La genética cuantitativa es el estudio de los rasgos cuantitativos , que son fenotipos que varían de forma continua, como la altura o la masa corporal, a diferencia de los fenotipos y productos genéticos que se pueden identificar de forma discreta , como el color de los ojos o la presencia de una determinada sustancia bioquímica.
Mientras que la genética de poblaciones se centra en genes específicos y sus productos metabólicos, la genética cuantitativa se enfoca más en los fenotipos externos y solo ofrece resúmenes de la genética subyacente. Ambas ramas de la genética utilizan las frecuencias de los diferentes alelos de un gen en poblaciones reproductoras (gamodemas) y las combinan con conceptos de la herencia mendeliana simple para analizar los patrones de herencia a lo largo de generaciones y líneas descendientes.
Debido a la distribución continua de valores fenotípicos, la genética cuantitativa debe emplear muchos otros métodos estadísticos (como el tamaño del efecto , la media y la varianza ) para vincular fenotipos (atributos) con genotipos. Algunos fenotipos pueden analizarse como categorías discretas o como fenotipos continuos, dependiendo de la definición de puntos de corte o de la métrica utilizada para cuantificarlos. [ 1 ] : 27–69 El propio Mendel tuvo que discutir este asunto en su famoso artículo, [ 2 ] especialmente con respecto al atributo alto/enano de sus guisantes , que en realidad se derivó agregando un punto de corte a "longitud del tallo". [ 3 ] [ 4 ] El análisis de loci de rasgos cuantitativos , o QTL, [ 5 ] [ 6 ] [ 7 ] es una adición más reciente a la genética cuantitativa, que la vincula más directamente con la genética molecular .
Efectos genéticos
En los organismos diploides , el "valor" genotípico promedio (valor del locus) puede definirse por el "efecto" del alelo junto con un efecto de dominancia , y también por cómo los genes interactúan con genes en otros loci ( epistasis ). El fundador de la genética cuantitativa, Sir Ronald Fisher , percibió gran parte de esto cuando propuso las primeras matemáticas de esta rama de la genética. [ 8 ]

Como estadístico, definió los efectos genéticos como desviaciones de un valor central, lo que permitió el uso de conceptos estadísticos como la media y la varianza, que emplean esta idea. [ 9 ] El valor central que eligió para el gen fue el punto medio entre los dos homocigotos opuestos en un mismo locus. La desviación desde ese punto hacia el genotipo homocigoto "mayor" se denomina " +a "; y, por lo tanto, es " -a " desde ese mismo punto medio hacia el genotipo homocigoto "menor". Este es el efecto "alélico" mencionado anteriormente. La desviación del heterocigoto desde el mismo punto medio se denomina " d ", siendo este el efecto "dominancia" al que se hizo referencia anteriormente. [ 10 ] El diagrama ilustra la idea. Sin embargo, en realidad medimos fenotipos, y la figura también muestra cómo los fenotipos observados se relacionan con los efectos genéticos. Las definiciones formales de estos efectos reconocen este enfoque fenotípico. [ 11 ] [ 12 ] La epistasis se ha abordado estadísticamente como interacción (es decir, inconsistencias), [ 13 ] pero la epigenética sugiere que puede ser necesario un nuevo enfoque.
Si 0 < d < a , la dominancia se considera parcial o incompleta , mientras que d = a indica dominancia completa o clásica . Anteriormente, d > a se conocía como "sobredominancia". [ 14 ]
El atributo de Mendel para los guisantes, "longitud del tallo", nos proporciona un buen ejemplo. [ 3 ] Mendel afirmó que los padres de raza pura altos tenían una longitud de tallo de 6 a 7 pies (183 a 213 cm), con una mediana de 198 cm (= P1). Los padres bajos tenían una longitud de tallo de 0,75 a 1,25 pies (23 a 46 cm), con una mediana redondeada de 34 cm (= P2). Su híbrido tenía una longitud de 6 a 7,5 pies (183 a 229 cm), con una mediana de 206 cm (= F1). La media de P1 y P2 es 116 cm, que es el valor fenotípico del punto medio (mp) de los homocigotos. El efecto alélico ( a ) es [P1-mp] = 82 cm = -[P2-mp]. El efecto de dominancia ( d ) es [F1-mp] = 90 cm. [ 15 ] Este ejemplo histórico ilustra claramente cómo están vinculados los valores del fenotipo y los efectos genéticos.
Frecuencias alélicas y genotípicas

Para obtener medias , varianzas y otros valores estadísticos, se requieren tanto cantidades como sus ocurrencias . Los efectos genéticos (mencionados anteriormente) proporcionan el marco para las cantidades , y las frecuencias de los alelos contrastantes en el conjunto de gametos de fertilización brindan la información sobre las ocurrencias .
Comúnmente, la frecuencia del alelo que causa "más" en el fenotipo (incluida la dominancia) se representa con el símbolo p , mientras que la frecuencia del alelo contrastante es q . Una suposición inicial hecha al establecer el álgebra fue que la población parental era infinita y el apareamiento aleatorio, lo cual se hizo simplemente para facilitar la derivación. El desarrollo matemático posterior también implicó que la distribución de frecuencia dentro del conjunto efectivo de gametos era uniforme: no había perturbaciones locales donde p y q variaran. Observando el análisis diagramático de la reproducción sexual, esto es lo mismo que declarar que p P = p g = p ; y de manera similar para q . [ 14 ] Este sistema de apareamiento, que depende de estas suposiciones, se conoció como panmixia .
La panmixia rara vez ocurre en la naturaleza, [ 16 ] : 152–180 [ 17 ] ya que la distribución de gametos puede estar limitada, por ejemplo, por restricciones de dispersión o por comportamiento, o por muestreo aleatorio (esas perturbaciones locales mencionadas anteriormente). Es bien sabido que hay un gran desperdicio de gametos en la naturaleza, razón por la cual el diagrama representa un conjunto potencial de gametos separado del conjunto real de gametos. Solo este último establece las frecuencias definitivas para los cigotos: este es el verdadero "gamodema" ("gamo" se refiere a los gametos, y "deme" deriva del griego para "población"). Pero, bajo los supuestos de Fisher, el gamodema puede extenderse efectivamente al conjunto potencial de gametos, e incluso a la población base parental (la población "origen"). El muestreo aleatorio que surge cuando se muestrean pequeños conjuntos de gametos "reales" de un gran conjunto de gametos "potencial" se conoce como deriva genética , y se considera posteriormente.
Aunque la panmixia puede no estar muy extendida, su potencial existe, si bien puede ser efímera debido a perturbaciones locales. Se ha demostrado, por ejemplo, que la F2 derivada de la fertilización aleatoria de individuos F1 (una F2 alógama ), tras la hibridación, es el origen de una nueva población potencialmente panmíctica. [ 18 ] [ 19 ] También se ha demostrado que si la fertilización aleatoria panmíctica ocurriera continuamente, mantendría las mismas frecuencias alélicas y genotípicas en cada generación sexual panmíctica sucesiva; este es el equilibrio de Hardy-Weinberg . [ 13 ] : 34–39 [ 20 ] [ 21 ] [ 22 ] [ 23 ] Sin embargo, tan pronto como se iniciara la deriva genética por muestreo aleatorio local de gametos, el equilibrio cesaría.
Fertilización aleatoria
Los gametos masculinos y femeninos dentro del pool de fertilización real se consideran generalmente con las mismas frecuencias para sus alelos correspondientes. (Se han considerado excepciones). Esto significa que cuando p gametos masculinos portadores del alelo A fertilizan aleatoriamente p gametos femeninos portadores de ese mismo alelo, el cigoto resultante tiene el genotipo AA y, bajo fertilización aleatoria, la combinación ocurre con una frecuencia de p x p (= p 2 ). De manera similar, el cigoto aa ocurre con una frecuencia de q 2 . Los heterocigotos ( Aa ) pueden surgir de dos maneras: cuando p gametos masculinos ( alelo A ) fertilizan aleatoriamente q gametos femeninos ( alelo a ), y viceversa . La frecuencia resultante para los cigotos heterocigotos es, por lo tanto, 2pq . [ 13 ] : 32 Nótese que dicha población nunca es más de la mitad heterocigota, este máximo ocurre cuando p = q = 0,5.
En resumen, bajo fertilización aleatoria, las frecuencias del cigoto (genotipo) son la expansión cuadrática de las frecuencias gaméticas (alélicas):(El símbolo "=1" indica que las frecuencias están expresadas en forma de fracción, no de porcentaje; y que no hay omisiones dentro del marco propuesto).
Nótese que "fecundación aleatoria" y "panmixia" no son sinónimos. [ 24 ] [ 25 ]
La investigación de Mendel cruza – un contraste
Los experimentos de Mendel con guisantes se construyeron estableciendo padres de raza pura con fenotipos "opuestos" para cada atributo. [ 3 ] Esto significaba que cada padre opuesto era homocigoto solo para su alelo respectivo. En nuestro ejemplo, "alto vs enano", el padre alto sería el genotipo TT con p = 1 (y q = 0 ); mientras que el padre enano sería el genotipo tt con q = 1 (y p = 0 ). Después del cruzamiento controlado, su híbrido es Tt , con p = q = 1 / 2 . Sin embargo, la frecuencia de este heterocigoto = 1 , porque este es el F1 de un cruzamiento artificial: no ha surgido a través de fertilización aleatoria. [ 26 ] La generación F2 se produjo por autopolinización natural del F1 (con monitoreo contra la contaminación por insectos ), lo que resultó en que se mantuviera p = q = 1 / 2 . Se dice que un F2 de este tipo es "autógamo". Sin embargo, las frecuencias genotípicas (0,25 TT , 0,5 Tt , 0,25 tt ) han surgido a través de un sistema de apareamiento muy diferente de la fertilización aleatoria, y por lo tanto se ha evitado el uso de la expansión cuadrática. Los valores numéricos obtenidos fueron los mismos que para la fertilización aleatoria solo porque este es el caso especial de haber cruzado originalmente padres homocigotos opuestos. [ 27 ] Podemos observar que, debido al dominio de T- [frecuencia (0,25 + 0,5)] sobre tt [frecuencia 0,25], todavía se obtiene la proporción 3:1.
Un cruce como el de Mendel, donde progenitores opuestos de raza pura (en su mayoría homocigotos) se cruzan de manera controlada para producir una F1, es un caso especial de estructura híbrida. La F1 a menudo se considera "completamente heterocigota" para el gen en cuestión. Sin embargo, esto es una simplificación excesiva y no se aplica en general, por ejemplo, cuando los progenitores individuales no son homocigotos o cuando las poblaciones se hibridan entre sí para formar enjambres híbridos . [ 26 ] Las propiedades generales de los híbridos intraespecíficos (F1) y F2 (tanto "autógamos" como "alógamos") se consideran en una sección posterior.
Autofecundación: una alternativa
Habiendo observado que el guisante se autopoliniza de forma natural, no podemos seguir utilizándolo como ejemplo para ilustrar las propiedades de la fecundación aleatoria. La autofecundación es una alternativa importante a la fecundación aleatoria, especialmente entre las plantas. La mayoría de los cereales del mundo se autopolinizan de forma natural (arroz, trigo, cebada, por ejemplo), al igual que las legumbres. Considerando los millones de individuos de cada uno de ellos en la Tierra en cualquier momento, es evidente que la autofecundación es al menos tan significativa como la fecundación aleatoria. La autofecundación es la forma más intensa de endogamia , que surge cuando existe una independencia restringida en los orígenes genéticos de los gametos. Dicha reducción de la independencia se produce si los progenitores ya están emparentados, o debido a la deriva genética u otras restricciones espaciales en la dispersión de los gametos. El análisis de trayectorias demuestra que ambos fenómenos son prácticamente lo mismo. [ 28 ] [ 29 ] Partiendo de este trasfondo, el coeficiente de endogamia (a menudo simbolizado como F o f ) cuantifica el efecto de la endogamia de cualquier causa. Hay varias definiciones formales de f , y algunas de ellas se consideran en secciones posteriores. Por el momento, tenga en cuenta que para una especie autofecundada a largo plazo f = 1 . Sin embargo, las poblaciones autofecundadas naturales no son " líneas puras " únicas, sino mezclas de dichas líneas. Esto se hace particularmente obvio cuando se considera más de un gen a la vez. Por lo tanto, las frecuencias alélicas ( p y q ) distintas de 1 o 0 siguen siendo relevantes en estos casos (consulte la sección de Mendel Cross). Sin embargo, las frecuencias genotípicas toman una forma diferente.
En general, las frecuencias genotípicas se convierten enpara AA ypara Aa ypara aa . [ 13 ] : 65
Nótese que la frecuencia del heterocigoto disminuye en proporción a f . Cuando f = 1 , estas tres frecuencias se convierten respectivamente en p , 0 y q. Por el contrario, cuando f = 0 , se reducen a la expansión cuadrática de fertilización aleatoria mostrada anteriormente.
Media poblacional
La media poblacional desplaza el punto de referencia central del punto medio homocigoto ( mp ) a la media de una población de reproducción sexual. Esto es importante no solo para reubicar el foco en el mundo natural, sino también para utilizar una medida de tendencia central empleada en estadística/biometría. En particular, el cuadrado de esta media es el factor de corrección, que se utiliza posteriormente para obtener las varianzas genotípicas. [ 9 ]

