Articulo de referencia

Apresorio

Conidiosporas en germinación de Hyaloperonospora parasitica . Obsérvese el apresorio en la parte superior derecha. Un apresorio es una célula especializada típica de muchos hong...

Conidiosporas en germinación de Hyaloperonospora parasitica . Obsérvese el apresorio en la parte superior derecha.

Un apresorio es una célula especializada típica de muchos hongos fitopatógenos que se utiliza para infectar a las plantas hospedantes . Es un órgano aplanado de tipo hifal , del cual crece una diminuta clavija de infección que penetra en el hospedante mediante una presión de turgencia de 8,0 MPa (80 bares), capaz de perforar incluso el Mylar . [ 1 ] [ 2 ] [ 3 ]

Tras la adhesión y germinación de la espora en la superficie del huésped, el tubo germinativo emergente percibe señales físicas como la dureza y la hidrofobicidad de la superficie , así como señales químicas, incluidos monómeros de cera , que desencadenan la formación del apresorio. La formación del apresorio comienza cuando la punta del tubo germinativo cesa su crecimiento polar, se engancha y comienza a hincharse. El contenido de la espora se moviliza entonces hacia el apresorio en desarrollo, se forma un septo en el cuello del apresorio, y el tubo germinativo y la espora colapsan y mueren. A medida que el apresorio madura, se adhiere firmemente a la superficie de la planta y se deposita una densa capa de melanina en su pared, excepto en un poro en la interfaz con la planta. La presión de turgencia aumenta dentro del apresorio y emerge una hifa de penetración en el poro, que se introduce a través de la cutícula vegetal hasta las células epidérmicas subyacentes . La presión osmótica ejercida por el apresorio puede alcanzar hasta 8 MPa (80 bares), lo que le permite perforar la cutícula de la planta. [ 4 ] [ 5 ] Esta presión se logra gracias a una pared celular pigmentada con melanina que es impermeable a compuestos más grandes que las moléculas de agua, por lo que los iones altamente concentrados no pueden escapar de ella. [ 6 ]

Formación

La adhesión de una espora fúngica a la superficie de la planta huésped es el primer paso crítico de la infección. Una vez hidratada la espora, se libera un mucílago adhesivo de su extremo. [ 7 ] Durante la germinación , se siguen extruyendo sustancias mucilaginosas en los extremos del tubo germinativo , que son esenciales para la adhesión del tubo germinativo y la formación del apresorio. [ 8 ] La adhesión de la espora y la formación del apresorio se inhiben por enzimas hidrolíticas como la α- manosidasa , la α- glucosidasa y la proteasa , lo que sugiere que los materiales adhesivos están compuestos de glicoproteínas . [ 8 ] [ 9 ] La germinación también se inhibe a altas concentraciones de esporas, lo que podría deberse a un autoinhibidor lipofílico. La autoinhibición puede superarse mediante la cera hidrofóbica de la hoja de arroz. [ 10 ]

Uromyces appendiculatus , tubo germinativo y apresorio

En respuesta a señales superficiales, la punta del tubo germinativo experimenta un proceso de diferenciación celular para formar una estructura de infección especializada, el apresorio. Frank B. (1883), en 'Ueber einige neue und weniger bekannte Pflanzenkrankheiten', acuñó el nombre de "apresorio" para el cuerpo de adhesión formado por el patógeno del frijol Gloeosporium lindemuthianum en la superficie del huésped. [ 11 ]

El desarrollo del apresorio implica una serie de pasos: división nuclear, formación del primer septo, emergencia de la plántula, hinchazón de la punta y formación del segundo septo. La mitosis ocurre poco después de la adhesión a la superficie, y un núcleo de la segunda ronda de mitosis durante la hinchazón de la punta migra hacia la célula en forma de gancho antes de la formación del septo. Un apresorio maduro normalmente contiene un solo núcleo. [ 2 ] [ 12 ] La membrana plasmática externa del apresorio maduro está cubierta por una capa de melanina excepto en la región en contacto con el sustrato, donde se desarrolla la clavija de penetración, una hifa especializada que penetra la superficie del tejido. [ 2 ] [ 13 ] La concentración celular de glicerol aumenta bruscamente durante la germinación de la espora, pero disminuye rápidamente en el punto de iniciación del apresorio, y luego aumenta gradualmente de nuevo durante la maduración del apresorio. Esta acumulación de glicerol genera una alta presión de turgencia en el apresorio, y la melanina es necesaria para mantener el gradiente de glicerol a través de la pared celular del apresorio. [ 14 ]

