Articulo de referencia

Granada mediano

El medio Granada es un medio de cultivo selectivo y diferencial diseñado para aislar selectivamente Streptococcus agalactiae (estreptococo del grupo B, EGB) y diferenciarlo de o...

El medio Granada es un medio de cultivo selectivo y diferencial diseñado para aislar selectivamente Streptococcus agalactiae (estreptococo del grupo B, EGB) y diferenciarlo de otros microorganismos. El medio Granada fue desarrollado por Manuel Rosa-Fraile et al. en el Servicio de Microbiología del Hospital Virgen de las Nieves de Granada (España). [ 1 ]

La identificación de GBS en medio granada es sencilla y se basa en la detección de granadaeno , un pigmento poliénico rojo específico de GBS. [ 2 ] [ 3 ] [ 4 ]

Streptococcus agalactiae en agar granada, incubación anaeróbica.
Streptococcus agalactiae en caldo granada

El medio Granada es comercializado en los EE. UU. por Hardy Diagnostics [ 5 ] y en la Unión Europea y el Reino Unido como marca comercial (®) por Biomerieux [ 6 ] y Becton Dickinson . [ 7 ]

Composición

pH 7,45±0,1

Antecedentes y principios

El medio Granada se desarrolló para el aislamiento selectivo y la identificación de GBS a partir de muestras clínicas. [ 1 ] La producción de un pigmento rojo ( granadaeno ) en el medio Granada es exclusiva de los estreptococos del grupo B β- hemolíticos aislados de humanos. [ 8 ]

El granadeneno es un pigmento poliénico no isoprenoide (ornitinoramnododecaeno) con un sistema conjugado de 12 enlaces dobles. [ 3 ] [ 9 ] [ 10 ]

La β-hemólisis y la producción de pigmento están codificadas en GBS por un grupo de 12 genes, el grupo cyl . [ 11 ] [ 12 ] Además, se ha sugerido que el pigmento y la hemolisina de GBS son moléculas idénticas o estrechamente relacionadas. También se ha informado que son factores importantes que contribuyen a la virulencia de GBS. [ 8 ] [ 13 ] [ 14 ]

Componentes

El agar Granada consiste principalmente en un agar de almidón , peptona y proteosa tamponado con MOPS (un tampón de Good ) y fosfato, y suplementado con metotrexato y antibióticos. [ 1 ] La peptona y proteosa, el suero de caballo, la glucosa y el piruvato de sodio proporcionan nutrientes para el crecimiento de Streptococcus agalactiae ; el piruvato de sodio también proporciona un efecto protector contra las especies reactivas de oxígeno (ROS). El MOPS y el fosfato tamponan el medio. El metotrexato desencadena la producción de pigmento [ 8 ] y el almidón estabiliza el pigmento. [ 8 ] El suplemento selectivo contiene los antibióticos colistina (inhibidor para bacterias gramnegativas) y metronidazol (inhibidor para bacterias anaerobias), y cristal violeta para suprimir las bacterias grampositivas acompañantes .

Granadaeno

Un componente clave del medio granada es la peptona de proteosa N3 (Difco & BD). Esta peptona péptica fue desarrollada por DIFCO (Digestive Ferments Company) durante la Primera Guerra Mundial para la producción de toxinas bacterianas destinadas a la fabricación de vacunas. [ 15 ] Para el desarrollo de colonias de GBS de color rojo ladrillo en el medio granada, es necesaria la presencia del péptido Ile-Ala-Arg-Arg-His-Pro-Tyr-Phe en el medio de cultivo. Este péptido se produce únicamente durante la hidrólisis de la albúmina de mamíferos por la pepsina. [ 16 ]

Para una producción óptima de pigmentos, también es necesario que la peptona contenga otras sustancias (actualmente no caracterizadas) de los tejidos de la pared gastrointestinal de mamíferos utilizados para preparar algunas peptonas. [ 17 ]