Para cada genotipo, su efecto alélico se multiplica por su frecuencia genotípica; y los productos se acumulan para todos los genotipos del modelo. Generalmente, se realiza una simplificación algebraica para obtener un resultado conciso.
La media después de la fertilización aleatoria
La contribución de AA es, el de Aa esy el de aa esAl agrupar los dos términos y acumularlos todos, el resultado es:La simplificación se logra al observar quey al recordar que, reduciendo así el término de la derecha a.
El resultado conciso es, por lo tanto,. [ 14 ] : 110
Esto define la media poblacional como un "desplazamiento" respecto al punto medio homocigoto (recordemos que a y d se definen como desviaciones respecto a ese punto medio). La figura muestra G para todos los valores de p y para varios valores de d , incluyendo un caso de ligera sobredominancia. Nótese que G suele ser negativo, lo que subraya que es en sí mismo una desviación (respecto a mp ).
Finalmente, para obtener la media poblacional real en el "espacio fenotípico", se suma el valor del punto medio a este desplazamiento:.
Un ejemplo surge de los datos sobre la longitud de la mazorca en el maíz. [ 30 ] : 103 Suponiendo por ahora que solo está representado un gen, a = 5,45 cm, d = 0,12 cm [prácticamente "0", en realidad], mp = 12,05 cm. Suponiendo además que p = 0,6 y q = 0,4 en esta población de ejemplo, entonces:
G = 5,45 (0,6 − 0,4) + (0,48)0,12 = 1,15 cm (redondeado); y
P = 1,15 + 12,05 = 13,20 cm (redondeado).
La media después de la autofecundación a largo plazo
La contribución de AA es, mientras que el de aa es[Véase arriba para las frecuencias.] Al agrupar estos dos términos, se obtiene un resultado final inmediatamente muy simple:
. Como antes,.
A menudo, "G (f=1) " se abrevia como "G 1 ".
Los guisantes de Mendel pueden proporcionarnos los efectos alélicos y el punto medio (véase anteriormente); y una población mixta autopolinizada con p = 0,6 y q = 0,4 proporciona ejemplos de frecuencias. Por lo tanto:
G (f=1) = 82 (0,6 − 0,04) = 59,6 cm (redondeado); y
P (f=1) = 59,6 + 116 = 175,6 cm (redondeado).
La media – fertilización generalizada
Una fórmula general incorpora el coeficiente de consanguinidad f y puede adaptarse a cualquier situación. El procedimiento es exactamente el mismo que antes, utilizando las frecuencias genotípicas ponderadas dadas anteriormente. Tras la traducción a nuestros símbolos y una posterior reorganización: [ 13 ] : 77–78
Aquí, G 0 es G , que se dio anteriormente. (A menudo, cuando se trata de endogamia, se prefiere "G 0 " a "G").
Suponiendo que el ejemplo del maíz [dado anteriormente] se hubiera limitado a un prado ribereño estrecho y hubiera tenido endogamia parcial hasta el grado de f = 0,25 , entonces, utilizando la tercera versión (arriba) de G f :
G 0,25 = 1,15 − 0,25 (0,48) 0,12 = 1,136 cm (redondeado), con P 0,25 = 13,194 cm (redondeado).
En este ejemplo, la endogamia apenas tiene efecto, debido a la práctica ausencia de dominancia en este atributo ( d → 0). El análisis de las tres versiones de G f revela que esto provocaría un cambio mínimo en la media poblacional. Sin embargo, donde la dominancia fuera notable, el cambio sería considerable.
Deriva genética
La deriva genética se introdujo al discutir la probabilidad de que la panmixia existiera ampliamente como un patrón de fertilización natural. (Véase la sección sobre frecuencias alélicas y genotípicas). Aquí se discute con más detalle el muestreo de gametos del gamodema potencial . El muestreo implica una fertilización aleatoria entre pares de gametos aleatorios, cada uno de los cuales puede contener un alelo A o un alelo a . Por lo tanto, el muestreo es un muestreo binomial. [ 13 ] : 382–395 [ 14 ] : 49–63 [ 31 ] : 35 [ 32 ] : 55 Cada "paquete" de muestreo involucra 2N alelos y produce N cigotos (una "progenie" o una "línea") como resultado. Durante el transcurso del período reproductivo, este muestreo se repite una y otra vez, de modo que el resultado final es una mezcla de progenies de muestra. El resultado es una fertilización aleatoria dispersa.Estos acontecimientos, y el resultado final en su conjunto, se examinan aquí con un ejemplo ilustrativo.
Las frecuencias alélicas "base" del ejemplo son las del gamodema potencial : la frecuencia de A es p g = 0,75 , mientras que la frecuencia de a es q g = 0,25 . [ Etiqueta blanca " 1 " en el diagrama]. Cinco gamodemas reales de ejemplo se muestrean binomialmente a partir de esta base ( s = el número de muestras = 5), y cada muestra se designa con un "índice" k : con k = 1 ... s secuencialmente. (Estos son los "paquetes" de muestreo a los que se hace referencia en el párrafo anterior). El número de gametos involucrados en la fertilización varía de una muestra a otra, y se da como 2N k [en la etiqueta blanca " 2 " en el diagrama]. El número total (Σ) de gametos muestreados en general es 52 [ etiqueta blanca " 3 " en el diagrama]. Debido a que cada muestra tiene su propio tamaño, se necesitan ponderaciones para obtener promedios (y otras estadísticas) al obtener los resultados generales. Estas sony se indican con la etiqueta blanca " 4 " en el diagrama.

Los gamodemas de muestra: deriva genética
Tras completar estos cinco eventos de muestreo binomial, los gamodemas reales resultantes contenían frecuencias alélicas diferentes ( p k y q k ). [Estos se muestran en la etiqueta blanca " 5 " del diagrama]. Este resultado es, de hecho, la deriva genética en sí misma. Nótese que dos muestras (k = 1 y 5) tienen las mismas frecuencias que el gamodema base ( potencial ). Otra (k = 3) tiene p y q invertidos. La muestra (k = 2) es un caso extremo, con p k = 0,9 y q k = 0,1 ; mientras que la muestra restante (k = 4) se encuentra en el rango medio de sus frecuencias alélicas. Todos estos resultados surgieron únicamente por casualidad, mediante el muestreo binomial. Sin embargo, al producirse, establecieron todas las propiedades posteriores de la progenie.
Debido a que el muestreo implica azar, las probabilidades ( ∫ k ) de obtener cada una de estas muestras se vuelven de interés. Estas probabilidades binomiales dependen de las frecuencias iniciales ( p g y q g ) y del tamaño de la muestra ( 2N k ). Son tediosas de obtener, [ 13 ] : 382–395 [ 32 ] : 55 pero son de considerable interés. [Véase la etiqueta blanca " 6 " en el diagrama.] Las dos muestras (k = 1, 5), con las mismas frecuencias alélicas que en el potencial gamodema , tenían mayores "posibilidades" de ocurrir que las otras muestras. Sin embargo, sus probabilidades binomiales diferían debido a sus diferentes tamaños de muestra (2N k ). La muestra de "inversión" (k = 3) tenía una probabilidad muy baja de ocurrir, lo que quizás confirma lo que podría esperarse. Sin embargo, el gamodema de frecuencia alélica "extrema" (k = 2) no era "raro"; y la muestra "intermedia" (k=4) fue poco frecuente. Estas mismas probabilidades también se aplican a la descendencia de estas fecundaciones.
Aquí podemos comenzar con un resumen . Las frecuencias alélicas generales en el conjunto de la descendencia se obtienen mediante promedios ponderados de las frecuencias correspondientes de las muestras individuales. Es decir:y(Nótese que k se reemplaza por • para el resultado general, una práctica común). [ 9 ] Los resultados del ejemplo son p • = 0,631 y q • = 0,369 [ etiqueta negra " 5 " en el diagrama]. Estos valores son bastante diferentes a los iniciales ( p g y q g ) [ etiqueta blanca " 1 "]. Las frecuencias alélicas de la muestra también tienen varianza, así como un promedio. Esto se ha obtenido utilizando el método de suma de cuadrados (SS) [ 33 ] [Véase a la derecha de la etiqueta negra " 5 " en el diagrama]. [Se discute más sobre esta varianza en la sección siguiente sobre Deriva genética extensa].
Las líneas de descendencia – dispersión
Las frecuencias genotípicas de las cinco progenies de muestra se obtienen a partir de la expansión cuadrática habitual de sus respectivas frecuencias alélicas ( fecundación aleatoria ). Los resultados se dan en la etiqueta blanca " 7 " del diagrama para los homocigotos, y en la etiqueta blanca " 8 " para los heterocigotos. El reordenamiento de esta manera prepara el camino para monitorear los niveles de endogamia. Esto se puede hacer examinando el nivel de homocigosis total [( p2k + q2k ) = ( 1 − 2pk qk)], o examinando el nivel de heterocigosis (2pk qk), ya que son complementarios. [34] Nótese que las muestras k = 1 , 3 , 5 tenían todas el mismo nivel de heterocigosis, a pesar de que una era la "imagen especular" de las otras con respecto a las frecuencias alélicas. El caso de frecuencia alélica "extrema" (k= 2 ) presentó la mayor homocigosidad (menor heterocigosidad) de todas las muestras. El caso "intermedio" (k= 4 ) presentó la menor homocigosidad (mayor heterocigosidad): de hecho, ambos fueron iguales, con un valor de 0,50.
El resumen general puede continuar obteniendo el promedio ponderado de las frecuencias genotípicas respectivas para el conjunto de la descendencia. Así, para AA , es, para Aa , esy para aa , esLos resultados de ejemplo se muestran en la etiqueta negra " 7 " para los homocigotos y en la etiqueta negra " 8 " para los heterocigotos. Cabe destacar que la media de heterocigosidad es 0,3588 , valor que se utiliza en la siguiente sección para analizar la endogamia resultante de esta deriva genética.
El siguiente foco de interés es la dispersión misma, que se refiere a la "separación" de las medias poblacionales de las progenies . Estas se obtienen como[véase la sección sobre la media poblacional], para cada progenie de muestra a su vez, utilizando los efectos genéticos de ejemplo dados en la etiqueta blanca " 9 " en el diagrama. Luego, cadaTambién se obtiene [en la etiqueta blanca " 10 " en el diagrama]. Nótese que la línea "mejor" (k = 2) tenía la frecuencia alélica más alta para el alelo "más" ( A ) (también tenía el nivel más alto de homocigosidad). La peor progenie (k = 3) tenía la frecuencia más alta para el alelo "menos" ( a ), lo que explicaba su bajo rendimiento. Esta línea "mala" era menos homocigótica que la línea "mejor"; y compartía el mismo nivel de homocigosidad, de hecho, que las dos segundas mejores líneas (k = 1, 5). La línea de progenie con los alelos "más" y "menos" presentes con igual frecuencia (k = 4) tenía una media por debajo del promedio general (véase el siguiente párrafo) y tenía el nivel más bajo de homocigosidad. Estos resultados revelan que los alelos más prevalentes en el "acervo genético" (también llamado " germoplasma ") determinan el rendimiento, no el nivel de homocigosidad en sí. El muestreo binomial por sí solo produce esta dispersión.
Ahora se puede concluir el resumen general obteniendoyEl resultado de ejemplo para P • es 36,94 ( etiqueta negra " 10 " en el diagrama). Este último se utiliza para cuantificar la depresión por endogamia en general, a partir del muestreo de gametos. [Véase la siguiente sección.] Sin embargo, recordemos que ya se han identificado algunas medias de progenie "no deprimidas" (k = 1, 2, 5). Este es un enigma de la endogamia: si bien puede haber "depresión" en general, suele haber líneas superiores entre los muestreos de gametos.
El panmíctico post-dispersión equivalente: endogamia
En el resumen general se incluyeron las frecuencias alélicas promedio en la mezcla de líneas de progenie ( p • y q • ). Estas ahora se pueden usar para construir un equivalente panmíctico hipotético. [ 13 ] : 382–395 [ 14 ] : 49–63 [ 31 ] : 35 Esto puede considerarse como una "referencia" para evaluar los cambios producidos por el muestreo de gametos. El ejemplo agrega dicho panmíctico a la derecha del Diagrama. La frecuencia de AA es, por lo tanto, (p • ) 2 = 0,3979. Esto es menor que el encontrado en el lote disperso (0,4513 en la etiqueta negra " 7 "). De manera similar, para aa , (q • ) 2 = 0,1303, nuevamente menor que el equivalente en el lote de progenies (0,1898). Claramente, la deriva genética ha aumentado el nivel general de homocigosis en la cantidad (0,6411 − 0,5342) = 0,1069. En un enfoque complementario, se podría usar la heterocigosidad en su lugar. El equivalente panmíctico para Aa es 2 p • q • = 0,4658, que es más alto que el de la muestra total (0,3588) [ etiqueta negra " 8 "]. El muestreo ha hecho que la heterocigosidad disminuya en 0,1070, que difiere trivialmente de la estimación anterior debido a errores de redondeo.
El coeficiente de endogamia ( f ) se introdujo en la sección inicial sobre autofecundación. Aquí, se considera una definición formal del mismo: f es la probabilidad de que dos alelos "iguales" (es decir, A y A , o a y a ), que se fecundan juntos sean de origen ancestral común, o (más formalmente) f es la probabilidad de que dos alelos homólogos sean autozygotos. [ 14 ] [ 29 ] Consideremos cualquier gameto aleatorio en el potencial gamodema que tiene su pareja de singamia restringida por muestreo binomial. La probabilidad de que ese segundo gameto sea homólogo autozygoto al primero es 1/(2N) , el recíproco del tamaño del gamodema. Para las cinco progenies de ejemplo, estas cantidades son 0,1, 0,0833, 0,1, 0,0833 y 0,125 respectivamente, y su promedio ponderado es 0,0961 . Este es el coeficiente de endogamia del conjunto de progenies del ejemplo, siempre que no esté sesgado con respecto a la distribución binomial completa . Sin embargo, es probable que un ejemplo basado en s = 5 esté sesgado cuando se compara con una distribución binomial completa apropiada basada en el número de muestra ( s ) que tiende a infinito ( s → ∞ ). Otra definición derivada de f para la distribución completa es que f también es igual al aumento en la homocigosidad, que es igual a la disminución en la heterocigosidad. [ 35 ] Para el ejemplo, estos cambios de frecuencia son 0,1069 y 0,1070 , respectivamente. Este resultado es diferente al anterior, lo que indica que hay un sesgo con respecto a la distribución subyacente completa en el ejemplo. Para el ejemplo en sí , estos últimos valores son los mejores para usar, a saber, f • = 0,10695 .
La media poblacional del panmíctico equivalente se encuentra como [a (p • -q • ) + 2 p • q • d] + mp . Usando los efectos genéticos de ejemplo ( etiqueta blanca " 9 " en el diagrama), esta media es37,87. La media equivalente en la masa dispersa es 36,94 ( etiqueta negra " 10 "), la cual está disminuida en 0,93 . Esta es la depresión por endogamia debida a esta deriva genética. Sin embargo, como se mencionó anteriormente, tres progenies no se vieron afectadas (k = 1, 2, 5) y presentaron medias incluso mayores que la del equivalente panmíctico. Estas son las líneas que un fitomejorador busca en un programa de selección de líneas. [ 36 ]
Muestreo binomial extenso: ¿se restablece la panmixia?
Si el número de muestras binomiales es grande ( s → ∞ ), entonces p • → p g y q • → q g . Podría preguntarse si la panmixia reaparecería efectivamente en estas circunstancias. Sin embargo, el muestreo de frecuencias alélicas aún se ha producido , con el resultado de que σ 2 p, q ≠ 0. [ 37 ] De hecho, cuando s → ∞ , el , que es la varianza de toda la distribución binomial . [ 13 ] : 382–395 [ 14 ] : 49–63 Además, las "ecuaciones de Wahlund" muestran que las frecuencias de homocigotos en masa de la progenie se pueden obtener como las sumas de sus respectivos valores promedio ( p 2 • o q 2 • ) más σ 2 p, q . [ 13 ] : 382–395 De igual modo, la frecuencia de heterocigotos en masa es (2 p • q • ) menos el doble de σ 2 p, q . La varianza que surge del muestreo binomial está notablemente presente. Por lo tanto, incluso cuando s → ∞ , las frecuencias de genotipos en masa de la progenie aún revelan una mayor homocigosis y una menor heterocigosis , todavía hay dispersión de las medias de la progenie y todavía endogamia y depresión por endogamia . Es decir, la panmixia no se recupera una vez perdida debido a la deriva genética (muestreo binomial). Sin embargo, una nueva panmixia potencial puede iniciarse mediante una F2 alógama tras la hibridación. [ 38 ]
Deriva genética continua: mayor dispersión y endogamia.
En la discusión previa sobre la deriva genética se examinó un solo ciclo (generación) del proceso. Cuando el muestreo continúa a lo largo de generaciones sucesivas, se producen cambios notables en σ²p , q y f . Además, se necesita otro "índice" para llevar la cuenta del "tiempo": t = 1 ... y, donde y = el número de "años" (generaciones) considerados. La metodología suele consistir en sumar el incremento binomial actual ( Δ = " de novo ") a lo ocurrido previamente. [ 13 ] Aquí se examina la distribución binomial completa . (Un ejemplo abreviado no aporta ningún beneficio adicional).
Dispersión a través de σ 2 p,q
Anteriormente se observó que esta varianza (σ 2 p,q [ 37 ] ) era:
Con la extensión a lo largo del tiempo, esto también es el resultado del primer ciclo, y así es(para abreviar). En el ciclo 2, esta varianza se genera una vez más, esta vez convirtiéndose en la varianza de novo ()—y se acumula a lo que ya estaba presente—la varianza "arrastrada". La varianza del segundo ciclo () es la suma ponderada de estos dos componentes, siendo los pesos los siguientes:para el de novo y =para el "arrastre".
De este modo,
La extensión para generalizar a cualquier tiempo t , después de una considerable simplificación, se convierte en: [ 13 ] : 328 -
Debido a que fue esta variación en las frecuencias alélicas la que causó la "separación" de las medias de las progenies ( dispersión ), el cambio en σ 2 t a lo largo de las generaciones indica el cambio en el nivel de dispersión .
Dispersión a través de f
El método para examinar el coeficiente de endogamia es similar al utilizado para σ 2 p,q . Se utilizan los mismos pesos que antes respectivamente para de novo f ( Δ f ) [recordemos que esto es 1/(2N) ] y arrastre f . Por lo tanto,, que es similar a la ecuación (1) de la subsección anterior.