Iniciación

Los apresorios se inducen en respuesta a señales físicas que incluyen la dureza de la superficie y la hidrofobicidad, así como señales químicas de aldehídos [ 15 ] cAMP exógeno , etileno , la hormona de maduración del huésped y el monómero de cutina vegetal ácido hexadecanoico . [ 16 ] [ 17 ] Los ácidos grasos de cadena larga y la secuencia de tripéptidos Arg - Gly - Asp inhiben la inducción de apresorios. [ 18 ] [ 19 ]

Los hongos de la roya solo forman apresorios en los estomas , ya que solo pueden infectar las plantas a través de estos poros. Otros hongos tienden a formar apresorios sobre las paredes celulares anticlinales , y algunos los forman en cualquier lugar. [ 20 ] [ 21 ]

Véase también

Referencias

  1. Howard RJ, Ferrari MA, Roach DH, Money NP (1991). "Penetración de sustratos duros por un hongo que emplea enormes presiones de turgencia" . Actas de la Academia Nacional de Ciencias . 88 (24): 11281– 84. Bibcode : 1991PNAS...8811281H . doi : 10.1073/pnas.88.24.11281 . PMC 53118. PMID 1837147 .  
  2. 1 2 3 Howard RJ, Valent B (1996). "Infiltración: penetración del huésped por el hongo patógeno de la piriculariosis del arroz Magnaporthe grisea ". Annual Review of Microbiology . 50 : 491–512 . doi : 10.1146/annurev.micro.50.1.491 . PMID 8905089 . 
  3. Howard, RJ; Ferrari, MA; Roach, DH; Money, NP (1991-12-15). "Penetración de sustratos duros por un hongo que emplea enormes presiones de turgencia" . Actas de la Academia Nacional de Ciencias de los Estados Unidos de América . 88 (24): 11281– 11284. doi : 10.1073/pnas.88.24.11281 . ISSN 0027-8424 . PMC 53118. PMID 1837147 .   
  4. Fitopatología. T. 1, Podstawy fitopatologii . Selim Kryczyński, Zbigniew Weber, Barbara Gołębniak. Poznan: Powszechne Wydawnictwo Rolnicze i Leśne. 2010. ISBN 978-83-09-01063-0OCLC 802060485 {{cite book}}: CS1 mantenimiento: otros ( enlace )
  5. Howard, RJ; Ferrari, MA; Roach, DH; Money, NP (1991-12-15). "Penetración de sustratos duros por un hongo que emplea enormes presiones de turgencia" . Actas de la Academia Nacional de Ciencias de los Estados Unidos de América . 88 (24): 11281– 11284. doi : 10.1073/pnas.88.24.11281 . ISSN 0027-8424 . PMC 53118. PMID 1837147 .   
  6. Howard, Richard J.; Ferrari, Margaret A. (1989-12-01). "Función de la melanina en el apresorio" . Micología experimental . 13 (4): 403– 418. doi : 10.1016/0147-5975(89)90036-4 . ISSN 0147-5975 . 
  7. Braun EJ, Howard RJ (1994). "Adhesión de esporas y plántulas de hongos a superficies de plantas hospedantes". Protoplasma . 181 ( 1–4 ): 202–12 . doi : 10.1007/BF01666396 . S2CID 35667834 . 
  8. 1 2 Xiao JZ, Ohsima A, Kamakura T, Ishiyama T, Yamaguchi I (1994). "Glicoproteína(s) extracelular(es) asociada(s) con la diferenciación celular en Magnaporthe grisea " (PDF) . Interacciones moleculares planta-microbio . 7 (5): 639– 44. doi : 10.1094/MPMI-7-0639 .
  9. Ohtake M, Yamamoto H, Uchiyama T (1999). "Influencia de los inhibidores metabólicos y las enzimas hidrolíticas en la adhesión de los apresorios de Pyricularia oryzae a cubreobjetos recubiertos de cera" (PDF) . Bioscience, Biotechnology, and Biochemistry . 63 (6): 978–82 . doi : 10.1271/bbb.63.978 . PMID 27389332 . 
