Articulo de referencia

H4K91ac

La modificación epigenética H4K91ac afecta a la histona H4 , una proteína de empaquetamiento del ADN . Se trata de una marca que indica la acetilación del residuo de lisina núme...

La modificación epigenética H4K91ac afecta a la histona H4 , una proteína de empaquetamiento del ADN . Se trata de una marca que indica la acetilación del residuo de lisina número 91 de la proteína histona H4. No se conocen enfermedades asociadas a esta modificación, pero podría estar implicada en el melanoma .

Nomenclatura

H4K91ac indica la acetilación de la lisina 91 en la subunidad proteica de la histona H4: [ 1 ]

Modificaciones de las histonas

El ADN genómico de las células eucariotas está enrollado alrededor de moléculas proteicas especiales conocidas como histonas . Los complejos formados por el plegamiento del ADN se conocen como cromatina . La unidad estructural básica de la cromatina es el nucleosoma : este consta del octámero central de histonas (H2A, H2B, H3 y H4), así como una histona de enlace y aproximadamente 180 pares de bases de ADN. Estas histonas centrales son ricas en residuos de lisina y arginina. El extremo carboxilo (C) terminal de estas histonas contribuye a las interacciones histona-histona, así como a las interacciones histona-ADN. Las colas cargadas del extremo amino (N) terminal son el sitio de las modificaciones postraduccionales , como la observada en H3K36me3 . [ 2 ] [ 3 ]

Histona H4

Las modificaciones de H4 no son tan conocidas como las de H3 y H4 tiene menos variaciones, lo que podría explicar su importante función. [ 4 ]

H4K91ac

Al 15 de diciembre de 2019, no se atribuyen enfermedades a esta marca [ 5 ] , aunque el bromodominio diana del dominio de homología de Pleckstrina (PHIP) se une específicamente a H4K91ac, lo que podría implicar a PHIP en la progresión del melanoma. [ 6 ] Se encuentra en el sitio de inicio de la transcripción (TSS) de genes activos y preparados. [ 5 ]

La histona acetiltransferasa KAT2A es el lector específico. [ 5 ]

Acetilación y desacetilación de lisina

Acetilación de lisina

Las proteínas se acetilan típicamente en residuos de lisina , y esta reacción depende de la acetil-coenzima A como donante del grupo acetilo. En la acetilación y desacetilación de histonas , las proteínas histonas se acetilan y desacetilan en residuos de lisina en la cola N-terminal como parte de la regulación génica . Por lo general, estas reacciones son catalizadas por enzimas con actividad de histona acetiltransferasa (HAT) o histona desacetilasa (HDAC), aunque las HAT y las HDAC también pueden modificar el estado de acetilación de proteínas no histonas. [ 7 ]

La regulación de factores de transcripción, proteínas efectoras, chaperonas moleculares y proteínas del citoesqueleto mediante acetilación y desacetilación es un importante mecanismo regulador postraduccional [ 8 ]. Estos mecanismos reguladores son análogos a la fosforilación y desfosforilación por la acción de quinasas y fosfatasas . El estado de acetilación de una proteína no solo puede modificar su actividad, sino que esta modificación postraduccional también puede interactuar con la fosforilación , la metilación , la ubiquitinación , la sumoilación y otras para el control dinámico de la señalización celular. [ 9 ] [ 10 ] [ 11 ]

Implicaciones epigenéticas

La modificación postraduccional de las colas de las histonas por complejos modificadores de histonas o complejos de remodelación de la cromatina es interpretada por la célula y conduce a una salida transcripcional combinatoria compleja. Se cree que un código de histonas dicta la expresión de los genes mediante una interacción compleja entre las histonas en una región particular. [ 12 ] La comprensión e interpretación actuales de las histonas provienen de dos proyectos a gran escala: ENCODE y la hoja de ruta epigenómica. [ 13 ] El propósito del estudio epigenómico fue investigar los cambios epigenéticos en todo el genoma. Esto condujo a estados de cromatina que definen regiones genómicas al agrupar las interacciones de diferentes proteínas y/o modificaciones de histonas. Los estados de cromatina se investigaron en células de Drosophila observando la ubicación de unión de las proteínas en el genoma. El uso de ChIP-sequencing reveló regiones en el genoma caracterizadas por diferentes bandas. [ 14 ] También se perfilaron diferentes etapas de desarrollo en Drosophila, haciendo hincapié en la relevancia de la modificación de histonas. [ 15 ] Un análisis de los datos obtenidos condujo a la definición de estados de cromatina basados ​​en modificaciones de histonas. [ 16 ]