En general, después de la reorganización, [ 13 ]Los gráficos de la izquierda muestran los niveles de endogamia a lo largo de veinte generaciones, derivados de la deriva genética para diferentes tamaños reales de gamodema (2N).
Otras reordenaciones de esta ecuación general revelan algunas relaciones interesantes.
(A) Después de algunas simplificaciones, [ 13 ]. El lado izquierdo es la diferencia entre los niveles de endogamia actuales y anteriores: el cambio en la endogamia ( δf t ). Nótese que este cambio en la endogamia ( δf t ) es igual a la endogamia de novo ( Δf ) solo para el primer ciclo, cuando f t-1 es cero .
(B) Un elemento a destacar es el (1-f t-1 ) , que es un "índice de no endogamia ". Se conoce como índice panmíctico . [ 13 ] [ 14 ].
(C) Surgen otras relaciones útiles que involucran el índice panmíctico . [ 13 ] [ 14 ]. (D) Surge un vínculo clave entre σ 2 p,q y f . En primer lugar... [ 13 ] En segundo lugar, suponiendo que f 0 = 0 , el lado derecho de esta ecuación se reduce a la sección dentro de los corchetes de la ecuación (2) al final de la última subsección. Es decir, si inicialmente no hay endogamia, ¡ Además, si esto se reorganiza,Es decir, cuando la endogamia inicial es cero, los dos puntos de vista principales del muestreo binomial de gametos (deriva genética) son directamente interconvertibles.
Autofecundación dentro de la fertilización aleatoria

Es fácil pasar por alto que la fertilización aleatoria incluye la autofecundación. Sewall Wright demostró que una proporción 1/N de las fertilizaciones aleatorias es en realidad autofecundación., siendo el resto (N-1)/N una fertilización cruzadaTras el análisis de trayectorias y la simplificación, se llegó a la siguiente nueva visión de la endogamia por fertilización aleatoria :. [ 29 ] [ 39 ] Tras una reorganización adicional, se confirmaron los resultados anteriores del muestreo binomial, junto con algunas nuevas disposiciones. Dos de ellas fueron potencialmente muy útiles, a saber: (A); y (B).
El reconocimiento de que la autofecundación puede ser intrínsecamente parte de la fecundación aleatoria plantea algunos problemas sobre el uso del coeficiente de endogamia de fecundación aleatoria anterior . Claramente, entonces, es inapropiado para cualquier especie incapaz de autofecundarse , lo que incluye plantas con mecanismos de autoincompatibilidad, plantas dioicas y animales bisexuales . La ecuación de Wright se modificó posteriormente para proporcionar una versión de fecundación aleatoria que involucraba solo fecundación cruzada sin autofecundación . La proporción 1/N anteriormente debida a la autofecundación ahora define la endogamia por deriva genética arrastrada del ciclo anterior. La nueva versión es: [ 13 ] : 166.
Los gráficos de la derecha muestran las diferencias entre la fertilización aleatoria estándar (RF ) y la fertilización aleatoria ajustada para la "fertilización cruzada únicamente" (CF) . Como se puede observar, el problema no es trivial para tamaños de muestra de gamodema pequeños.
"Panmixia" no es sinónimo de "fecundación aleatoria" [ 24 ] , ni "fecundación aleatoria" es sinónimo de " fecundación cruzada " [ 40 ] .
Homocigosidad y heterocigosidad
En la subsección sobre "Los gametomemos de muestra - Deriva genética", se realizó una serie de muestreos de gametos, cuyo resultado fue un aumento de la homocigosidad a expensas de la heterocigosidad. Desde este punto de vista, el aumento de la homocigosidad se debió a los muestreos de gametos. Los niveles de homocigosidad también pueden considerarse según si los homocigotos surgieron de forma alozigótica o autozygótica. Recordemos que los alelos autozygóticos tienen el mismo origen alélico, cuya probabilidad (frecuencia) es el coeficiente de endogamia ( f ) por definición. La proporción que surge de forma alozigótica es, por lo tanto, ( 1-f) . Para los gametos portadores de A , que están presentes con una frecuencia general de p , la frecuencia general de los que son autozygóticos es, por lo tanto , ( fp ). De manera similar, para los gametos portadores de a , la frecuencia autozygótica es ( fq ). [ 41 ] Estos dos puntos de vista sobre las frecuencias genotípicas deben conectarse para establecer coherencia.
Siguiendo en primer lugar el punto de vista auto/alo , consideremos el componente alocigoto . Este ocurre con una frecuencia de (1-f) , y los alelos se unen según la expansión cuadrática de la fertilización aleatoria . Por lo tanto: Consideremos ahora el componente autozygote . Como estos alelos son autozygotes , son efectivamente autofecundaciones y producen genotipos AA o aa , pero no heterocigotos. Por lo tanto, producenhomocigotos "AA" máshomocigotos "aa" . La suma de estos dos componentes da como resultado: para el homocigoto AA ;para el homocigoto aa ; ypara el heterocigoto Aa . [ 13 ] : 65 [ 14 ] Esta es la misma ecuación que la presentada anteriormente en la sección sobre "Autofecundación: una alternativa". La razón de la disminución de la heterocigosidad se aclara aquí. Los heterocigotos solo pueden surgir del componente alocigoto, y su frecuencia en el conjunto de la muestra es solo (1-f) : por lo tanto, este también debe ser el factor que controla la frecuencia de los heterocigotos.
En segundo lugar, se reexamina el punto de vista del muestreo . Anteriormente, se observó que la disminución de heterocigotos eraEsta disminución se distribuye por igual entre cada homocigoto y se suma a sus expectativas básicas de fertilización aleatoria . Por lo tanto, las frecuencias genotípicas son:para el homocigoto "AA" ;para el homocigoto "aa" ; ypara el heterocigoto.
En tercer lugar, es necesario establecer la coherencia entre los dos puntos de vista anteriores. Resulta evidente de inmediato [a partir de las ecuaciones correspondientes anteriores] que la frecuencia de heterocigotos es la misma en ambos puntos de vista. Sin embargo, un resultado tan directo no es inmediatamente evidente para los homocigotos. Comencemos por considerar la ecuación final del homocigoto AA en el párrafo anterior sobre auto/allo :Expande los paréntesis y, a continuación, agrupa [dentro del resultante] los dos nuevos términos que contienen el factor común f . El resultado es:A continuación, para el paréntesis " p 2 0 ", se sustituye a (1-q) por a p , obteniéndose como resultado. Después de esa sustitución, es cuestión sencilla de multiplicar, simplificar y prestar atención a los signos. El resultado final es, que es exactamente el resultado para AA en el párrafo de muestreo . Por lo tanto, los dos puntos de vista son consistentes para el homocigoto AA . De manera similar, también se puede demostrar la consistencia de los puntos de vista aa . Los dos puntos de vista son consistentes para todas las clases de genotipos.
Principios ampliados
Otros patrones de fertilización

En secciones anteriores, se ha considerado exhaustivamente la fertilización aleatoria dispersiva ( deriva genética ), y se han examinado la autofecundación y la hibridación en diversos grados. El diagrama de la izquierda muestra los dos primeros, junto con otro patrón "espacialmente basado": islas . Este es un patrón de fertilización aleatoria que presenta gamodemas dispersos , con la adición de "superposiciones" en las que ocurre fertilización aleatoria no dispersiva . Con el patrón de islas , los tamaños individuales de los gamodemas ( 2N ) son observables, y las superposiciones ( m ) son mínimas. Esta es una de las posibilidades de Sewall Wright. [ 39 ] Además de los patrones de fertilización "espacialmente" basados, hay otros basados en criterios "fenotípicos" o de "relación". Las bases fenotípicas incluyen la fertilización asociativa (entre fenotipos similares) y la fertilización disasortativa (entre fenotipos opuestos). Los patrones de parentesco incluyen el cruzamiento entre hermanos , el cruzamiento entre primos y el retrocruzamiento , y se analizan en una sección aparte. La autofecundación puede considerarse tanto desde una perspectiva espacial como relacional.
"Islas" fertilización aleatoria
La población reproductora consta de s pequeños gamodemas de fertilización aleatoria dispersos de tamaño de muestra( k = 1 ... s ) con " superposiciones " de proporciónen la que ocurre una fertilización aleatoria no dispersiva . La proporción dispersiva es, por lo tanto,. La población total consiste en promedios ponderados de tamaños de muestra, frecuencias de alelos y genotipos y medias de la progenie, como se hizo para la deriva genética en una sección anterior. Sin embargo, el tamaño de cada muestra de gametos se reduce para permitir las superposiciones , encontrando así unaeficaz para.

Para mayor brevedad, el argumento continúa omitiendo los subíndices. Recordemos queesen general. [Aquí y en adelante, el 2N se refiere al tamaño de muestra definido previamente , no a ninguna versión "ajustada para islas".]
Después de la simplificación, [ 39 ] Nótese que cuando m = 0 esto se reduce al Δ f anterior . El recíproco de esto proporciona una estimación de la "eficaz para", mencionado anteriormente.
Este Δf también se sustituye en el coeficiente de consanguinidad anterior para obtener [ 39 ].donde t es el índice a lo largo de las generaciones, como antes.
La proporción de solapamiento efectiva también se puede obtener, [ 39 ] como
Los gráficos de la derecha muestran la endogamia para un tamaño de gamodema de 2N = 50 para la fertilización aleatoria dispersa ordinaria (RF) (m = 0) , y para cuatro niveles de solapamiento (m = 0,0625, 0,125, 0,25, 0,5) de la fertilización aleatoria de islas . De hecho, se ha producido una reducción en la endogamia resultante de la fertilización aleatoria no dispersa en los solapamientos. Esto es particularmente notable cuando m → 0,50 . Sewall Wright sugirió que este valor debería ser el límite para el uso de este enfoque. [ 39 ]
Recombinación de alelos – sustitución de alelos
El modelo genético examina la vía de la herencia desde el punto de vista de las "entradas" (alelos/gametos) y las "salidas" (genotipos/cigotos), siendo la fecundación el "proceso" que convierte una en la otra. Un punto de vista alternativo se centra en el "proceso" en sí mismo y considera que los genotipos del cigoto surgen de la recombinación de alelos. En particular, considera los resultados como si un alelo hubiera "sustituido" al otro durante la recombinación, junto con un residuo que se desvía de esta visión. Esto formó parte integral del método de Fisher, [ 8 ] además de su uso de frecuencias y efectos para generar sus estadísticas genéticas. [ 14 ] A continuación se presenta una derivación discursiva de la alternativa de sustitución de alelos . [ 14 ] : 113

Supongamos que la fertilización aleatoria habitual de gametos en un gamodema "base" —compuesto por p gametos ( A ) y q gametos ( a )— se reemplaza por una fertilización con una "inundación" de gametos que contienen un único alelo ( A o a , pero no ambos). Los resultados cigóticos pueden interpretarse como la sustitución del alelo alternativo en el gamodema "base" por el alelo presente en la "inundación". El diagrama facilita la comprensión de este punto de vista: la parte superior muestra una sustitución de A , mientras que la parte inferior muestra una sustitución de a . (El "alelo RF" del diagrama es el alelo presente en el gamodema "base").
Consideremos primero la parte superior. Debido a que la base A está presente con una frecuencia de p , el sustituto A la fertiliza con una frecuencia de p, lo que resulta en un cigoto AA con un efecto alélico de a . Su contribución al resultado, por lo tanto, es el producto. De manera similar, cuando el sustituto fertiliza la base a (resultando en Aa con una frecuencia de q y un efecto heterocigoto de d ), la contribución esPor lo tanto , el resultado global de la sustitución por A es:. Ahora esto se orienta hacia la media poblacional [véase la sección anterior] expresándolo como una desviación de esa media :
Después de algunas simplificaciones algebraicas, esto se convierte en:- el efecto de sustitución de A.
Se puede aplicar un razonamiento paralelo a la parte inferior del diagrama, teniendo cuidado con las diferencias en las frecuencias y los efectos genéticos. El resultado es el efecto de sustitución de a , que es El factor común dentro de los corchetes es el efecto promedio de sustitución de alelos , [ 14 ] : 113 y es También se puede derivar de una manera más directa, pero el resultado es el mismo. [ 42 ]
En las secciones siguientes, estos efectos de sustitución ayudan a definir los genotipos del modelo genético como una partición predicha por estos nuevos efectos ( expectativas de sustitución ) y un residuo ( desviaciones de sustitución ) entre estas expectativas y los efectos previos del modelo genético. Las expectativas también se denominan valores genéticos y las desviaciones, desviaciones de dominancia .
En última instancia, la varianza que surge de las expectativas de sustitución se convierte en la llamada varianza genética aditiva (σ²A ) [ 14 ] ( también la varianza génica [ 43 ] ), mientras que la que surge de las desviaciones de sustitución se convierte en la llamada varianza de dominancia (σ²D ) . Es notable que ninguno de estos términos refleja el verdadero significado de estas varianzas. La "varianza génica" es menos dudosa que la varianza genética aditiva y está más en línea con el nombre que Fisher le dio a esta partición. [ 8 ] [ 31 ] : 33 Un nombre menos engañoso para la varianza de las desviaciones de dominancia es la "varianza de cuasi-dominancia" [véanse las secciones siguientes para una discusión más detallada]. Estos últimos términos son los preferidos aquí.
Efectos genéticos redefinidos
Los efectos del modelo genético ( a , d y -a ) son importantes pronto en la derivación de las desviaciones de la sustitución , que se discutieron por primera vez en la sección anterior de Sustitución de Alelos . Sin embargo, es necesario redefinirlos antes de que sean útiles en ese ejercicio. Primero, es necesario recentralizarlos en torno a la media poblacional ( G ), y segundo, es necesario reorganizarlos como funciones de β , el efecto promedio de sustitución de alelos .
Consideremos primero la recentralización. El efecto recentralizado para AA es a• = a - G que, tras simplificar, se convierte en a• = 2 q (a- p d) . El efecto similar para Aa es d• = d - G = a( q - p ) + d(1-2 pq ) , tras simplificar. Finalmente, el efecto recentralizado para aa es (-a)• = -2 p (a+ q d) . [ 14 ] : 116–119
En segundo lugar, consideremos la reorganización de estos efectos recentralizados como funciones de β . Recordando de la sección "Sustitución de alelos" que β = [a + (qp)d], la reorganización da a = [β - (qp)d] . Después de sustituir esto por a en a• y simplificar, la versión final se convierte en a•• = 2q(β-qd) . De manera similar, d• se convierte en d•• = β(qp) + 2pqd ; y (-a)• se convierte en (-a)•• = -2p(β+pd) . [ 14 ] : 118
Sustitución de genotipos: expectativas y desviaciones
Los genotipos del cigoto son el objetivo de toda esta preparación. El genotipo homocigoto AA es la unión de dos efectos de sustitución de A , uno de cada sexo. Por lo tanto, su expectativa de sustitución es β AA = 2β A = 2 q β (véanse las secciones anteriores). De manera similar, la expectativa de sustitución de Aa es β Aa = β A + β a = ( q - p )β ; y para aa , β aa = 2β a = -2 p β . Estas expectativas de sustitución de los genotipos también se denominan valores genéticos . [ 14 ] : 114–116
Las desviaciones de sustitución son las diferencias entre estas expectativas y los efectos genéticos después de su redefinición en dos etapas en la sección anterior. Por lo tanto, d AA = a•• - β AA = -2 q 2 d después de la simplificación. De manera similar, d Aa = d•• - β Aa = 2 pq d después de la simplificación. Finalmente, d aa = (-a)•• - β aa = -2 p 2 d después de la simplificación. [ 14 ] : 116–119 Nótese que todas estas desviaciones de sustitución son en última instancia funciones del efecto genético d , lo que explica el uso de ["d" más subíndice] como sus símbolos. Sin embargo, es una grave falacia lógica considerarlas como una explicación de la dominancia (heterocigosis) en todo el modelo genético : son simplemente funciones de "d" y no una auditoría de "d" en el sistema. Son como se derivan: ¡desviaciones de las expectativas de sustitución !
Las "expectativas de sustitución" dan lugar, en última instancia, a la σ²A ( la denominada varianza genética aditiva ); y las "desviaciones de sustitución" dan lugar a la σ²D (la denominada varianza genética de dominancia ). Sin embargo, tenga en cuenta que el efecto de sustitución promedio (β) también contiene "d" [véanse las secciones anteriores], lo que indica que la dominancia también está integrada en la varianza "aditiva" [véanse las siguientes secciones sobre la varianza genotípica para sus derivaciones]. Recuerde también [véase el párrafo anterior] que las "desviaciones de sustitución" no explican la dominancia en el sistema (siendo simplemente desviaciones de las expectativas de sustitución ) , sino que consisten algebraicamente en funciones de "d". Nombres más apropiados para estas varianzas respectivas podrían ser σ²B (la varianza de "expectativas de cría") y σ²δ (la varianza de "desviaciones de cría " ). Sin embargo, como se señaló anteriormente, en este documento se preferirán "Génico" (σ 2 A ) y "Cuasi-Dominancia" (σ 2 D ), respectivamente.
Varianza genotípica
Hay dos enfoques principales para definir y particionar la varianza genotípica . Uno se basa en los efectos del modelo genético , [ 43 ] mientras que el otro se basa en los efectos de sustitución del genotipo [ 14 ]. Son algebraicamente interconvertibles entre sí. [ 38 ] En esta sección, se considera la derivación básica de fertilización aleatoria , dejando de lado los efectos de la endogamia y la dispersión. Esto se abordará más adelante para llegar a una solución más general. Hasta que este tratamiento monogénico sea reemplazado por uno multigénico , y hasta que la epistasis se resuelva a la luz de los hallazgos de la epigenética , la varianza genotípica solo tiene los componentes considerados aquí.
Enfoque del modelo genético – Mather Jinks Hayman