La presencia de almidón es un requisito básico para estabilizar el pigmento, permitiendo el desarrollo de colonias rojas de GBS. [ 8 ] Sin embargo, si se utiliza almidón soluble, se obtiene un medio de cultivo que se deteriora rápidamente a temperatura ambiente debido a que el almidón soluble es hidrolizado por la amilasa del suero (añadido como suplemento). Este inconveniente puede solucionarse prescindiendo del suero o utilizando almidones no modificados para preparar el medio de cultivo, ya que estos últimos son más resistentes a la acción hidrolítica de la amilasa. [ 18 ]

Usos

GBS crece en agar granada como colonias rosa-rojizas después de 18–48 horas de incubación (35–37  °C), se obtienen mejores resultados en anaerobiosis (cultivo en un ambiente anaeróbico). [ 1 ] El agar granada se utiliza para el aislamiento primario, la identificación y el cribado de GBS β-hemolítico a partir de muestras clínicas. [ 2 ] [ 4 ] Este medio de cultivo es selectivo para GBS, otros microorganismos (como enterococos y levaduras ), resistentes a los agentes selectivos utilizados, pueden desarrollarse como colonias incoloras o blancas. [ 2 ]

Colonias rojas de Streptococcus agalactiae en agar granada. Cultivo vaginorrectal, incubación de 18 h a 36 °C en anaerobiosis.

El agar Granada es útil para el cribado de mujeres embarazadas para la detección de la colonización vaginal y rectal por GBS para usar profilaxis antibiótica intraparto para evitar la infección temprana por GBS en el recién nacido. [ 19 ] [ 20 ] [ 21 ] [ 22 ]

También se ha sugerido que la pigmentación de GBS en agar Granada puede ayudar a identificar a mujeres embarazadas y recién nacidos con mayor riesgo de desarrollar enfermedad invasiva por GBS. [ 23 ]

Procedimiento

Las muestras se pueden sembrar directamente en una placa de agar granada o después de un paso de enriquecimiento para obtener el máximo aislamiento. [ 20 ] Las muestras deben sembrarse lo antes posible después de recibirlas en el laboratorio. Si el material se cultiva a partir de un hisopo (por ejemplo, de un hisopo vaginal o vaginorrectal), extienda el hisopo directamente sobre la placa de agar para asegurar una exposición adecuada del hisopo al medio y lograr la máxima transferencia de microorganismos. Coloque el cultivo en un ambiente anaeróbico, incúbelo a 35-37  °C y examínelo después de la incubación nocturna y nuevamente después de aproximadamente 48 horas. [ 1 ]

Para aumentar la recuperación de GBS, los hisopos también pueden inocularse previamente en un medio de cultivo de enriquecimiento selectivo, como el caldo Todd-Hewitt suplementado con gentamicina o colistina y ácido nalidíxico , e incubarse durante 18-24 horas a 35-37  °C. [ 20 ] [ 24 ]

Resultados

Las colonias de GBS β-hemolítico aparecen en el medio granada como colonias rosadas o rojas, y se distinguen fácilmente de otros microorganismos que también puedan haber crecido en la placa. Cualquier grado de desarrollo naranja debe considerarse indicativo de una colonia de GBS, y no son necesarias pruebas de identificación adicionales. [ 2 ] El GBS no β-hemolítico se desarrolla en agar granada como colonias blancas que, si es necesario, pueden analizarse mediante aglutinación de látex o la prueba CAMP . [ 4 ] [ 20 ]

Variante

Colonias de Streptococcus agalactiae en agar granada, aerobiosis, técnica del cubreobjetos

Las placas de agar Granada también se pueden incubar aeróbicamente, siempre que se coloque un cubreobjetos sobre el inóculo en la placa. [ 2 ]

El medio Granada también puede usarse como medio líquido (caldos Granada) [ 25 ] como el caldo de zanahoria Strep B [ 26 ] Cuando se utilizan medios Granada líquidos, no es necesaria la incubación anaeróbica. [ 2 ]

Granadaeno y Streptococcus agalactiae

La β-hemólisis y la producción de pigmento (granadaeno) están codificadas en GBS por un grupo de genes de 12 genes, el grupo cyl . [ 11 ] [ 12 ]