El genoma humano se anotó con estados de cromatina. Estos estados anotados pueden utilizarse como nuevas formas de anotar un genoma independientemente de la secuencia genómica subyacente. Esta independencia de la secuencia de ADN refuerza la naturaleza epigenética de las modificaciones de histonas. Los estados de cromatina también son útiles para identificar elementos reguladores que no tienen una secuencia definida, como los potenciadores . Este nivel adicional de anotación permite una comprensión más profunda de la regulación génica específica de cada célula. [ 17 ]

Métodos

La acetilación de las marcas de histonas se puede detectar de diversas maneras:

1. La secuenciación por inmunoprecipitación de cromatina ( ChIP-sequencing ) mide la cantidad de ADN enriquecido una vez unido a una proteína específica e inmunoprecipitado . Esto permite una buena optimización y se utiliza in vivo para revelar la unión ADN-proteína que ocurre en las células. ChIP-Seq puede utilizarse para identificar y cuantificar diversos fragmentos de ADN para diferentes modificaciones de histonas a lo largo de una región genómica. [ 18 ]

2. La secuenciación de la nucleasa microcócica ( MNase-seq ) se utiliza para investigar regiones a las que se unen nucleosomas bien posicionados. El uso de la enzima nucleasa microcócica se emplea para identificar la posición de los nucleosomas. Se observa que los nucleosomas bien posicionados presentan un enriquecimiento de secuencias. [ 19 ]

3. El ensayo de secuenciación de cromatina accesible a la transposasa ( ATAC-seq ) se utiliza para examinar regiones libres de nucleosomas (cromatina abierta). Utiliza el transposón Tn5 hiperactivo para resaltar la localización de los nucleosomas. [ 20 ] [ 21 ] [ 22 ]