Es conveniente seguir el enfoque biométrico, que se basa en corregir la suma de cuadrados no ajustada (USS) restando el factor de corrección (CF) . Dado que todos los efectos se han examinado mediante frecuencias, la USS se puede obtener como la suma de los productos de la frecuencia de cada genotipo y el cuadrado de su efecto génico . El CF en este caso es la media cuadrática. El resultado es la SS, que, nuevamente debido al uso de frecuencias, también es inmediatamente la varianza . [ 9 ]
Ely el. El
Después de una simplificación parcial, La última línea está en la terminología de Mather. [ 43 ] : 212 [ 44 ] [ 45 ]
Aquí, σ²a es la varianza homocigótica o alélica, y σ²d es la varianza heterocigótica o de dominancia . También está presente la varianza de las desviaciones de sustitución (σ²D). La covarianza ponderada ad [ 46 ] se abrevia en adelante como " cov ad " .
Estos componentes se representan gráficamente para todos los valores de p en la figura adjunta. Nótese que cov ad es negativo para p > 0,5 .
La mayoría de estos componentes se ven afectados por el cambio del foco central del punto medio homocigoto ( mp ) a la media poblacional ( G ), siendo esta última la base del factor de corrección . Las varianzas de cov ad y desviación de sustitución son simplemente artefactos de este cambio. Las varianzas alélica y de dominancia son particiones genéticas genuinas del modelo genético original, y son los únicos componentes eugenéticos. Aun así, la fórmula algebraica para la varianza alélica se ve afectada por la presencia de G : es solo la varianza de dominancia (es decir , σ 2 d ) la que no se ve afectada por el cambio de mp a G. [ 38 ] Estas observaciones no se aprecian comúnmente.
La recopilación adicional de términos [en formato Mather] conduce a, dónde. Resulta útil más adelante en el análisis dialélico, que es un diseño experimental para estimar estas estadísticas genéticas. [ 47 ]
Si, siguiendo los últimos reordenamientos dados, los tres primeros términos se amalgaman, se reordenan aún más y se simplifican, el resultado es la varianza de la esperanza de sustitución de Fisher .
Eso es:
Nótese en particular que σ²A no es σ²a . La primera es la varianza de las expectativas de sustitución , mientras que la segunda es la varianza alélica . [ 48 ] Nótese también que σ²D (la varianza de las desviaciones de sustitución) no es σ²d ( la varianza de dominancia ) , y recordemos que es un artefacto derivado del uso de G para el factor de corrección. [Véase el párrafo azul anterior]. Ahora se la denominará varianza de "cuasi-dominancia".
También tenga en cuenta que σ²D < σ²d ( "2pq" siempre es una fracción); y tenga en cuenta que (1) σ²D = 2pq σ²d y que ( 2 ) σ²d = σ²D / ( 2pq ). Es decir: se confirma que σ²D no cuantifica la varianza de dominancia en el modelo. Es σ²d la que lo hace. Sin embargo, la varianza de dominancia (σ²d ) puede estimarse fácilmente a partir de σ²D si se dispone de 2pq .
En la figura , estos resultados pueden visualizarse como la acumulación de σ²a, σ²d y cov ad para obtener σ²A , mientras que σ²D permanece separada . También se observa claramente en la figura que σ²D < σ²d , como se esperaba de las ecuaciones .
El resultado general (en el formato de Fisher) es Los componentes de Fisher acaban de ser derivados, pero su derivación a través de los propios efectos de sustitución también se presenta en la siguiente sección.
Enfoque de sustitución de alelos – Fisher

La referencia a las secciones anteriores sobre sustitución de alelos revela que los dos efectos finales son las expectativas de sustitución de genotipos y las desviaciones de sustitución de genotipos . Nótese que cada una de ellas ya está definida como una desviación de la media de la población de fertilización aleatoria ( G ). Por lo tanto, para cada genotipo, se obtiene el producto de la frecuencia y el cuadrado del efecto correspondiente, y estos se acumulan para obtener directamente una SS y una σ² . [ 49 ] A continuación se ofrecen más detalles.
σ 2 A = p 2 β AA 2 + 2 pq β Aa 2 + q 2 β aa 2 , que se simplifica a σ 2 A = 2 pq β 2 : la varianza genérica.
σ 2 D = p 2 d AA 2 + 2 pq d Aa 2 + q d aa 2 , que se simplifica a σ 2 D = (2 pq ) 2 d 2 —la varianza de cuasi-dominancia.
Al sumar estos resultados, σ²G = σ²A + σ²D . Estos componentes se visualizan en los gráficos de la derecha. El efecto promedio de sustitución de alelos también se grafica, pero el símbolo es "α" (como es común en las citas) en lugar de "β" (como se usa aquí).
Una vez más, sin embargo, remitámonos a las discusiones anteriores sobre los verdaderos significados e identidades de estos componentes. El propio Fisher no utilizó estos términos modernos para sus componentes. A la varianza de las expectativas de sustitución la denominó varianza «genética» ; y a la varianza de las desviaciones de sustitución la consideró simplemente como el residuo sin nombre entre la varianza «genotípica» (su nombre para ella) y su varianza «genética». [ 8 ] [ 31 ] : 33 [ 50 ] [ 51 ] [La terminología y la derivación utilizadas en este artículo están completamente de acuerdo con las del propio Fisher.] El término de Mather para la varianza de las expectativas —«genética» [ 43 ] —obviamente se deriva del término de Fisher y evita el uso de «genética» (que se ha generalizado demasiado en su uso como para ser útil en el presente contexto). El origen de los términos modernos y engañosos de varianzas «aditiva» y «dominancia» es oscuro.
Nótese que este enfoque de sustitución de alelos definió los componentes por separado y luego los sumó para obtener la varianza genotípica final. Por el contrario, el enfoque del modelo genético derivó la situación completa (componentes y total) como un solo ejercicio. Las ventajas derivadas de esto fueron (a) las revelaciones sobre la estructura real de σ²A y ( b) los significados reales y los tamaños relativos de σ²d y σ²D ( véase la subsección anterior ). También es evidente que un análisis de Mather es más informativo y que siempre se puede construir un análisis de Fisher a partir de él. Sin embargo, la conversión inversa no es posible, ya que faltaría información sobre cov ad .
Dispersión y varianza genotípica
En la sección sobre deriva genética, y en otras secciones que abordan la endogamia, un resultado importante del muestreo de frecuencias alélicas ha sido la dispersión de las medias de la descendencia. Este conjunto de medias tiene su propio promedio y también una varianza: la varianza entre líneas . (Esta es una varianza del atributo en sí, no de las frecuencias alélicas ). A medida que la dispersión se desarrolla más en las generaciones sucesivas, se esperaría que esta varianza entre líneas aumentara. Por el contrario, a medida que aumenta la homocigosidad, se esperaría que la varianza dentro de las líneas disminuyera. Surge entonces la pregunta de si la varianza total está cambiando y, de ser así, en qué dirección. Hasta la fecha, estas cuestiones se han presentado en términos de las varianzas génicas (σ²A ) y de cuasi -dominancia (σ²D ) en lugar de los componentes del modelo genético. Esto también se hará aquí.
La ecuación de resumen crucial proviene de Sewall Wright, [ 13 ] : 99, 130 [ 39 ] y es el esquema de la varianza genotípica endogámica basada en un promedio ponderado de sus extremos , siendo los pesos cuadráticos con respecto al coeficiente de endogamia.Esta ecuación es:
dóndees el coeficiente de consanguinidad,es la varianza genotípica en f=0 ,es la varianza genotípica en f=1 , es la media poblacional en f=0 yes la media poblacional en f=1 .
ElEl componente [en la ecuación anterior] describe la reducción de la varianza dentro de las líneas de progenie. El componente aborda el aumento de la varianza entre las líneas de progenie. Por último, elSe observa que el componente (en la siguiente línea) aborda la varianza de cuasi-dominancia . [ 13 ] : 99 y 130 Estos componentes pueden ampliarse aún más, revelando así información adicional. Por lo tanto:
En primer lugar, σ²G (0) [ en la ecuación anterior] se ha expandido para mostrar sus dos subcomponentes [véase la sección sobre "Varianza genotípica"]. A continuación, σ²G (1) se ha convertido en 4pqa² y se deriva en una sección posterior. La sustitución del tercer componente es la diferencia entre los dos " extremos de endogamia" de la media poblacional [véase la sección sobre la "Media poblacional"]. [ 38 ]

En resumen: los componentes dentro de la línea sony; y los componentes entre líneas sony. [ 38 ]

Reordenando se obtiene lo siguiente: La versión de la última línea se analiza con más detalle en una sección posterior.
Similarmente,
Los gráficos de la izquierda muestran estas tres varianzas génicas, junto con las tres varianzas de cuasi-dominancia, para todos los valores de f , para p = 0,5 (en el que la varianza de cuasi-dominancia es máxima). Los gráficos de la derecha muestran las particiones de la varianza genotípica (que son las sumas de las respectivas particiones génicas y de cuasi-dominancia ) cambiando a lo largo de diez generaciones con un ejemplo de f = 0,10 .
Respondiendo, en primer lugar, a las preguntas planteadas al principio sobre las varianzas totales [la Σ en los gráficos] : la varianza génica aumenta linealmente con el coeficiente de endogamia , maximizando al doble de su nivel inicial. La varianza de cuasi-dominancia disminuye a una tasa de (1 − f 2 ) hasta llegar a cero. En niveles bajos de f , la disminución es muy gradual, pero se acelera con niveles más altos de f .
En segundo lugar, observe las otras tendencias. Probablemente sea intuitivo que las varianzas dentro de la línea disminuyan a cero con la endogamia continua, y esto se observa (ambas a la misma tasa lineal (1-f) ). Las varianzas entre líneas aumentan con la endogamia hasta f = 0,5 , la varianza génica a una tasa de 2f , y la varianza de cuasi-dominancia a una tasa de (f − f 2 ) . Sin embargo, para f > 0,5 , las tendencias cambian. La varianza génica entre líneas continúa su aumento lineal hasta que es igual a la varianza génica total . Pero, la varianza de cuasi-dominancia entre líneas ahora disminuye hacia cero , porque (f − f 2 ) también disminuye con f > 0,5 . [ 38 ]
Derivación de σ 2 G(1)
Recordemos que cuando f=1 , la heterocigosidad es cero, la varianza dentro de la línea es cero, y toda la varianza genotípica es, por lo tanto, varianza entre líneas y agotada de la varianza de dominancia. En otras palabras, σ 2 G(1) es la varianza entre las medias de líneas completamente endogámicas. Recordemos además [de la sección "La media después de la autofecundación"] que tales medias (G 1 , de hecho) son G = a(pq) . Sustituyendo (1-q) por p , se obtiene G 1 = a (1 − 2q) = a − 2aq . [ 14 ] : 265 Por lo tanto, σ 2 G(1) es σ 2 (a-2aq) en realidad. Ahora, en general, la varianza de una diferencia (xy) es [ σ 2 x + σ 2 y − 2 cov xy ] . [ 52 ] : 100 [ 53 ] : 232 Por lo tanto, σ 2 G(1) = [ σ 2 a + σ 2 2aq − 2 cov (a, 2aq) ] . Pero a (un efecto alélico ) y q (una frecuencia alélica ) son independientes , por lo que esta covarianza es cero. Además, a es una constante de una línea a la siguiente, por lo que σ 2 a también es cero. Además, 2a es otra constante (k), por lo que σ 2 2aq es del tipo σ 2 k X . En general, la varianza σ 2 k X es igual a k 2 σ 2 X . [ 53 ] : 232 Juntando todo esto se revela que σ 2 (a-2aq) = (2a) 2 σ 2 q . Recordemos [de la sección sobre "Deriva genética continua"] que σ 2 q = pq f . Con f=1 aquí dentro de esta derivación presente, esto se convierte en pq 1 (es decir pq ), y esto se sustituye en lo anterior.
El resultado final es: σ 2 G(1) = σ 2 (a-2aq) = 4a 2 pq = 2(2pq a 2 ) = 2 σ 2 a .
De ello se deduce inmediatamente que f σ 2 G(1) = f 2 σ 2 a . [Esta última f proviene de la ecuación inicial de Sewall Wright : no es la f simplemente establecida en "1" en la derivación concluida dos líneas más arriba.]
Varianza génica total dispersa – σ 2 A(f) y β f
En secciones anteriores se encontró que la varianza génica dentro de la línea se basa en la varianza génica derivada de la sustitución (σ²A ) , pero la varianza génica entre líneas se basa en la varianza alélica del modelo genético (σ²a ) . Estas dos no se pueden simplemente sumar para obtener la varianza génica total . Un enfoque para evitar este problema fue revisar la derivación del efecto promedio de sustitución de alelos y construir una versión, (βf ) , que incorpora los efectos de la dispersión. Crow y Kimura lograron esto [ 13 ] : 130-131 utilizando los efectos alélicos recentrados ( a•, d•, (-a)• ) discutidos previamente ["Efectos genéticos redefinidos"]. Sin embargo, posteriormente se encontró que esto subestimaba ligeramente la varianza génica total , y una nueva derivación basada en la varianza condujo a una versión refinada. [ 38 ]
La versión refinada es: β f = { a 2 + [(1− f ) / (1 + f )] 2(q − p ) ad + [(1- f ) / (1 + f )] (q − p ) 2 d 2 } (1/2)
En consecuencia, σ 2 A(f) = (1 + f ) 2pq β f 2 ahora coincide exactamente con [ (1-f) σ 2 A(0) + 2f σ 2 a(0) ] .
Varianzas de cuasi-dominancia dispersa totales y particionadas
La varianza génica total es de interés intrínseco por sí misma. Pero, antes de los refinamientos de Gordon, [ 38 ] también tenía otro uso importante. No existían estimadores para la cuasi-dominancia "dispersa". Esta se había estimado como la diferencia entre la varianza genotípica endogámica de Sewall Wright [ 39 ] y la varianza génica "dispersa" total [véase la subsección anterior]. Sin embargo, apareció una anomalía, ya que la varianza de la cuasi-dominancia total parecía aumentar al inicio de la endogamia a pesar de la disminución de la heterocigosidad. [ 14 ] : 128 : 266
Las mejoras introducidas en la subsección anterior corrigieron esta anomalía. [ 38 ] Al mismo tiempo, se obtuvo una solución directa para la varianza total de cuasi-dominancia , evitando así la necesidad del método de "sustracción" utilizado anteriormente. Además, por primera vez, se obtuvieron soluciones directas para las particiones entre líneas y dentro de las líneas de la varianza de cuasi-dominancia . [Estas se han presentado en la sección "Dispersión y varianza genotípica".]
Variación ambiental
La varianza ambiental es variabilidad fenotípica, que no puede atribuirse a la genética. Esto suena sencillo, pero el diseño experimental necesario para separar ambas requiere una planificación muy cuidadosa. Incluso el entorno "externo" puede dividirse en componentes espaciales y temporales ("Sitios" y "Años"); o en subcategorías como "camada" o "familia", y "cultura" o "historia". Estos componentes dependen en gran medida del modelo experimental utilizado en la investigación. Estas cuestiones son cruciales durante la investigación, pero en este artículo sobre genética cuantitativa, esta descripción general puede ser suficiente.
Sin embargo, es un lugar apropiado para un resumen:
Varianza fenotípica = varianzas genotípicas + varianzas ambientales + interacción genotipo-ambiente + varianza de "error" experimental
es decir, σ 2 P = σ 2 G + σ 2 E + σ 2 GE + σ 2
o σ 2 P = σ 2 A + σ 2 D + σ 2 I + σ 2 E + σ 2 GE + σ 2
después de dividir la varianza genotípica (G) en varianzas componentes "génicas" (A), "cuasidominancia" (D) y "epistáticas" (I). [ 54 ]
La variabilidad ambiental aparecerá en otras secciones, como "Heredabilidad" y "Atributos correlacionados".
Heredabilidad y repetibilidad
La heredabilidad de un rasgo es la proporción de la varianza total (fenotípica) (σ²P ) que se atribuye a la varianza genética, ya sea la varianza genotípica completa o algún componente de ella. Cuantifica el grado en que la variabilidad fenotípica se debe a la genética; sin embargo, su significado preciso depende de la partición de la varianza genética que se utilice en el numerador de la proporción. [ 55 ] Las estimaciones de heredabilidad en la investigación tienen errores estándar, al igual que todas las estadísticas estimadas. [ 56 ]
Cuando la varianza del numerador es la varianza genotípica total ( σ²G ) , la heredabilidad se conoce como heredabilidad en sentido amplio ( H² ). Esta cuantifica el grado en que la variabilidad de un atributo está determinada por la genética en su conjunto .[Véase la sección sobre la varianza genotípica.]
Si solo se utiliza la varianza génica ( σ²A ) en el numerador, la heredabilidad puede denominarse "en sentido estricto" (h² ) . Esta cuantifica hasta qué punto la varianza fenotípica está determinada por la varianza de las expectativas de sustitución de Fisher .Fisher propuso que esta heredabilidad en sentido estricto podría ser apropiada al considerar los resultados de la selección natural, centrándose como lo hace en la capacidad de cambio, es decir, en la "adaptación". [ 31 ] La propuso con respecto a la cuantificación de la evolución darwiniana.
Recordando que la varianza alélica ( σ²a ) y la varianza de dominancia ( σ²d ) son componentes eugenéticos del modelo genético [véase la sección sobre la varianza genotípica], y que σ²D ( las desviaciones de sustitución o varianza de "cuasidominancia" ) y cov ad se deben al cambio del punto medio homocigoto ( mp ) a la media poblacional ( G ) , se puede observar que los verdaderos significados de estas heredabilidades son oscuros. y tener un significado inequívoco.
La heredabilidad en sentido estricto también se ha utilizado para predecir, en general, los resultados de la selección artificial . En este último caso, sin embargo, la heredabilidad en sentido amplio puede ser más apropiada, ya que se modifica todo el atributo: no solo la capacidad adaptativa. Generalmente, el avance derivado de la selección es más rápido cuanto mayor es la heredabilidad. [Véase la sección sobre "Selección"]. En los animales, la heredabilidad de los rasgos reproductivos suele ser baja, mientras que la heredabilidad de la resistencia a las enfermedades y la producción es de moderada a baja, y la heredabilidad de la conformación corporal es alta.
La repetibilidad (r² ) es la proporción de la varianza fenotípica atribuible a las diferencias en mediciones repetidas del mismo sujeto, derivadas de registros posteriores. Se utiliza particularmente para especies longevas. Este valor solo puede determinarse para rasgos que se manifiestan varias veces durante la vida del organismo, como la masa corporal adulta, la tasa metabólica o el tamaño de la camada. La masa al nacer, por ejemplo, no tendría un valor de repetibilidad, pero sí un valor de heredabilidad. Generalmente, aunque no siempre, la repetibilidad indica el límite superior de la heredabilidad. [ 57 ]
r 2 = (s 2 G + s 2 PE )/s 2 P
donde s 2 PE = interacción fenotipo-ambiente = repetibilidad.
El concepto de repetibilidad mencionado anteriormente resulta problemático para rasgos que necesariamente varían considerablemente entre mediciones. Por ejemplo, la masa corporal aumenta notablemente en muchos organismos entre el nacimiento y la edad adulta. No obstante, dentro de un rango de edad determinado (o etapa del ciclo vital), se podrían realizar mediciones repetidas, y la repetibilidad tendría sentido dentro de esa etapa.
Relación

