Articulo de referencia

ARNSEH2B

La subunidad B de la ribonucleasa H2 es una proteína humana codificada por el gen RNASEH2B . [ 5 ] La RNasa H2 está compuesta por una subunidad catalítica ( A ) y dos subunidade...

La subunidad B de la ribonucleasa H2 es una proteína humana codificada por el gen RNASEH2B . [ 5 ] La RNasa H2 está compuesta por una subunidad catalítica ( A ) y dos subunidades no catalíticas (B y C ), y degrada el ARN de los híbridos ARN:ADN. Se cree que la subunidad B no catalítica de la RNasa H2 participa en la replicación y reparación del ADN. [ 5 ]

Las mutaciones en este gen son una causa del síndrome de Aicardi-Goutières tipo 2 (AGS2). [ 5 ] [ 6 ]

Estructura

La proteína RNASEH2B es una subunidad auxiliar del complejo heterotrimérico RNasa H2 , que incluye la subunidad catalítica RNASEH2A y otra subunidad accesoria, RNASEH2C . [ 7 ] [ 8 ] Estructuralmente, RNASEH2B forma un heterodímero estable con RNASEH2C, contribuyendo a un plegamiento de triple barril β entrelazado que se integra con la extensión C-terminal de RNASEH2A. [ 7 ] Esta arquitectura estabiliza el complejo y permite la actividad enzimática. Una característica funcional clave de RNASEH2B es su motivo PIP box (péptido interactuante con PCNA) C-terminal, que se une directamente al antígeno nuclear de células proliferantes (PCNA). [ 9 ] Esta interacción localiza la RNasa H2 en los focos de replicación , asegurando su función en el procesamiento de ribonucleótidos incorporados erróneamente durante la replicación y reparación del ADN. [ 9 ]

Función

La proteína RNASEH2B funciona como una subunidad auxiliar no catalítica del complejo enzimático RNasa H2, fundamental para mantener la estabilidad del genoma durante la replicación y reparación del ADN. Forma un complejo heterotrimérico con RNASEH2A (subunidad catalítica) y RNASEH2C , donde RNASEH2B y RNASEH2C crean un andamiaje estructural esencial para estabilizar la actividad enzimática de RNASEH2A. [ 10 ] Una característica clave de RNASEH2B es su motivo PIP-box C-terminal, que se une directamente al antígeno nuclear de células proliferantes (PCNA), localizando el complejo RNasa H2 en los focos de replicación del ADN. [ 10 ] Esta interacción permite a la enzima eliminar procesivamente los ribonucleótidos incorporados erróneamente del ADN, una función crítica dado que las ADN polimerasas replicativas incorporan ribonucleótidos erróneamente a tasas de ~1 por cada 7600 nucleótidos. [ 10 ] Más allá de su función en la replicación, RNASEH2B contribuye a la capacidad de la RNasa H2 para escindir diversos híbridos de ARN/ADN, lo que sugiere una participación más amplia en la resolución de bucles R asociados a la transcripción y el mantenimiento de la vigilancia genómica. [ 10 ]

Importancia clínica

Las mutaciones que alteran la interfaz entre RNASEH2B, RNASEH2C y RNASEH2A están relacionadas con el síndrome de Aicardi-Goutières, lo que subraya la importancia estructural de estas subunidades para mantener la estabilidad y la función del complejo. [ 7 ] [ 8 ] Las mutaciones en RNASEH2B alteran la integridad estructural del complejo y su capacidad de unión a PCNA, lo que conduce a una reparación defectuosa de la escisión de ribonucleótidos y causa el síndrome de Aicardi-Goutières, un trastorno autoinflamatorio relacionado con el daño acumulado en el ADN. [ 10 ]

Estudios de mutagénesis

La eliminación del gen RNASEH2B en ratones provoca letalidad embrionaria temprana. Para investigar su función, se crearon ratones modificados genéticamente con un codón de parada prematuro en el exón 7 del gen Rnaseh2b. [ 11 ] Se planteó la hipótesis de que la detención del crecimiento observada en estos ratones resulta de una respuesta al daño del ADN dependiente de p53 desencadenada por la acumulación de ribonucleótidos individuales (RN) en el ADN genómico .

Los ribonucleótidos se acumulan en células deficientes en RNASEH2 debido a su incorporación por las ADN polimerasas replicativas. Esta incorporación ocurre de forma natural en los metazoos y da lugar a lesiones —ribonucleótidos individuales o diRN— incrustadas covalentemente en el ADN genómico. Estas lesiones se producen con una frecuencia aproximada de 1.000.000 de sitios por célula, lo que convierte a la incorporación de ribonucleótidos en la lesión de base endógena más común en el genoma de los mamíferos. Esta frecuencia coincide con las predicciones basadas en las tasas de incorporación errónea in vitro por las polimerasas replicativas eucariotas.

El complejo RNASEH2 actúa como una enzima de vigilancia genómica esencial para la eliminación de estos ribonucleótidos. La acumulación de ribonucleótidos en el ADN genómico de ratones deficientes en RNASEH2 implica al complejo RNASEH2 en el mantenimiento de la integridad del genoma. Estas lesiones son perjudiciales, ya que el grupo 2'-hidroxilo de la ribosa aumenta la susceptibilidad de los enlaces fosfodiéster adyacentes a la hidrólisis. De hecho, se ha informado que los ribonucleótidos se incorporan a una tasa aproximada de uno cada 7600 nucleótidos en células deficientes en RNASEH2, lo que equivale a alrededor de 1 300 000 lesiones por célula. Esta estimación coincide con las tasas de incorporación errónea in vitro por parte de las polimerasas replicativas eucariotas.