Véase también

Referencias

  1. Huang, Suming; Litt, Michael D.; Ann Blakey, C. (30 de noviembre de 2015). Expresión y regulación epigenética de genes . Elsevier Science. págs. 21–38 . ISBN  978-0-12-799958-6.
  2. Ruthenburg AJ, Li H, Patel DJ, Allis CD (diciembre de 2007). "Interacción multivalente de modificaciones de la cromatina mediante módulos de unión enlazados" . Nature Reviews. Biología Celular Molecular . 8 (12): 983– 94. doi : 10.1038/nrm2298 . PMC 4690530. PMID 18037899 .  
  3. Kouzarides T (febrero de 2007). "Modificaciones de la cromatina y su función" . Cell . 128 (4): 693–705 . doi : 10.1016/j.cell.2007.02.005 . PMID 17320507 . 
  4. "Proteínas histonas y modificaciones" . Epigenie . Consultado el 15 de diciembre de 2019 .
  5. 1 2 3 "Modificación postraduccional H4K91ac - HIstoma" . Archivado del original el 19 de agosto de 2016. Recuperado el 14 de diciembre de 2019 .
  6. ^ De Semir, David; Bezrookove, Vladimir; Nosrati, Mehdi; Dar, Altaf A.; Wu, Clayton; Shen, Julia; Rieken, Christopher; Venkatasubramanian, Meenakshi; Molinero, James R.; Desprez, Pierre-Yves; McAllister, Sean; Soroceanu, Liliana; Debs, Robert J.; Salomonis, Natán; Schadendorf, Dirk; Cleaver, James E.; Kashani-Sabet, Mohammed (2018). "PHIP como diana terapéutica para subtipos de melanoma, cáncer de mama y pulmón negativos para conductores" . Actas de la Academia Nacional de Ciencias . 115 (25): E5766 –E5775. Código Bib : 2018PNAS..115E5766D . doi : 10.1073/ pnas.1804779115 . PMC 6016792. PMID 29866840 .  
  7. Sadoul K, Boyault C, Pabion M, Khochbin S (2008). "Regulación del recambio proteico por acetiltransferasas y desacetilasas" . Biochimie . 90 (2): 306–12 . doi : 10.1016/j.biochi.2007.06.009 . PMID 17681659 . 
  8. Glozak MA, Sengupta N, Zhang X, Seto E (2005). "Acetilación y desacetilación de proteínas no histonas". Gene . 363 : 15–23 . doi : 10.1016/j.gene.2005.09.010 . PMID 16289629 . 
  9. Yang XJ, Seto E (2008). " Acetilación de lisina: comunicación cruzada codificada con otras modificaciones postraduccionales" . Mol. Cell . 31 (4): 449– 61. doi : 10.1016/j.molcel.2008.07.002 . PMC 2551738. PMID 18722172 .  
  10. Eddé B, Denoulet P, de Néchaud B, Koulakoff A, Berwald-Netter Y, Gros F (1989). "Modificaciones postraduccionales de la tubulina en neuronas y astroglias cerebrales de ratón cultivadas". Biol. Cell . 65 (2): 109– 117. doi : 10.1111/j.1768-322x.1989.tb00779.x . PMID 2736326 . 
  11. Maruta H, Greer K, Rosenbaum JL (1986). "La acetilación de la alfa-tubulina y su relación con el ensamblaje y desensamblaje de los microtúbulos" . J. Cell Biol . 103 (2): 571– 579. doi : 10.1083/jcb.103.2.571 . PMC 2113826. PMID 3733880 .  
  12. Jenuwein T, Allis CD (agosto de 2001). "Traduciendo el código de histonas". Science . 293 (5532): 1074– 80. CiteSeerX 10.1.1.453.900 . doi : 10.1126/science.1063127 . PMID 11498575 . S2CID 1883924 .   
  13. Birney E , Stamatoyannopoulos JA , Dutta A , Guigó R, Gingeras TR, Margulies EH, et al. (The ENCODE Project Consortium) (junio de 2007). "Identificación y análisis de elementos funcionales en el 1% del genoma humano por el proyecto piloto ENCODE" . Nature . 447 (7146): 799– 816. Bibcode : 2007Natur.447..799B . doi : 10.1038/nature05874 . PMC 2212820 . PMID 17571346 .   
  14. ^ Filion GJ, van Bemmel JG, Braunschweig U, Talhout W, Kind J, Ward LD, Brugman W, de Castro IJ, Kerkhoven RM, Bussemaker HJ, van Steensel B (octubre de 2010). "El mapeo sistemático de la ubicación de las proteínas revela cinco tipos principales de cromatina en las células de Drosophila" . Celúla . 143 (2): 212– 24. doi : 10.1016/j.cell.2010.09.009 . PMC 3119929 . PMID 20888037 .  
  15. Roy S, Ernst J, Kharchenko PV, Kheradpour P, Negre N, Eaton ML, et al. (Consorcio modENCODE) (diciembre de 2010). " Identificación de elementos funcionales y circuitos reguladores por Drosophila modENCODE" . Science . 330 (6012): 1787–97 . Bibcode : 2010Sci...330.1787R . doi : 10.1126/science.1198374 . PMC 3192495. PMID 21177974 .   
  16. Kharchenko PV, Alekseyenko AA, Schwartz YB, Minoda A, Riddle NC, Ernst J, et al. (marzo de 2011). " Análisis exhaustivo del panorama de la cromatina en Drosophila melanogaster" . Nature . 471 (7339): 480– 5. Bibcode : 2011Natur.471..480K . doi : 10.1038/nature09725 . PMC 3109908. PMID 21179089 .   
  17. Kundaje A, Meuleman W, Ernst J, Bilenky M, Yen A, Heravi-Moussavi A, Kheradpour P, Zhang Z, et al. (Roadmap Epigenomics Consortium) (febrero de 2015). "Análisis integrador de 111 epigenomas humanos de referencia" . Nature . 518 (7539): 317–30 . Bibcode : 2015Natur.518..317. . doi : 10.1038 / nature14248 . PMC 4530010. PMID 25693563 .   
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  21. Schep, Alicia N.; Buenrostro, Jason D.; Denny, Sarah K.; Schwartz, Katja; Sherlock, Gavin; Greenleaf, William J. (2015). "Las huellas dactilares de nucleosomas estructurados permiten el mapeo de alta resolución de la arquitectura de la cromatina dentro de las regiones reguladoras" . Genome Research . 25 (11): 1757– 1770. Bibcode : 2015GenRe..25.1757S . doi : 10.1101/gr.192294.115 . ISSN 1088-9051 . PMC 4617971. PMID 26314830 .   
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