Además, se ha sugerido que el pigmento y la hemolisina de GBS son moléculas idénticas o estrechamente relacionadas, y también se ha informado que son factores importantes que contribuyen a la virulencia de GBS. [ 8 ] [ 13 ] [ 14 ]

Sin embargo, entre el 1 y el 5 % de las cepas de GBS no son hemolíticas y no producen pigmento. [ 8 ] No obstante, estas cepas de GBS no hemolíticas y no pigmentadas (que carecen de pigmento y hemolisina) se consideran menos virulentas. [ 13 ] [ 14 ] [ 27 ] [ 28 ] [ 29 ] [ 30 ]

Referencias

  1. 1 2 3 4 5 6 Rosa M, Pérez M, Carazo C, Peis JI, Pareja L, Hernández F (1992). " Nuevo medio Granada para la detección e identificación de estreptococos del grupo B" (PDF) . Journal of Clinical Microbiology . 30 (4): 1019– 1021. doi : 10.1128/JCM.30.4.1019-1021.1992 . PMC 265207. PMID 1572958. Recuperado el 26 de junio de 2026 .  
  2. 1 2 3 4 5 6 Rosa-Fraile M, Rodriguez-Granger J, Cueto-Lopez M, Sampedro A, Biel Gaye E, Haro M, Andreu A (1999). "Uso del medio Granada para detectar la colonización por estreptococos del grupo B en mujeres embarazadas" ( PDF) . Journal of Clinical Microbiology . 37 (8): 2674– 2677. doi : 10.1128/JCM.37.8.2674-2677.1999 . PMC 85311. PMID 10405420. Recuperado el 26 de junio de 2026 .  
  3. 1 2 Rosa-Fraile M, Rodriguez-Granger J, Haidour-Benamin A, Cuerva JM, Sampedro A (2006). " Granadaeno: Estructura propuesta del pigmento poliénico del estreptococo del grupo B" (PDF) . Microbiología aplicada y ambiental . 72 (9): 6367– 6370. Bibcode : 2006ApEnM..72.6367R . doi : 10.1128/aem.00756-06 . PMC 1563658. PMID 16957264. Recuperado el 26 de junio de 2026 .  
  4. 1 2 3 Rosa-Fraile M, Spellerberg B (septiembre de 2017). "Detección confiable de Streptococcus del grupo B en el laboratorio clínico" ( PDF) . Journal of Clinical Microbiology . 55 (9): 2590– 2598. doi : 10.1128/JCM.00582-17 . PMC 5648696. PMID 28659318. Recuperado el 26 de junio de 2026 .  
  5. "Granada Medium" (PDF) . Haerdy Diagnostics . Consultado el 26 de junio de 2026 .
  6. «Agar granada» . Biomérieux . Consultado el 21 de octubre de 2023 .
  7. "BD Grupo B Streptococcus Agar Diferencial (Medio Granada)" . Consultado el 21 de octubre de 2023 .
  8. 1 2 3 4 5 6 7 Rosa-Fraile M, Dramsi S, Spellerberg B (2014). "Hemolisina y pigmento del estreptococo del grupo B, una historia de gemelos" (PDF) . FEMS Microbiology Reviews . 38 (5): 932– 946. doi : 10.1111/1574-6976.12071 . PMC 4315905. PMID 24617549. Recuperado el 26 de junio de 2026 .  
  9. Paradas M, Jurado R, Haidour A, et al. (2012). "Aclaración de la estructura del granadaeno: síntesis total del análogo relacionado [2]-granadaeno y confirmación de su estereoquímica absoluta". Bioorganic & Medicinal Chemistry . 20 (22): 6655– 6651. doi : 10.1016/j.bmc.2012.09.017 . PMID 23043725 .  
  10. Madden KS, Mosa FA, Whiting A (2014). "Productos naturales poliénicos no isoprenoides: estructuras y estrategias sintéticas" . Química Orgánica y Biomolecular . 12 (40): 7877– 7899. doi : 10.1039/C4OB01337A . PMID 25188767 . 