La incorporación errónea de ribonucleótidos puede inducir daño en el ADN . Es importante destacar que los ribonucleótidos no impiden la replicación del ADN; el ADN polimerasa puede tolerar plantillas que contienen ribonucleótidos, y la embriogénesis temprana transcurre con normalidad. El problema surge cuando se incorporan cantidades excesivas de ribonucleótidos. La señalización de respuesta al daño del ADN puede activarse por la presencia de ribonucleótidos en regiones de difícil replicación o cerca de otras lesiones. También se han observado reordenamientos cromosómicos, incluyendo roturas del ADN, posiblemente originados por el colapso de la horquilla de replicación o la hidrólisis de ribonucleótidos en hebras de ADN opuestas. La marcada activación de la señalización de daño del ADN en los embriones puede conducir a una inhibición de la proliferación mediada por p53 , lo que probablemente contribuye a la letalidad observada en los embriones deficientes en RNASEH2B.

Referencias

  1. 1 2 3 GRCh38: Versión 89 de Ensembl: ENSG00000136104 Ensembl , mayo de 2017
  2. 1 2 3 GRCm38: Versión 89 de Ensembl: ENSMUSG00000021932 Ensembl , mayo de 2017
  3. "Referencia humana de PubMed:" . Centro Nacional de Información Biotecnológica, Biblioteca Nacional de Medicina de EE. UU .
  4. "Referencia de PubMed sobre el ratón:" . Centro Nacional de Información Biotecnológica, Biblioteca Nacional de Medicina de EE . UU .
  5. 1 2 3 "ribonucleasa H2, subunidad B" . Consultado el 4 de diciembre de 2011 .
  6. Crow YJ, Leitch A, Hayward BE, Garner A, Parmar R, Griffith E, et al. (agosto de 2006). "Las mutaciones en los genes que codifican las subunidades de la ribonucleasa H2 causan el síndrome de Aicardi-Goutières y simulan una infección cerebral viral congénita". Nature Genetics . 38 (8): 910– 916. doi : 10.1038/ng1842 . PMID 16845400. S2CID 8076225 .   
  7. 1 2 3 Martin AM, Bubeck D, Lucien CD, Stephen C, George S, Jones EY, et al. (marzo de 2011). "La estructura del complejo de la RNasa H2 humana define interfaces de interacción claves relevantes para la función enzimática y las enfermedades humanas" . Journal of Biological Chemistry . 286 (12): 10530– 10539. doi : 10.1074/jbc.M110.177394 . PMC 3060506. PMID 21177854 .   
  8. 1 2 Figiel M, Chon H, Susana M, Cybulska M, Robert J, Nowotny M (marzo de 2011). "La caracterización estructural y bioquímica del complejo RNasa H2 humano revela la base molecular del reconocimiento del sustrato y los defectos del síndrome de Aicardi-Goutières" . Journal of Biological Chemistry . 286 (12): 10540– 10550. doi : 10.1074/jbc.M110.181974 . PMC 3060507. PMID 21177858 .  
  9. 1 2 Bubeck D, Martin AM, Stephen C, Katy R, Jones EY, Andrew P (mayo de 2011). "PCNA dirige la actividad de la RNasa H de tipo 2 sobre los sustratos de replicación y reparación del ADN" . Nucleic Acids Research . 39 (9): 3652– 3666. doi : 10.1093/nar/ gkq980 . PMC 3089482. PMID 21245041 .  
  10. 1 2 3 4 5 Chon H, Vassilev A, DePamphilis ML, Zhao Y, Zhang J, Burgers PM, et al. (enero de 2009). "Contribuciones de las dos subunidades accesorias, RNASEH2B y RNASEH2C, a la actividad y propiedades del complejo RNasa H2 humano" . Nucleic Acids Research . 37 (1): 96– 110. doi : 10.1093/nar/gkn913 . PMC 2615623. PMID 19015152 .   
  11. Reijns MA, Rabe B, Rigby RE, Mill P, Astell KR, Lettice LA, et al. (mayo de 2012). " La eliminación enzimática de ribonucleótidos del ADN es esencial para la integridad y el desarrollo del genoma de los mamíferos" . Cell . 149 (5): 1008–1022 . doi : 10.1016/j.cell.2012.04.011 . PMC 3383994. PMID 22579044 .   

Lecturas adicionales

  • Crow YJ, Livingston JH (junio de 2008). "Síndrome de Aicardi-Goutières: un importante mimetismo mendeliano de infección congénita". Developmental Medicine and Child Neurology . 50 (6): 410– 416. doi : 10.1111/j.1469-8749.2008.02062.x . PMID 18422679. S2CID 36342200 .  
  • Ali M, Highet LJ, Lacombe D, Goizet C, King MD, Tacke U, et  al. (mayo de 2006). "Un segundo locus para el síndrome de Aicardi-Goutières en el cromosoma 13q14-21" . Journal of Medical Genetics . 43 (5): 444– 450. doi : 10.1136/jmg.2005.031880 . PMC 2649012. PMID 15908569 .  
  • Entrada de GeneReviews/NCBI/NIH/UW sobre el síndrome de Aicardi-Goutières
Obtenido de " https://en.wikipedia.org/w/index.php?title=RNASEH2B&oldid=1293347805 "