Desde la perspectiva de la herencia, los parientes son individuos que heredaron genes de uno o más ancestros comunes. Por lo tanto, su "relación" puede cuantificarse en función de la probabilidad de que cada uno haya heredado una copia de un alelo del ancestro común. En secciones anteriores, el coeficiente de endogamia se ha definido como "la probabilidad de que dos alelos iguales ( A y A , o a y a ) tengan un origen común" o, más formalmente, "la probabilidad de que dos alelos homólogos sean autozygotos". Anteriormente, el énfasis estaba en la probabilidad de que un individuo tuviera dos de estos alelos, y el coeficiente se formuló en consecuencia. Sin embargo, es obvio que esta probabilidad de autozygocidad para un individuo también debe ser la probabilidad de que cada uno de sus dos padres tuviera este alelo autozygoto. En esta forma reenfocada, la probabilidad se denomina coeficiente de co-ancestro para los dos individuos i y j ( f ij ). En esta forma, puede utilizarse para cuantificar la relación entre dos individuos, y también puede conocerse como coeficiente de parentesco o coeficiente de consanguinidad . [ 13 ] : 132–143 [ 14 ] : 82–92
análisis de pedigrí

Los pedigríes son diagramas de conexiones familiares entre individuos y sus ancestros, y posiblemente entre otros miembros del grupo que comparten herencia genética con ellos. Son mapas de relaciones. Por lo tanto, un pedigrí puede analizarse para revelar coeficientes de endogamia y coancestría. Estos pedigríes son en realidad representaciones informales de diagramas de ruta como los utilizados en el análisis de ruta , que fue inventado por Sewall Wright cuando formuló sus estudios sobre la endogamia. [ 58 ] : 266–298 Usando el diagrama adyacente, la probabilidad de que los individuos "B" y "C" hayan recibido alelos autozygotos del ancestro "A" es 1/2 (uno de los dos alelos diploides). Esta es la endogamia "de novo" ( Δf Ped ) en este paso. Sin embargo, el otro alelo puede haber tenido autozygocidad "arrastrada" de generaciones anteriores, por lo que la probabilidad de que esto ocurra es ( complemento de novo multiplicado por la endogamia del ancestro A ), es decir (1 − Δf Ped ) f A = (1/2) f A. Por lo tanto, la probabilidad total de autozygocidad en B y C, después de la bifurcación del pedigrí, es la suma de estos dos componentes, a saber (1/2) + (1/2)f A = (1/2) (1+f A ) . Esto puede verse como la probabilidad de que dos gametos aleatorios del ancestro A porten alelos autozygosos, y en ese contexto se llama coeficiente de paternidad ( f AA ). [ 13 ] : 132–143 [ 14 ] : 82–92 Aparece a menudo en los siguientes párrafos.
Siguiendo la ruta "B", la probabilidad de que cualquier alelo autozygote se "transmita" a cada progenitor sucesivo es nuevamente (1/2) en cada paso (incluido el último al "objetivo" X ). La probabilidad general de transferencia a lo largo de la "ruta B" es, por lo tanto, (1/2) 3 . La potencia a la que se eleva (1/2) puede verse como "el número de intermedios en la ruta entre A y X ", n B = 3 . De manera similar, para la "ruta C", n C = 2 , y la "probabilidad de transferencia" es (1/2) 2 . La probabilidad combinada de transferencia autozygote de A a X es, por lo tanto, [ f AA (1/2) (n B ) (1/2) (n C ) ] . Recordando que f AA = (1/2) (1+f A ) , f X = f PQ = (1/2) (n B + n C + 1) (1 + f A ) . En este ejemplo, suponiendo que f A = 0, f X = 0,0156 (redondeado) = f PQ , una medida de la "relación" entre P y Q.
En esta sección, se utilizaron potencias de ( 1/2 ) para representar la "probabilidad de autozygocidad". Más adelante, este mismo método se utilizará para representar las proporciones de los acervos genéticos ancestrales que se heredan a través de un árbol genealógico [la sección sobre "Parentesco entre parientes"].

Reglas de multiplicación cruzada
En las siguientes secciones sobre cruces entre hermanos y temas similares, una serie de "reglas de promedio" resultan útiles. Estas se derivan del análisis de ruta . [ 58 ] Las reglas muestran que cualquier coeficiente de co-ascendencia puede obtenerse como el promedio de co-ascendencias cruzadas entre combinaciones apropiadas de abuelos y padres. Así, refiriéndonos al diagrama adyacente, el multiplicador cruzado 1 es que f PQ = promedio de ( f AC , f AD , f BC , f BD ) = (1/4) [f AC + f AD + f BC + f BD ] = f Y . De manera similar, el multiplicador cruzado 2 establece que f PC = (1/2) [ f AC + f BC ] —mientras que el multiplicador cruzado 3 establece que f PD = (1/2) [ f AD + f BD ] . Volviendo al primer multiplicador, ahora se puede ver también que f PQ = (1/2) [ f PC + f PD ] , que, después de sustituir los multiplicadores 2 y 3, retoma su forma original.
En gran parte de lo que sigue, la generación de los abuelos se denomina (t-2) , la generación de los padres (t-1) y la generación "objetivo" t .
Cruce entre hermanos completos (FS)

El diagrama de la derecha muestra que el cruce de hermanos completos es una aplicación directa del Multiplicador cruzado 1 , con la ligera modificación de que los padres A y B repiten (en lugar de C y D ) para indicar que los individuos P1 y P2 tienen ambos padres en común, es decir, son hermanos completos . El individuo Y es el resultado del cruce de dos hermanos completos. Por lo tanto, f Y = f P1,P2 = (1/4) [ f AA + 2 f AB + f BB ] . Recordemos que f AA y f BB se definieron anteriormente (en el análisis de pedigrí) como coeficientes de parentesco , iguales a (1/2)[1+f A ] y (1/2)[1+f B ] respectivamente, en el presente contexto. Reconozcamos que, en esta forma, los abuelos A y B representan la generación (t-2) . Por lo tanto, suponiendo que en cualquier generación todos los niveles de endogamia son iguales, estos dos coeficientes de parentesco representan cada uno (1/2) [1 + f (t-2) ] .

Ahora, examinemos f AB . Recordemos que esto también es f P1 o f P2 , y por lo tanto representa su generación - f (t-1) . Juntándolo todo, f t = (1/4) [ 2 f AA + 2 f AB ] = (1/4) [ 1 + f (t-2) + 2 f (t-1) ] . Ese es el coeficiente de endogamia para el cruce de hermanos completos . [ 13 ] : 132–143 [ 14 ] : 82–92 El gráfico de la izquierda muestra la tasa de esta endogamia a lo largo de veinte generaciones repetitivas. La "repetición" significa que la descendencia después del ciclo t se convierte en los padres del cruce que generan el ciclo ( t+1 ), y así sucesivamente. Los gráficos también muestran la endogamia para la fertilización aleatoria 2N=20 para comparación. Recordemos que este coeficiente de consanguinidad para la descendencia Y es también el coeficiente de coascendencia para sus padres, y por lo tanto es una medida del parentesco de los dos hermanos Fill .
Cruce de medios hermanos (HS)
La derivación del cruce de medio hermanos toma un camino ligeramente diferente al de los hermanos completos. En el diagrama adyacente, los dos medios hermanos en la generación (t-1) tienen solo un padre en común: el padre "A" en la generación (t-2). El multiplicador cruzado 1 se usa nuevamente, dando f Y = f (P1,P2) = (1/4) [ f AA + f AC + f BA + f BC ] . Esta vez solo hay un coeficiente de parentesco , pero tres coeficientes de co-ascendencia en el nivel (t-2) (uno de ellos, f BC , es un "ficticio" y no representa a un individuo real en la generación (t-1)). Como antes, el coeficiente de parentesco es (1/2)[1+f A ] , y las tres co-ascendencias representan cada una f (t-1) . Recordando que f A representa f (t-2) , la última agrupación y simplificación de términos da f Y = f t = (1/8) [ 1 + f (t-2) + 6 f (t-1) ] . [ 13 ] : 132–143 [ 14 ] : 82–92 Los gráficos de la izquierda incluyen esta endogamia de medios hermanos (HS) durante veinte generaciones sucesivas.

Como antes, esto también cuantifica el parentesco de los dos medios hermanos en la generación (t-1) en su forma alternativa de f (P1, P2) .
Autofecundación (AF)
Un diagrama de pedigrí para la autofecundación está a la derecha. Es tan sencillo que no requiere ninguna regla de multiplicación cruzada. Emplea simplemente la yuxtaposición básica del coeficiente de consanguinidad y su alternativa, el coeficiente de coascendencia ; seguido del reconocimiento de que, en este caso, este último también es un coeficiente de parentesco . Así, f Y = f (P1, P1) = f t = (1/2) [ 1 + f (t-1) ] . [ 13 ] : 132–143 [ 14 ] : 82–92 Esta es la tasa de consanguinidad más rápida de todos los tipos, como se puede ver en los gráficos anteriores. La curva de autofecundación es, de hecho, un gráfico del coeficiente de parentesco .
Cruces de primos

Estos se derivan con métodos similares a los de los hermanos. [ 13 ] : 132–143 [ 14 ] : 82–92 Como antes, el punto de vista de la coascendencia del coeficiente de endogamia proporciona una medida de "parentesco" entre los padres P1 y P2 en estas expresiones de primos.
El pedigrí para primos hermanos (FC) se da a la derecha. La ecuación prima es f Y = f t = f P1,P2 = (1/4) [ f 1D + f 12 + f CD + f C2 ] . Después de sustituir con los coeficientes de consanguinidad correspondientes, agrupar términos y simplificar, esto se convierte en f t = (1/4) [ 3 f (t-1) + (1/4) [ 2 f (t-2) + f (t-3) + 1 ]] , que es una versión para iteración, útil para observar el patrón general y para la programación de computadoras. Una versión "final" es f t = (1/16) [ 12 f (t-1) + 2 f (t-2) + f (t-3) + 1 ] .

El pedigrí de primos segundos (SC) está a la izquierda. Los padres en el pedigrí que no están relacionados con el ancestro común se indican con números en lugar de letras. Aquí, la ecuación prima es f Y = f t = f P1,P2 = (1/4) [ f 3F + f 34 + f EF + f E4 ] . Después de realizar el álgebra apropiada, esto se convierte en f t = (1/4) [ 3 f (t-1) + (1/4) [ 3 f (t-2) + (1/4) [ 2 f (t-3) + f (t-4) + 1 ]]] , que es la versión iterativa. Una versión "final" es f t = (1/64) [ 48 f (t-1) + 12 f (t-2) + 2 f (t-3) + f (t-4) + 1 ] .