  11. 1 2 Spellerberg B, Pohl B, Haase G, Martin S, Weber-Heynemann J, Lutticken R (1999). "Identificación de determinantes genéticos para la actividad hemolítica de Streptococcus agalactiae mediante transposición de ISS1" ( PDF) . Journal of Bacteriology . 181 (10): 3212– 3219. doi : 10.1128/JB.181.10.3212-3219.1999 . PMC 93778. PMID 10322024 .  
  12. 1 2 Spellerberg B, Martin S, Brandt C, Lutticken R (2000). "Los genes cyl de Streptococcus agalactiae están involucrados en la producción de pigmento" . FEMS Microbiology Letters . 188 (2): 125– 128. doi : 10.1016/s0378-1097(00)00224-x . PMID 10913694 . 
  13. 1 2 3 Whidbey C, Harrell MI, Burnside K, et al. (2013). "Un pigmento hemolítico de Streptococcus del grupo B permite la penetración bacteriana de la placenta humana" (PDF) . Journal of Experimental Medicine . 219 (6): 1265– 1281. doi : 10.1084/jem.20122753 . PMC 3674703. PMID 23712433. Recuperado el 26 de junio de 2026 .   
  14. 1 2 3 Whidbey C, Vornhagen J, Gendrin C, et al. (2015). "Una toxina lipídica estreptocócica induce permeabilización de la membrana y piroptosis que conduce a daño fetal" (PDF) . EMBO Molecular Medicine . 7 (4): 488– 505. doi : 10.15252/emmm.201404883 . PMC 4403049. PMID 25750210. Recuperado el 26 de junio de 2026 .   
  15. Difco & BBL. Manual de medios de cultivo microbiológicos, 2.ª edición . BD Diagnostics – Diagnostic Systems. 2009. pág. 450. ISBN  978-0-9727207-1-7.
  16. Rosa-Fraile M, Sampedro A, Varela J, Garcia-Peña M, Gimenez-Gallego G (1999). "Identificación de un péptido de albúminas de mamíferos responsable de la producción mejorada de pigmento por estreptococos del grupo B" (PDF) . Clin Diagn Lab Immunol . 6 (3): 425– 426. doi : 10.1128/CDLI.6.3.425-426.1999 . PMC 103735. PMID 10225848. Recuperado el 26 de junio de 2026 .  
  17. Enrique Camacho Muñoz (2005). Importancia de la Proteosa Peptona No 3 en la Producción de Pigmento por Streptococcus agalactiae en el Medio Granada (PDF) . Universidad de Granada. ISBN 978-84-338-3741-7Consultado el 24 de junio de 2016 .
  18. Rosa-Fraile M, Rodríguez-Granger J, Camacho-Muñoz E, Sampedro A (2005). "Uso de almidones no modificados y eliminación parcial de suero para mejorar la estabilidad del medio Granada" (PDF) . Journal of Clinical Microbiology . 43 (4): 18889– 1991. doi : 10.1128/JCM.43.4.1989-1991.2005 . PMC 1081375. PMID 15815040. Recuperado el 24 de junio de 2016 .  
  19. Rosa-Fraile M , Spellerberg B. (2017). "Detección fiable de Streptococcus del grupo B en el laboratorio clínico" (PDF) . J Clin Microbiol . 55 (9): 2590– 2598. doi : 10.1128/JCM.00582-17 . PMC 5648696. PMID 28659318. Consultado el 26 de junio de 2026 .  
  20. 1 2 3 4 Verani JR, McGee L, Schrag SJ (2010). "Prevención de la enfermedad estreptocócica del grupo B perinatal: directrices revisadas de los CDC, 2010" (PDF) . MMWR Recomm Rep . 59 (RR-10): 1–32 . PMID 21088663. Recuperado el 26 de junio de 2026 . 
  21. Sociedad Americana de Microbiología. "Directrices para la detección e identificación del estreptococo del grupo B, 2021" . Consultado el 26 de junio de 2026 .