  10. Hegde Y; Kolattukudy PE (1997). "Las ceras cuticulares alivian la autoinhibición de la germinación y la formación de apresorios por las conidias de Magnaporthe grisea ". Physiological and Molecular Plant Pathology . 51 (2): 75– 84. doi : 10.1006/pmpp.1997.0105 .
  11. Deising HB, Werner S, Wernitz M (2000). "El papel de los apresorios fúngicos en la infección de plantas" . Microbes and Infection / Institut Pasteur . 2 (13): 1631– 41. doi : 10.1016/S1286-4579(00)01319-8 . PMID 11113382 . 
  12. Shaw BD, Kuo KC, Hoch HC (1998). "Germinación y desarrollo del apresorio de las picnidiosporas de Phyllosticta ampelicida " . Mycologia . 90 (2): 258– 68. doi : 10.2307/3761301 . JSTOR 3761301 . 
  13. Bourett TM, Howard RJ (1990). " Desarrollo in vitro de estructuras de penetración en el hongo Magnaporthe grisea, causante de la piriculariosis del arroz ". Canadian Journal of Botany . 68 (2): 329–42 . doi : 10.1139/b90-044 .
  14. deJong JC, McCormack BJ, Smirnoff N, Talbot NJ (1997). "El glicerol genera turgencia en la piriculariosis del arroz" . Nature . 389 (6648): 244– 5. Bibcode : 1997Natur.389..244D . doi : 10.1038/38418 . S2CID 205026525 . 
  15. Zhu, M., et al. (2017). Los aldehídos de cadena muy larga inducen la formación de apresorios en ascosporas del hongo del mildiú polvoriento del trigo Blumeria graminis . Fungal biology 121(8): 716-728. https://doi.org/10.1016/j.funbio.2017.05.003
  16. Flaishman MA, Kolattukudy PE (1994). "Momento de la invasión fúngica utilizando la hormona de maduración del huésped como señal" . Actas de la Academia Nacional de Ciencias de los Estados Unidos de América . 91 (14): 6579– 83. Bibcode : 1994PNAS...91.6579F . doi : 10.1073/pnas.91.14.6579 . PMC 44246. PMID 11607484 .  
  17. Gilbert RD, Johnson AM, Dean RA (1996). "Señales químicas responsables de la formación de apresorios en el hongo Magnaporthe grisea causante de la piriculariosis del arroz ". Physiological and Molecular Plant Pathology . 48 (5): 335– 46. doi : 10.1006/pmpp.1996.0027 .
  18. Lee YH, Dean RA (1993). " El cAMP regula la formación de estructuras de infección en el hongo fitopatógeno Magnaporthe grisea " (PDF) . Plant Cell . 5 (6): 693–700 . doi : 10.2307/ 3869811 . JSTOR 3869811. PMC 160306. PMID 12271080 .   
  19. Correa A, Staples RC, Hoch HC (1996). "Inhibición de la diferenciación celular tigmoestimulada con péptidos RGD en plántulas de Uromyces ". Protoplasma . 194 ( 1–2 ): 91–102 . doi : 10.1007/BF01273171 . S2CID 8417737 . 
  20. Hoch, HC; Staples, RC (1987). "Cambios estructurales y químicos entre los hongos de la roya durante el desarrollo del apresorio". Annual Review of Phytopathology . 25 : 231–247 . doi : 10.1146/annurev.py.25.090187.001311 .
  21. Dean, RA (1997). "Vías de señalización y morfogénesis del apresorio". Annual Review of Phytopathology . 35 : 211–234 . doi : 10.1146/annurev.phyto.35.1.211 . PMID 15012522 .