Para visualizar el patrón en las ecuaciones de primos completos, comience la serie con la ecuación de hermanos completos reescrita en forma iterativa: f t = (1/4)[2 f (t-1) + f (t-2) + 1 ] . Observe que este es el "plan esencial" del último término en cada una de las formas iterativas de primos: con la pequeña diferencia de que los índices de generación se incrementan en "1" en cada "nivel" de primo. Ahora, defina el nivel de primo como k = 1 (para primos hermanos), = 2 (para primos segundos), = 3 (para primos terceros), etc., etc.; y = 0 (para hermanos completos, que son "primos de nivel cero"). El último término se puede escribir ahora como: (1/4) [ 2 f (t-(1+k)) + f (t-(2+k)) + 1] . Apilados delante de este último término hay uno o más incrementos de iteración en la forma (1/4) [ 3 f (tj) + ... , donde j es el índice de iteración y toma valores de 1 ... k a lo largo de las iteraciones sucesivas según sea necesario. Juntando todo esto se obtiene una fórmula general para todos los niveles posibles de primos completos , incluidos los hermanos completos . Para primos completos de nivel k , f {k} t = Ιter j = 1 k { (1/4) [ 3 f (tj) + } j + (1/4) [ 2 f (t-(1+k)) + f (t-(2+k)) + 1] . Al comienzo de la iteración, todos los f (t- x ) se establecen en "0", y cada uno tiene su valor sustituido a medida que se calcula a través de las generaciones. Los gráficos de la derecha muestran la endogamia sucesiva para varios niveles de primos completos.

Para los primos segundos (FHC) , el pedigrí está a la izquierda. Nótese que solo hay un ancestro común (individuo A ). Además, como para los primos segundos , los padres no relacionados con el ancestro común se indican con números. Aquí, la ecuación prima es f Y = f t = f P1,P2 = (1/4) [ f 3D + f 34 + f CD + f C4 ] . Después de realizar el álgebra apropiada, esto se convierte en f t = (1/4) [ 3 f (t-1) + (1/8) [ 6 f (t-2) + f (t-3) + 1 ]] , que es la versión iterativa. Una versión "final" es f t = (1/32) [ 24 f (t-1) + 6 f (t-2) + f (t-3) + 1 ] . El algoritmo de iteración es similar al de los primos completos , excepto que el último término es (1/8) [ 6 f (t-(1+k)) + f (t-(2+k)) + 1 ] . Nótese que este último término es básicamente similar a la ecuación de los medios hermanos, en paralelo al patrón de los primos completos y los hermanos completos. En otras palabras, los medios hermanos son primos de "nivel cero".
Existe una tendencia a considerar el cruzamiento entre primos desde una perspectiva antropocéntrica, posiblemente debido al gran interés en la genealogía. El uso de pedigríes para determinar la endogamia quizás refuerza esta visión de la "historia familiar". Sin embargo, este tipo de cruzamiento también ocurre en poblaciones naturales, especialmente en aquellas sedentarias o que tienen un área de reproducción que visitan periódicamente. El grupo de descendencia de un harén con un macho dominante, por ejemplo, puede contener elementos de cruzamiento entre hermanos, entre primos y retrocruzamiento, así como deriva genética, especialmente del tipo "isla". Además, el cruzamiento ocasional con individuos de otras especies añade un elemento de hibridación. No se trata de panmixia.
Retrocruzamiento (BC)


Después de la hibridación entre A y R , el F1 (individuo B ) se cruza de nuevo ( BC1 ) con un progenitor original ( R ) para producir la generación BC1 (individuo C ). [Es habitual usar la misma etiqueta para el acto de realizar el retrocruzamiento y para la generación producida por él. El acto de retrocruzamiento está aquí en cursiva .] El progenitor R es el progenitor recurrente . Se muestran dos retrocruzamientos sucesivos, siendo el individuo D la generación BC2 . A estas generaciones también se les han dado índices t , como se indica. Como antes, f D = f t = f CR = (1/2) [ f RB + f RR ] , usando el multiplicador cruzado 2 dado anteriormente. El f RB que acabamos de definir es el que involucra la generación (t-1) con (t-2) . Sin embargo, también existe otro f RB contenido completamente dentro de la generación (t-2) , y es este el que se utiliza ahora: como la co-ascendencia de los padres del individuo C en la generación (t-1) . Como tal, también es el coeficiente de consanguinidad de C , y por lo tanto es f (t-1) . El f RR restante es el coeficiente de parentesco del padre recurrente , y por lo tanto es (1/2) [1 + f R ] . Juntando todo esto : f t = (1/2) [ (1/2) [ 1 + f R ] + f (t-1) ] = (1/4) [ 1 + f R + 2 f (t-1) ] . Los gráficos de la derecha ilustran la consanguinidad de retrocruzamiento a lo largo de veinte retrocruzamientos para tres niveles diferentes de consanguinidad (fija) en el padre recurrente.
Esta rutina se utiliza comúnmente en programas de mejoramiento genético animal y vegetal . A menudo, después de crear el híbrido (especialmente si los individuos tienen una vida corta), el progenitor recurrente requiere un mejoramiento genético independiente para su mantenimiento como futuro progenitor recurrente en el retrocruzamiento. Este mantenimiento puede realizarse mediante autofecundación, cruzamiento entre hermanos completos o medios hermanos, o mediante poblaciones restringidas con fertilización aleatoria, según las posibilidades reproductivas de la especie. Por supuesto, este aumento gradual en f R se traslada a f t del retrocruzamiento. El resultado es una curva que asciende a las asíntotas de forma más gradual que la que se muestra en los gráficos actuales, ya que f R no se encuentra en un nivel fijo desde el principio.
Aportaciones de acervos genéticos ancestrales
En la sección sobre "Análisis de pedigrí",Se utilizó para representar las probabilidades de descendencia de alelos autosygotos a lo largo de n generaciones en las ramas del pedigrí. Esta fórmula surgió debido a las reglas impuestas por la reproducción sexual: (i) dos progenitores que aportan partes prácticamente iguales de genes autosómicos, y (ii) dilución sucesiva en cada generación entre el cigoto y el nivel de parentesco "foco". Estas mismas reglas se aplican también a cualquier otro punto de vista de la descendencia en un sistema reproductivo de dos sexos. Un ejemplo es la proporción de cualquier acervo genético ancestral (también conocido como "germoplasma") que está contenido en el genotipo de cualquier cigoto.
Por lo tanto, la proporción de un acervo genético ancestral en un genotipo es: donde n = número de generaciones sexuales entre el cigoto y el ancestro de interés.
Por ejemplo, cada progenitor define un acervo genético que contribuyea su descendencia; mientras que cada bisabuelo contribuyea su bisnieta.
El acervo genético total del cigoto ( Γ ) es, por supuesto, la suma de las contribuciones sexuales a su descendencia.
Relación a través de acervos genéticos ancestrales
Los individuos descendientes de un acervo genético ancestral común están, obviamente, emparentados. Esto no significa que sean idénticos en sus genes (alelos), ya que, en cada nivel de ancestro, se habrá producido segregación y distribución en la formación de gametos. Sin embargo, se habrán originado a partir del mismo conjunto de alelos disponibles para estas meiosis y fecundaciones posteriores. [Esta idea se presentó por primera vez en las secciones sobre análisis de pedigrí y relaciones.] Por lo tanto, las contribuciones al acervo genético [véase la sección anterior] de su acervo genético ancestral común más cercano (un nodo ancestral ) pueden utilizarse para definir su parentesco. Esto conduce a una definición intuitiva de parentesco que se ajusta bien a las nociones familiares de "parentesco" que se encuentran en la historia familiar; y permite comparar el "grado de parentesco" para patrones complejos de relaciones que surgen de dicha genealogía.
Las únicas modificaciones necesarias (para cada individuo a su vez) se encuentran en Γ y se deben al cambio a " ascendencia común compartida" en lugar de "ascendencia total individual ". Para ello, definimos Ρ (en lugar de Γ ); m = número de ancestros comunes en el nodo (es decir, m = 1 o 2 solamente); y un "índice individual" k . Por lo tanto:
donde, como antes, n = número de generaciones sexuales entre el individuo y el nodo ancestral.
Un ejemplo lo proporcionan dos primos hermanos. Su nodo ancestral común más cercano son sus abuelos, quienes dieron origen a sus dos padres hermanos, y tienen a ambos abuelos en común. [Véase el árbol genealógico anterior.] Para este caso, m=2 y n=2 , por lo que para cada uno de ellos
En este caso sencillo, cada primo tiene numéricamente el mismo P.
Un segundo ejemplo podría ser entre dos primos hermanos, pero uno ( k=1 ) tiene tres generaciones de parentesco hasta el nodo ancestral (n=3), y el otro ( k=2 ) solo dos (n=2) [es decir, una relación de primos segundos y hermanos]. Para ambos, m=2 (son primos hermanos).
y
Observa que cada primo tiene un Ρ k diferente .
GRC – coeficiente de relación del acervo genético
En cualquier estimación de parentesco por pares, hay un P k para cada individuo: solo queda promediarlos para combinarlos en un único "coeficiente de parentesco". Dado que cada P es una fracción de un acervo genético total , el promedio apropiado para ellos es la media geométrica [ 59 ] [ 60 ] : 34–55 Este promedio es su coeficiente de parentesco del acervo genético (GRC).
Para el primer ejemplo (dos primos hermanos completos), su GRC = 0,5; para el segundo caso (un primo hermano y un primo segundo completos), su GRC = 0,3536.
Todas estas relaciones (GRC) son aplicaciones del análisis de ruta. [ 58 ] : 214–298 A continuación se presenta un resumen de algunos niveles de relación (GRC).
Semejanzas entre parientes
Estas variaciones, al igual que las variaciones genotípicas, pueden obtenerse mediante el modelo genético ("Mather") o el método de sustitución de alelos ("Fisher"). Aquí se ilustra cada método para casos alternativos.
Covarianza entre padres e hijos
Estos pueden verse como la covarianza entre cualquier descendiente y cualquiera de sus padres ( PO ), o como la covarianza entre cualquier descendiente y el valor "medio de los padres" de ambos padres ( MPO ).
Padre o madre soltero/a e hijo/a (PO)
Esto se puede derivar como la suma de los productos cruzados entre los efectos genéticos parentales y la mitad de las expectativas de la descendencia utilizando el enfoque de sustitución de alelos. La mitad de la expectativa de la descendencia tiene en cuenta que solo se considera uno de los dos progenitores . Por lo tanto, los efectos genéticos parentales apropiados son los efectos genéticos redefinidos de la segunda etapa utilizados para definir las varianzas genotípicas anteriormente, es decir: a ″ = 2q(a − qd) y d ″ = (qp)a + 2pqd y también (-a) ″ = -2p(a + pd) [véase la sección "Efectos genéticos redefinidos"]. De manera similar, los efectos apropiados de la descendencia, para las expectativas de sustitución de alelos , son la mitad de los valores de cría anteriores , siendo estos últimos: a AA = 2qa , y a Aa = (qp)a y también a aa = -2pa [véase la sección sobre "Sustitución de genotipos: expectativas y desviaciones"].
Dado que todos estos efectos ya están definidos como desviaciones de la media genotípica, la suma del producto cruzado utilizando { frecuencia genotípica * efecto del gen parental * valor de la mitad de la cruz } proporciona inmediatamente la covarianza de la expectativa de sustitución alélica entre cualquier progenitor y su descendencia. Tras una cuidadosa recopilación de términos y simplificación, esto se convierte en cov(PO) A = pqa 2 = 1 / 2 s 2 A . [ 13 ] : 132–141 [ 14 ] : 134–147
Desafortunadamente, las desviaciones de sustitución de alelos suelen pasarse por alto, ¡pero no han "dejado de existir"! Recordemos que estas desviaciones son: d AA = -2q 2 d , y d Aa = 2pq d y también d aa = -2p 2 d [véase la sección sobre "Sustitución de genotipos: expectativas y desviaciones"]. En consecuencia, la suma del producto cruzado usando { frecuencia de genotipo * efecto del gen parental * desviaciones de media sustitución } también proporciona inmediatamente la covarianza de las desviaciones de sustitución de alelos entre cualquier progenitor y su descendencia. Una vez más, después de una cuidadosa recopilación de términos y simplificación, esto se convierte en cov(PO) D = 2p 2 q 2 d 2 = 1 / 2 s 2 D .
Por lo tanto, se deduce que: cov(PO) = cov(PO) A + cov(PO) D = 1 / 2 s 2 A + 1 / 2 s 2 D , ¡cuando no se pasa por alto la dominancia !
Progenitor medio y descendencia (MPO)
Debido a que existen muchas combinaciones de genotipos parentales, hay muchos promedios diferentes de progenitores y descendencia que considerar, junto con las frecuencias variables de obtención de cada par parental. El enfoque del modelo genético es el más conveniente en este caso. Por lo tanto, una suma no ajustada de productos cruzados (USCP) —utilizando todos los productos { frecuencia del par parental * efecto del gen progenitor promedio * promedio del genotipo de la descendencia }— se ajusta restando el {promedio genotípico general} ² como factor de corrección (CF) . Después de multiplicar todas las combinaciones, agrupar cuidadosamente los términos, simplificar, factorizar y cancelar donde corresponda, se obtiene:
cov(MPO) = pq [a + (qp)d ] 2 = pq a 2 = 1 / 2 s 2 A , sin que se haya pasado por alto la dominancia en este caso, ya que se había utilizado al definir a . [ 13 ] : 132–141 [ 14 ] : 134–147
Aplicaciones (padre-hijo)
La aplicación más obvia es un experimento que incluye a todos los padres y su descendencia, con o sin cruces recíprocos, preferiblemente replicado sin sesgo, lo que permite estimar todas las medias, varianzas y covarianzas apropiadas, junto con sus errores estándar. Estas estadísticas estimadas pueden usarse para estimar las varianzas genéticas. El doble de la diferencia entre las estimaciones de las dos formas de covarianza padre-descendencia (corregida) proporciona una estimación de s 2 D ; y el doble de cov(MPO) estima s 2 A. Con un diseño y análisis experimental apropiados, [ 9 ] [ 52 ] [ 53 ] también se pueden obtener errores estándar para estas estadísticas genéticas. Este es el núcleo básico de un experimento conocido como análisis dialélico , cuya versión de Mather, Jinks y Hayman se analiza en otra sección.
Una segunda aplicación implica el uso del análisis de regresión , que estima a partir de la estadística la ordenada (estimación de Y), la derivada (coeficiente de regresión) y la constante (intercepto de Y) del cálculo. [ 9 ] [ 52 ] [ 61 ] [ 62 ] El coeficiente de regresión estima la tasa de cambio de la función que predice Y a partir de X , basándose en la minimización de los residuos entre la curva ajustada y los datos observados (MINRES). Ningún método alternativo de estimación de dicha función satisface este requisito básico de MINRES. En general, el coeficiente de regresión se estima como la razón de la covarianza (XY) a la varianza del determinante (X) . En la práctica, el tamaño de la muestra suele ser el mismo para X e Y, por lo que esto se puede escribir como SCP(XY) / SS(X) , donde todos los términos se han definido previamente. [ 9 ] [ 61 ] [ 62 ] En el presente contexto, los padres se consideran la "variable determinante" (X), y la descendencia la "variable determinada" (Y), y el coeficiente de regresión la "relación funcional" (ß PO ) entre ambas. Tomando cov(MPO) = 1 / 2 s 2 A como cov(XY) , y s 2 P / 2 (la varianza de la media de los dos padres—el padre medio) como s 2 X , se puede ver que ß MPO = [ 1 / 2 s 2 A ] / [ 1 / 2 s 2 P ] = h 2 . [ 63 ] A continuación, utilizando cov(PO) = [ 1 / 2 s 2 A + 1 / 2 s 2 D ] como cov(XY) , y s 2 P como s 2 X , se observa que 2 ß PO = [ 2 ( 1 / 2 s 2 A+ 1 / 2 s 2 D ) ] / s 2 P = H 2 .
Anteriormente se intentó analizar la epistasis mediante un enfoque de varianza de interacción del tipo s²AA , s²AD y también s²DD . Esto se integró con las covarianzas actuales con el fin de proporcionar estimadores para las varianzas de la epistasis. Sin embargo , los hallazgos de la epigenética sugieren que este podría no ser el método adecuado para definir la epistasis .
Covarianzas entre hermanos
La covarianza entre medios hermanos ( HS ) se define fácilmente mediante métodos de sustitución de alelos; sin embargo, históricamente se ha omitido la contribución de la dominancia. No obstante, al igual que con la covarianza entre el promedio de los progenitores y la descendencia, la covarianza entre hermanos completos ( FS ) requiere un enfoque de "combinación de progenitores", lo que exige el uso del método de producto cruzado corregido por el modelo genético; y la contribución de la dominancia no se ha pasado por alto históricamente. La superioridad de las derivaciones del modelo genético es tan evidente aquí como lo fue para las varianzas genotípicas.
Medio hermanos del mismo progenitor común (HS)
La suma de los productos cruzados { frecuencia del progenitor común * valor genético medio de un medio hermano * valor genético medio de cualquier otro medio hermano en ese mismo grupo de progenitor común } proporciona inmediatamente una de las covarianzas requeridas, porque los efectos utilizados [ valores genéticos — que representan las expectativas de sustitución de alelos] ya están definidos como desviaciones de la media genotípica [véase la sección sobre " Sustitución de alelos: expectativas y desviaciones"]. Después de la simplificación, esto se convierte en: cov ( HS) A = 1 / 2 pq a 2 = 1 / 4 s 2 A . [ 13 ] : 132–141 [ 14 ] : 134–147 Sin embargo, también existen las desviaciones de sustitución , que definen la suma de los productos cruzados { frecuencia del progenitor común * desviación de sustitución de la mitad de un medio hermano * desviación de sustitución de la mitad de cualquier otro medio hermano en ese mismo grupo de progenitor común } , lo que finalmente conduce a: cov(HS) D = p 2 q 2 d 2 = 1 / 4 s 2 D . Sumando los dos componentes se obtiene:
cov ( HS ) = cov(HS) A + cov(HS) D = 1/4 s 2 A + 1/4 s 2 D .
Hermanos completos (FC)
Como se explica en la introducción, se utiliza un método similar al empleado para la covarianza entre el promedio de los progenitores y la descendencia. Por lo tanto, una suma no ajustada de productos cruzados (USCP) que utiliza todos los productos ({ frecuencia del par de progenitores * el cuadrado de la media del genotipo de la descendencia }) se ajusta restando la {media genotípica general} ² como factor de corrección (CF) . En este caso, multiplicar todas las combinaciones, agrupar cuidadosamente los términos, simplificar, factorizar y cancelar es un proceso muy prolongado. Finalmente, se convierte en:
cov(FS) = pq a 2 + p 2 q 2 d 2 = 1 / 2 s 2 A + 1 / 4 s 2 D , sin que se haya pasado por alto ningún dominio. [ 13 ] : 132–141 [ 14 ] : 134–147
Solicitudes (hermanos)
La aplicación más útil aquí para la estadística genética es la correlación entre medios hermanos . Recordemos que el coeficiente de correlación ( r ) es la razón de la covarianza a la varianza [véase la sección sobre "Atributos asociados", por ejemplo]. Por lo tanto, r HS = cov(HS) / s 2 todos los HS juntos = [ 1 / 4 s 2 A + 1 / 4 s 2 D ] / s 2 P = 1 / 4 H 2 . [ 64 ] La correlación entre hermanos completos es de poca utilidad, siendo r FS = cov(FS) / s 2 todos los FS juntos = [ 1 / 2 s 2 A + 1 / 4 s 2 D ] / s 2 P . La sugerencia de que "se aproxima" ( 1 / 2 h 2 ) es un mal consejo.
Por supuesto, las correlaciones entre hermanos son de interés intrínseco por sí mismas, independientemente de cualquier utilidad que puedan tener para estimar la heredabilidad o las varianzas genotípicas.
Puede ser útil señalar que [ cov(FS) − cov(HS)] = 1 / 4 s 2 A . Los experimentos que consisten en familias FS y HS podrían utilizar esto usando la correlación intraclase para igualar los componentes de la varianza del experimento a estas covarianzas [ver la sección sobre "Coeficiente de relación como correlación intraclase" para la justificación de esto].
Los comentarios anteriores sobre la epistasis se aplican nuevamente aquí [véase la sección sobre "Aplicaciones (padre-descendencia)"].
Selección
Principios básicos

