolas :
    • Hypogeococcus pungens
    • Nipaecoccus nipae , cochinilla del coco