  22. Laura Filkins, Jocelyn R Hauser, Barbara Robinson-Dunnobert Tibbetts, Bobby L Boyanton Jr, Paula Revell, Comité de Microbiología Clínica y de Salud Pública de la Sociedad Americana de Microbiología, Subcomité de Prácticas de Laboratorio (2020). "La Sociedad Americana de Microbiología proporciona las Directrices de 2020 para la detección e identificación del estreptococo del grupo B" ( PDF) . Revista de Microbiología Clínica . JCM.01230-20. (1): e01230-20. doi : 10.1128/JCM.01230-20 . PMC 7771461. PMID 33115849. S2CID 226049927. Recuperado el 28 de junio de 2026 .   {{cite journal}}: CS1 maint: varios nombres: lista de autores ( enlace )
  23. Huebner EM, Gudjónsdóttir MJ, Dacanay MB, et al. (2022). "Características de virulencia, fenotipo y genotipo de aislamientos invasivos de Streptococcus del grupo B obtenidos de mujeres embarazadas y neonatos suecos" (PDF) . Annals of Clinical Microbiology and Antimicrobials . 21 (1): 43. doi : 10.1186/s12941-022-00534-2 . PMC 9560721. PMID 36229877. Recuperado el 28 de junio de 2026 .   
  24. Laura Filkins, Jocelyn R Hauser, Barbara Robinson-Dunn, Robert Tibbetts, Bobby L Boyanton Jr, Paula Revell, Comité de Microbiología Clínica y de Salud Pública de la Sociedad Americana de Microbiología, Subcomité de Prácticas de Laboratorio (2020). "La Sociedad Americana de Microbiología proporciona directrices de 2020 para la detección e identificación de Streptococcus del grupo B" ( PDF ) . Journal of Clinical Microbiology . JCM.01230-20. (1): e01230-20. doi : 10.1128/JCM.01230-20 . PMC 7771461. PMID 33115849. S2CID 226049927. Recuperado el 14 de diciembre de 2020 .   {{cite journal}}: CS1 maint: varios nombres: lista de autores ( enlace )
  25. Carvalho Mda G, Facklam R, Jackson D, Beall B, McGee L. (2009). "Evaluación de tres medios de cultivo comerciales para la detección de pigmentos e identificación de un Streptococcus del grupo B (Streptococcus agalactiae)" ( PDF) . J Clin Microbiol . 47 (12): 4161– 4163. doi : 10.1128/JCM.01374-09 . PMC 2786674. PMID 19812277 .  {{cite journal}}: CS1 maint: varios nombres: lista de autores ( enlace )
  26. "STREP B CARROT BROTH™" (PDF) . Consultado el 17 de octubre de 2023 .
  27. Christopher-Mychael Whidbey (2015). Caracterización de la hemolisina del estreptococo del grupo B y su papel en la infección intrauterina (PDF) . Universidad de Washington . Consultado el 23 de junio de 2026 .
  28. Rodriguez-Granger J, Spellerberg B, Asam D, Rosa-Fraile M (2015). "Estreptococo del grupo B no hemolítico y no pigmentado, una causa infrecuente de sepsis neonatal de inicio temprano" ( PDF) . Pathogens and Disease . 73 (9) ftv089. doi : 10.1093/femspd/ftv089 . PMC 4626576. PMID 26449711. Recuperado el 23 de junio de 2026 .  
  29. Armistead B, Oler E, Adams Waldorf K, Rajagopal L. (2019). "La doble vida del estreptococo del grupo B: colonizador asintomático y patógeno potente" ( PDF) . Journal of Molecular Biology . 431 (16): 2914– 2931. doi : 10.1016/j.jmb.2019.01.035 . PMC 6646060. PMID 30711542 .  {{cite journal}}: CS1 maint: varios nombres: lista de autores ( enlace )
  30. Armistead B, Quach P, Snyder JM, Santana-Ufret V, Furuta A, Brokaw A, Rajagopal L. (2020). "Las vesículas de membrana hemolíticas del estreptococo del grupo B promueven la infección" (PDF) . The Journal of Infectious Diseases . jiaa548 (8): 1488– 1496. doi : 10.1093/infdis/jiaa548 . PMC 8064051. PMID 32861213 .  {{cite journal}}: CS1 maint: varios nombres: lista de autores ( enlace )