La selección actúa sobre el atributo (fenotipo), de modo que los individuos que igualan o superan un umbral de selección (z P ) se convierten en progenitores efectivos para la siguiente generación. La proporción que representan de la población base es la presión de selección . Cuanto menor sea la proporción, mayor será la presión. La media del grupo seleccionado (P s ) es superior a la media de la población base (P 0 ) por la diferencia denominada diferencial de selección (S) . Todas estas cantidades son fenotípicas. Para "vincular" con los genes subyacentes, se utiliza una heredabilidad (h 2 ) , que cumple la función de un coeficiente de determinación en el sentido biométrico. El cambio genético esperado —que aún se expresa en unidades de medida fenotípicas— se denomina avance genético (ΔG) , y se obtiene mediante el producto del diferencial de selección (S) y su coeficiente de determinación (h 2 ) . La media esperada de la descendencia (P 1 ) se obtiene sumando el avance genético (ΔG) a la media base (P 0 ) . Los gráficos de la derecha muestran cómo el avance genético (inicial) es mayor con una presión selectiva más intensa (menor probabilidad ). También muestran cómo el progreso de ciclos sucesivos de selección (incluso con la misma presión selectiva) disminuye progresivamente, debido a que la propia selección reduce la varianza fenotípica y la heredabilidad. Esto se analizará con más detalle a continuación.
De este modo . [ 14 ] : 1710–181 y. [ 14 ] : 1710–181
La heredabilidad en sentido estricto (h² ) se utiliza habitualmente, vinculándose así con la varianza génica (σ²A ) . Sin embargo, si procede, se podría utilizar la heredabilidad en sentido amplio (H² ) para vincularla con la varianza genotípica (σ²G ) ; e incluso podría considerarse una heredabilidad alélica [ h²eu = (σ²a ) / (σ²P ) ] , que se vincularía con ( σ²a ) . [Véase la sección sobre Heredabilidad . ]
Para aplicar estos conceptos antes de que se produzca la selección y, por lo tanto, predecir el resultado de las alternativas (como la elección del umbral de selección , por ejemplo), estas estadísticas fenotípicas se reconsideran en función de las propiedades de la distribución normal, especialmente las relativas a la truncación de la cola superior de la distribución. En dicha consideración, se utilizan el diferencial de selección estandarizado (i) ″ y el umbral de selección estandarizado (z) ″ en lugar de las versiones "fenotípicas" anteriores. También se necesita la desviación estándar fenotípica (σ P(0) ) . Esto se describe en una sección posterior.
Por lo tanto, ΔG = (i σ P ) h 2 , donde (i σ P(0) ) = S previamente. [ 14 ] : 1710–181

El texto anterior señaló que ΔG disminuye sucesivamente porque el "insumo" [la varianza fenotípica (σ 2 P ) ] se reduce por la selección anterior. [ 14 ] : 1710–181 La heredabilidad también se reduce. Los gráficos de la izquierda muestran estas disminuciones a lo largo de diez ciclos de selección repetida durante los cuales se afirma la misma presión de selección. El avance genético acumulado ( ΣΔG ) ha alcanzado prácticamente su asíntota en la generación 6 en este ejemplo. Esta reducción depende en parte de las propiedades de truncamiento de la distribución normal y en parte de la heredabilidad junto con la determinación de la meiosis ( b 2 ) . Los dos últimos elementos cuantifican el grado en que el truncamiento es "compensado" por la nueva variación que surge de la segregación y el surtido durante la meiosis . [ 14 ] : 1710–181 [ 29 ] Esto se discutirá pronto, pero aquí observe el resultado simplificado para la fertilización aleatoria no dispersa (f = 0) .
Así pues : σ 2 P(1) = σ 2 P(0) [1 − i ( iz) 1 / 2 h 2 ] , donde i ( iz) = K = coeficiente de truncamiento y 1 / 2 h 2 = R = coeficiente de reproducción [ 14 ] : 1710–181 [ 29 ] Esto también se puede escribir como σ 2 P(1) = σ 2 P(0) [1 − KR ] , lo que facilita un análisis más detallado de los problemas de selección.
Aquí, i y z ya han sido definidos, 1/2 es la determinación de la meiosis ( b2 ) para f = 0 , y el símbolo restante es la heredabilidad. Estos se discuten con más detalle en las siguientes secciones. Nótese también que, de forma más general, R = b2 h2 . Si se utiliza la determinación general de la meiosis ( b2 ) , los resultados de la endogamia previa pueden incorporarse a la selección. La ecuación de la varianza fenotípica queda entonces como :
σ 2 P(1) = σ 2 P(0) [1 − i ( iz ) b 2 h 2 ] .
La varianza fenotípica truncada por el grupo seleccionado ( σ 2 P(S) ) es simplemente σ 2 P(0) [1 − K] , y su varianza génica contenida es (h 2 0 σ 2 P(S) ). Suponiendo que la selección no ha alterado la varianza ambiental , la varianza génica para la progenie puede aproximarse por σ 2 A(1) = ( σ 2 P(1) − σ 2 E ) . A partir de esto, h 2 1 = ( σ 2 A(1) / σ 2 P(1) ) . Se podrían hacer estimaciones similares para σ 2 G(1) y H 2 1 , o para σ 2 a(1) y h 2 eu(1) si fuera necesario.
ΔG alternativo
La siguiente reorganización es útil para considerar la selección en múltiples atributos (características). Comienza expandiendo la heredabilidad en sus componentes de varianza. ΔG = i σ P ( σ 2 A / σ 2 P ) . σ P y σ 2 P se cancelan parcialmente, dejando un único σ P . A continuación, el σ 2 A dentro de la heredabilidad se puede expandir como ( σ A × σ A ), lo que lleva a :

ΔG = i σ A ( σ A / σ P ) = i σ A h .
Se podrían realizar reordenamientos correspondientes utilizando las heredabilidades alternativas, dando ΔG = i σ G H o ΔG = i σ a h eu .
Modelos de adaptación poligénica en genética de poblaciones
Esta visión tradicional de la adaptación en genética cuantitativa proporciona un modelo de cómo el fenotipo seleccionado cambia con el tiempo, en función del diferencial de selección y la heredabilidad. Sin embargo, no ofrece información sobre (ni depende de) ninguno de los detalles genéticos, en particular, el número de loci involucrados, sus frecuencias alélicas y tamaños del efecto, y los cambios de frecuencia impulsados por la selección. Esto, en cambio, es el foco del trabajo sobre adaptación poligénica [ 65 ] dentro del campo de la genética de poblaciones . Estudios recientes han demostrado que rasgos como la altura han evolucionado en los humanos durante los últimos miles de años como resultado de pequeños cambios en la frecuencia alélica en miles de variantes que afectan la altura. [ 66 ] [ 67 ] [ 68 ]
Fondo
Selección estandarizada: la distribución normal
Toda la población base está delimitada por la curva normal [ 62 ] : 78–89 a la derecha. A lo largo del eje Z se encuentra cada valor del atributo de menor a mayor, y la altura desde este eje hasta la curva misma es la frecuencia del valor en el eje inferior. La ecuación para encontrar estas frecuencias para la curva "normal" (la curva de "experiencia común") se da en la elipse. Nótese que incluye la media ( μ ) y la varianza ( σ 2 ). Moviéndose infinitesimalmente a lo largo del eje z, las frecuencias de los valores vecinos se pueden "apilar" junto al anterior, acumulando así un área que representa la probabilidad de obtener todos los valores dentro de la pila. [Eso es integración del cálculo.] La selección se centra en dicha área de probabilidad, siendo la sombreada desde el umbral de selección (z) hasta el final de la cola superior de la curva. Esta es la presión de selección . El grupo seleccionado (los padres efectivos de la siguiente generación) incluye todos los valores fenotípicos desde z hasta el "final" de la cola. [ 69 ] La media del grupo seleccionado es μ s , y la diferencia entre ella y la media base ( μ ) representa el diferencial de selección (S) . Tomando integraciones parciales sobre secciones de curvas de interés, y reordenando el álgebra, se puede demostrar que el "diferencial de selección" es S = [ y (σ / Prob.)] , donde y es la frecuencia del valor en el "umbral de selección" z (la ordenada de z ). [ 13 ] : 226–230 Reordenando esta relación se obtiene S / σ = y / Prob. , cuyo lado izquierdo es, de hecho, el diferencial de selección dividido por la desviación estándar —es decir, el diferencial de selección estandarizado (i) . El lado derecho de la relación proporciona un "estimador" para i —la ordenada del umbral de selección dividida por la presión de selección . Se pueden utilizar las tablas de la distribución normal [ 52 ] : 547–548 , pero también están disponibles las tabulaciones de i en sí misma. [ 70 ] : 123–124Esta última referencia también proporciona valores de i ajustados para poblaciones pequeñas (400 o menos), [ 70 ] : 111-122 donde no se puede asumir la "cuasi-infinito" (pero se presumió en el esquema de "Distribución normal" anterior). El diferencial de selección estandarizado ( i ) también se conoce como intensidad de selección . [ 14 ] : 174, 186
Finalmente, puede ser útil un enlace cruzado con la terminología diferente en la subsección anterior: μ (aquí) = "P 0 " (allí), μ S = "P S " y σ 2 = "σ 2 P ".
Determinación de la meiosis: análisis de la vía reproductiva


La determinación meiótica (b 2 ) es el coeficiente de determinación de la meiosis, que es la división celular mediante la cual los progenitores generan gametos. Siguiendo los principios de la regresión parcial estandarizada , de la cual el análisis de trayectorias es una versión orientada gráficamente, Sewall Wright analizó las trayectorias del flujo genético durante la reproducción sexual y estableció las "fuerzas de contribución" ( coeficientes de determinación ) de varios componentes al resultado general. [ 29 ] [ 39 ] El análisis de trayectorias incluye correlaciones parciales , así como coeficientes de regresión parcial (estos últimos son los coeficientes de trayectoria ). Las líneas con una sola punta de flecha son trayectorias determinantes direccionales , y las líneas con doble punta de flecha son conexiones de correlación . El trazado de varias rutas según las reglas del análisis de trayectorias emula el álgebra de la regresión parcial estandarizada. [ 58 ]
El diagrama de trayectorias de la izquierda representa este análisis de la reproducción sexual. De sus elementos interesantes, el importante en el contexto de la selección es la meiosis . Ahí es donde ocurren la segregación y la distribución, los procesos que mitigan parcialmente la truncación de la varianza fenotípica que surge de la selección. Los coeficientes de trayectoria b son las trayectorias de la meiosis. Los etiquetados con a son las trayectorias de la fecundación. La correlación entre gametos del mismo progenitor ( g ) es la correlación meiótica . La que existe entre progenitores dentro de la misma generación es r A. La que existe entre gametos de diferentes progenitores ( f ) se conoció posteriormente como el coeficiente de endogamia . [ 13 ] : 64 Las comillas simples (') indican la generación (t-1) , y las no simples indican la generación t . Aquí se presentan algunos resultados importantes del presente análisis. Sewall Wright interpretó muchos de ellos en términos de coeficientes de endogamia. [ 29 ] [ 39 ]
La determinación de la meiosis ( b 2 ) es 1 / 2 (1+g) y es igual a 1 / 2 (1 + f (t-1) ) , lo que implica que g = f (t-1) . [ 71 ] Con fertilización aleatoria no dispersa, f (t-1) ) = 0, lo que da b 2 = 1 / 2 , como se usó en la sección de selección anterior. Sin embargo, conociendo su trasfondo, se pueden usar otros patrones de fertilización según sea necesario. Otra determinación también implica endogamia: la determinación de la fertilización ( a 2 ) es igual a 1 / [ 2 ( 1 + f t ) ] . También otra correlación es un indicador de endogamia: r A = 2 f t / ( 1 + f (t-1) ) , también conocido como el coeficiente de relación . [No confundir con el coeficiente de parentesco , nombre alternativo para el coeficiente de coascendencia . Véase la introducción a la sección "Relación".] Este coeficiente rA se repite en la subsección sobre dispersión y selección.
Estos vínculos con la endogamia revelan facetas interesantes sobre la reproducción sexual que no son inmediatamente evidentes. Los gráficos de la derecha representan los coeficientes de determinación de la meiosis y la singamia (fertilización) frente al coeficiente de endogamia. Allí se revela que a medida que aumenta la endogamia, la meiosis se vuelve más importante (el coeficiente aumenta), mientras que la singamia se vuelve menos importante. El papel general de la reproducción [el producto de los dos coeficientes anteriores— r 2 ] permanece igual. [ 72 ] Este aumento en b 2 es particularmente relevante para la selección porque significa que la truncación de la varianza fenotípica por selección se compensa en menor medida durante una secuencia de selecciones cuando va acompañada de endogamia (lo cual es frecuente).
Deriva genética y selección
Las secciones anteriores trataron la dispersión como un "auxiliar" de la selección , y se hizo evidente que ambas funcionan bien juntas. En genética cuantitativa, la selección se suele examinar de esta manera "biométrica", pero los cambios en las medias (monitorizados por ΔG) reflejan los cambios en las frecuencias alélicas y genotípicas subyacentes. La referencia a la sección sobre "deriva genética" nos recuerda que también afecta a los cambios en las frecuencias alélicas y genotípicas, y a las medias asociadas; y que este es el aspecto complementario de la dispersión considerada aquí ("la otra cara de la misma moneda"). Sin embargo, estas dos fuerzas de cambio de frecuencia rara vez actúan en conjunto, y a menudo pueden actuar de forma contraria. Una (la selección) es "direccional", impulsada por la presión selectiva que actúa sobre el fenotipo; la otra (la deriva genética) está impulsada por el "azar" en la fecundación (probabilidades binomiales de las muestras de gametos). Si ambas tienden a la misma frecuencia alélica, su "coincidencia" es la probabilidad de obtener esa muestra de frecuencias en la deriva genética; sin embargo, la probabilidad de que estén "en conflicto" es la suma de las probabilidades de todas las muestras de frecuencia alternativas . En casos extremos, una sola muestra de singamia puede revertir lo que la selección ha logrado, y las probabilidades de que esto ocurra están disponibles. Es importante tener esto en cuenta. Sin embargo, la deriva genética que resulta en frecuencias de muestra similares a las del objetivo de selección no conduce a un resultado tan drástico, sino que ralentiza el progreso hacia los objetivos de selección.
Atributos correlacionados
Al observar conjuntamente dos (o más) atributos ( por ejemplo, altura y masa), se puede notar que varían juntos a medida que los genes o los entornos cambian. Esta covariación se mide mediante la covarianza , que puede representarse con " cov " o con θ . [ 46 ] Será positiva si varían juntos en la misma dirección; o negativa si varían juntos pero en direcciones opuestas. Si los dos atributos varían independientemente entre sí, la covarianza será cero. El grado de asociación entre los atributos se cuantifica mediante el coeficiente de correlación (símbolo r o ρ ). En general, el coeficiente de correlación es la razón de la covarianza con respecto a la media geométrica [ 73 ] de las dos varianzas de los atributos. [ 62 ] : 196–198 Las observaciones suelen ocurrir en el fenotipo, pero en la investigación también pueden ocurrir en el "haplotipo efectivo" ( producto génico efectivo ) [véase la figura de la derecha]. Por lo tanto, la covarianza y la correlación podrían ser "fenotípicas" o "moleculares", o cualquier otra designación que permita un modelo de análisis. La covarianza fenotípica es la capa "más externa" y corresponde a la covarianza "habitual" en Biometría/Estadística. Sin embargo, puede ser particionada por cualquier modelo de investigación apropiado de la misma manera que se hizo con la varianza fenotípica. Para cada partición de la covarianza, existe una partición correspondiente de la correlación. Algunas de estas particiones se muestran a continuación. El primer subíndice (G, A, etc.) indica la partición. Los subíndices de segundo nivel (X, Y) son marcadores de posición para cualquier par de atributos.

El primer ejemplo es el fenotipo no particionado .
A continuación se presentan las particiones genéticas (a) "genotípica" (genotipo general), (b) "génica" (expectativas de sustitución) y (c) "alélica" (homocigoto).
(a)
(b)
(do)
Mediante un experimento diseñado adecuadamente, también se podría obtener una partición no genética (ambiental).
Causas subyacentes de la correlación
Existen diversas maneras en que puede surgir la correlación fenotípica. El diseño del estudio, el tamaño de la muestra, las estadísticas de la muestra y otros factores pueden influir en la capacidad de distinguirlas con mayor o menor confianza estadística. Cada uno de estos factores tiene una importancia científica distinta y es relevante para diferentes campos de trabajo.
Causalidad directa
Un fenotipo puede afectar directamente a otro, influyendo en el desarrollo, el metabolismo o el comportamiento.
Vías genéticas
Un gen o factor de transcripción común en las vías biológicas de ambos fenotipos puede dar lugar a una correlación.
Rutas metabólicas
Las vías metabólicas que van del gen al fenotipo son complejas y variadas, pero las causas de la correlación entre los atributos residen en ellas.
Factores de desarrollo y ambientales
Múltiples fenotipos pueden verse afectados por los mismos factores. Por ejemplo, existen muchos atributos fenotípicos correlacionados con la edad, por lo que la estatura, el peso, la ingesta calórica, la función endocrina y otros factores presentan una correlación. Un estudio que busque otros factores comunes debe descartar primero estos.
Genotipos correlacionados y presiones selectivas
Las diferencias entre subgrupos dentro de una población, entre poblaciones o los sesgos selectivos pueden significar que algunas combinaciones de genes estén sobrerrepresentadas en comparación con lo que se esperaría. [ 74 ] Si bien los genes pueden no tener una influencia significativa entre sí, aún puede existir una correlación entre ellos, especialmente cuando no se permite la mezcla de ciertos genotipos. Las poblaciones en proceso de divergencia genética o que ya la han experimentado pueden tener fenotipos característicos diferentes, [ 75 ] lo que significa que, al considerarlas en conjunto, aparece una correlación. Las cualidades fenotípicas en los humanos que dependen predominantemente de la ascendencia también producen correlaciones de este tipo. Esto también se puede observar en razas de perros donde varias características físicas conforman la distinción de una raza determinada y, por lo tanto, están correlacionadas. [ 76 ] El apareamiento selectivo , que es la presión selectiva sexual para aparearse con un fenotipo similar, puede resultar en que los genotipos permanezcan correlacionados más de lo esperado. [ 77 ]
Limitaciones
Algunos autores han analizado diversos aspectos de la genética cuantitativa que consideran limitantes. Entre ellos se incluyen el hecho de que muchos modelos genéticos cuantitativos asumen distribuciones gaussianas normales para los rasgos fenotípicos, una matriz de varianza-covarianza estable a lo largo del tiempo evolutivo y la linealidad de los parámetros genéticos cuantitativos. [ 78 ]
Véase también
Notas a pie de página y referencias
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- ↑ El artículo de Mendel G. y Bateson W. (1891), con comentarios adicionales de Bateson, se reimprime en: Sinnott EW; Dunn LC; Dobzhansky T. (1958). "Principles of genetics"; Nueva York, McGraw-Hill: 419-443. La nota al pie 3, página 422, identifica a Bateson como el traductor original y proporciona la referencia de dicha traducción.
- ↑ Un QTL es una región en el genoma del ADN que afecta o está asociada con rasgos fenotípicos cuantitativos.
- ↑ Watson, James D.; Gilman, Michael; Witkowski, Jan; Zoller, Mark (1998). ADN recombinante (Segunda edición (7.ª reimpresión) ). Nueva York: WH Freeman (Scientific American Books). ISBN 978-0-7167-1994-6.
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- ↑ A veces se utilizan otros símbolos, pero estos son los más comunes.
- ↑ El efecto alélico es la desviación fenotípica promedio del homocigoto respecto al punto medio de los dos fenotipos homocigotos contrastantes en un locus, cuando se observa en el infinito de todos los genotipos y entornos de fondo. En la práctica, las estimaciones de muestras grandes e imparciales sustituyen a este parámetro.
- ↑ El efecto de dominancia es la desviación fenotípica promedio del heterocigoto respecto al punto medio entre los dos homocigotos en un locus, cuando se observa en el infinito de todos los genotipos y entornos de fondo. En la práctica, las estimaciones de muestras grandes e imparciales sustituyen a este parámetro.
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- ↑ Sin embargo,una generación F2 derivada de individuos F1 que se autofecundan (una generación F2 autógama ) no es el origen de una estructura poblacional de fecundación aleatoria. Véase Gordon (2001).
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- ↑ En ética científica, un descubrimiento suele llevar el nombre de la primera persona que lo propuso. Sin embargo, parece que Castle fue olvidado: y cuando se redescubrió, el nombre "Hardy-Weinberg" era tan común que parecía demasiado tarde para actualizarlo. ¿Quizás el equilibrio "Castle-Hardy-Weinberg" sería una buena solución intermedia?
- 1 2 Walton, Andy; Aylward, Alex; Thomas, Mark G; Rutherford, Adam (2025). "La historia del concepto de población panmíctica y su legado en la genética de poblaciones contemporánea" . Annals of Human Genetics . 89 (5): 274– 284. doi : 10.1111/ahg.70015 . PMC 12336970. PMID 40719227 .
- ↑ La panmixia requiere una fertilización aleatoria con respecto a cualquier rasgo físico posible. Una fertilización aleatoria resultante de un apareamiento aleatorio que ignore los rasgos podría generar un sesgo hacia rasgos particulares.
- 1 2 Gordon, Ian L. (1999). "Genética cuantitativa de híbridos intraespecíficos" . Heredity . 83 (6): 757– 764. Bibcode : 1999Hered..83..757G . doi : 10.1046/j.1365-2540.1999.00634.x . PMID 10651921 .
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- 1 2 Cochran, William G. (1977). Técnicas de muestreo (Tercera ed.). Nueva York: John Wiley & Sons.
- ↑ Esto se detalla posteriormente en la sección de variaciones genotípicas.
- ↑ Ambos se utilizan comúnmente.
- ↑ Véanse las citas anteriores.
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- 1 2 Esto se lee como "σ 2 p y/o σ 2 q ". Como p y q son complementarios, σ 2 p ≡ σ 2 q y σ 2 p = σ 2 q .
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- ↑ La fecundación aleatoria se refiere a un patrón de reproducción, al cual la fecundación cruzada puede o no ajustarse. La fecundación cruzada contrasta con la autofecundación .
- ↑ Recuerda que el problema de la auto/alo-cigosidad solo puede surgir para alelos homólogos (es decir, A y A , o a y a ), y no paraalelos no homólogos ( A y a ), que no pueden tener el mismo origen alélico .
- ↑ Es común usar "α" en lugar de "β" para esta magnitud (por ejemplo, en las referencias ya citadas). Aquí se usa esta última para minimizar cualquier confusión con "a", que también aparece con frecuencia en estas mismas ecuaciones.
- 1 2 3 4 Mather, Kenneth; Jinks, John L. (1971). Genética biométrica (2.ª ed.). Londres: Chapman & Hall. ISBN 0-412-10220-X.
- ↑ En la terminología de Mather, la fracción que precede a la letra forma parte de la etiqueta del componente.
- ↑ En cada línea de estas ecuaciones, los componentes se presentan en el mismo orden. Por lo tanto, la comparación vertical por componente proporciona la definición de cada uno en diversas formas. Los componentes de Mather se han traducido así a símbolos de Fisher, facilitando así su comparación. La traducción también se ha derivado formalmente. Véase Gordon 2003.
- 1 2 La covarianza es la covariabilidad entre dos conjuntos de datos. Al igual que la varianza, se basa en una suma de productos cruzados (SCP) en lugar de una suma de cuadrados (SS). Por lo tanto, queda claro que la varianza no es más que una forma especial de la covarianza.
- ↑ Hayman, BI (1960). " La teoría y el análisis del cruce dialélico. III" . Genetics . 45 (2): 155– 172. doi : 10.1093/genetics/45.2.155 . PMC 1210041. PMID 17247915 .
- ↑ Se ha observado que cuando p = q , o cuando d = 0, β [= a+(qp)d] se "reduce" a a. En tales circunstancias, σ²A = σ²a , pero solo numéricamente . Todavía no se han convertido en la misma identidad . Esto sería una falacia similar a la señalada anteriormente para las "desviaciones de sustitución" consideradas como la "dominancia" para el modelo genético.
- ↑ Las citas de apoyo ya se han proporcionado en las secciones anteriores.
- ↑ Fisher señaló que estos residuos surgían a través de los efectos de dominancia, pero se abstuvo de definirlos como la "varianza de dominancia". (Véanse las citas anteriores). Remítase nuevamente a las discusiones previas aquí expuestas.
- ↑ Al considerar los orígenes de los términos: Fisher también propuso la palabra "varianza" para esta medida de variabilidad. Véase Fisher (1999), pág. 311 y Fisher (1918).
- 1 2 3 4 Snedecor, George W.; Cochran, William G. (1967). Métodos estadísticos (Sexta ed.). Ames: Iowa State University Press. ISBN 0-8138-1560-6.
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- ↑ Es práctica común no usar subíndices en la varianza del "error" experimental.
- ↑In biometry, it is a variance-ratio in which a part is expressed as a fraction of the whole: that is, a coefficient of determination. Such coefficients are used particularly in regression analysis. A standardized version of regression analysis is path analysis. Here, standardizing means that the data were first divided by their own experimental standard errors to unify the scales for all attributes. This genetical usage is another major appearance of coefficients of determination.
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- ↑In the past, both forms of parent-offspring covariance have been applied to this task of estimating h2, but, as noted in the sub-section above, only one of them (cov(MPO)) is actually appropriate. The cov(PO) is useful, however, for estimating H2 as seen in the main text following.
- ↑Note that texts that ignore the dominance component of cov(HS) erroneously suggest that rHS "approximates" ( 1/4 h2 ).
- ↑Pritchard, Jonathan K.; Pickrell, Joseph K.; Coop, Graham (23 February 2010). "The genetics of human adaptation: hard sweeps, soft sweeps, and polygenic adaptation". Current Biology. 20 (4): R208–215. Bibcode:2010CBio...20.R208P. doi:10.1016/j.cub.2009.11.055. ISSN 1879-0445. PMC 2994553. PMID 20178769.
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- ↑Theoretically, the tail is infinite, but in practice there is a quasi-end.
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- ↑Notice that this b2 is the coefficient of parentage (fAA) of Pedigree analysis re-written with a "generation level" instead of an "A" inside the parentheses.
- ↑There is a small "wobble" arising from the fact that b2 alters one generation behind a2—examine their inbreeding equations.
- ↑Estimated as the square-root of their product.
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Further reading
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- Seykora, Tony. Ciencia Animal 3221 Cría Animal. Tecnología. Minneapolis: Universidad de Minnesota, 2011. Impreso.
Enlaces externos
- La ecuación del criador
- Recursos de genética cuantitativa de Michael Lynch y Bruce Walsh , incluidos los dos volúmenes de su libro de texto, Genética y análisis de rasgos cuantitativos y Evolución y selección de rasgos cuantitativos .
- Recursos de Nick Barton et al. . del libro de texto, Evolución .
- La matriz G en línea
- Genética cuantitativa