Articulo de referencia

Metabolismo ácido de las crasuláceas

La piña es un ejemplo de planta CAM. El metabolismo ácido de las crasuláceas , también conocido como fotosíntesis CAM , es una vía de fijación de carbono que evolucionó en algun...

La piña es un ejemplo de planta CAM.

El metabolismo ácido de las crasuláceas , también conocido como fotosíntesis CAM , es una vía de fijación de carbono que evolucionó en algunas plantas como una adaptación a condiciones áridas [ 1 ] que permite a una planta fotosintetizar durante el día, pero solo intercambiar gases por la noche. En una planta que utiliza CAM completo, los estomas en las hojas permanecen cerrados durante el día para reducir la evapotranspiración , pero se abren por la noche para captar dióxido de carbono ( CO₂ ) y permitir que se difunda en las células del mesófilo . El CO₂ se almacena como ácido málico de cuatro carbonos en las vacuolas durante la noche, y luego , durante el día, el malato se transporta a los cloroplastos donde se convierte de nuevo en CO₂ , que luego se utiliza durante la fotosíntesis. El CO₂ precapturado se concentra alrededor de la enzima RuBisCO , aumentando la eficiencia fotosintética . Este mecanismo de metabolismo ácido se descubrió por primera vez en plantas de la familia Crassulaceae .

Antecedentes históricos

Las primeras observaciones relacionadas con CAM fueron realizadas por de Saussure en 1804 en sus Recherches Chimiques sur la Végétation . [ 2 ] Benjamin Heyne en 1812 notó que las hojas de Bryophyllum en la India eran ácidas por la mañana e insípidas por la tarde. [ 3 ] Estas observaciones fueron estudiadas más a fondo y refinadas por Aubert, E. en 1892 en sus Recherches physiologiques sur les plantes grasses y desarrolladas por Richards, HM 1915 en Acidity and Gas Interchange in Cacti , Carnegie Institution. El término CAM puede haber sido acuñado por Ranson y Thomas en 1940, pero no fueron los primeros en descubrir este ciclo. Fue observado por los botánicos Ranson y Thomas, en la familia de suculentas Crassulaceae (que incluye plantas de jade y Sedum ). [ 4 ] El nombre "metabolismo ácido de las crasuláceas" se refiere al metabolismo ácido en las crasuláceas, y no al metabolismo del "ácido crasuláceo"; no existe ningún compuesto químico con ese nombre.

Descripción general: un ciclo de dos partes

Descripción general de CAM

El CAM es una adaptación que permite un uso más eficiente del agua, por lo que se encuentra típicamente en plantas que crecen en condiciones áridas. [ 5 ] (El CAM se encuentra en más del 99 % de las 1700 especies conocidas de Cactaceae y en casi todos los cactus que producen frutos comestibles). [ 6 ]

Durante la noche

Durante la noche, una planta que utiliza el metabolismo CAM mantiene sus estomas abiertos, lo que permite la entrada de CO₂ y su fijación como ácidos orgánicos mediante una reacción PEP similar a la vía C₄ . Los ácidos orgánicos resultantes se almacenan en vacuolas para su uso posterior, ya que el ciclo de Calvin no puede funcionar sin ATP y NADPH , productos de reacciones dependientes de la luz que no tienen lugar durante la noche. [ 7 ]

Gráfico nocturno de CO 2 absorbido por una planta CAM

Durante el día

Durante el día, los estomas se cierran para conservar agua y los ácidos orgánicos que almacenan CO₂ se liberan de las vacuolas de las células del mesófilo. Una enzima en el estroma de los cloroplastos libera el CO₂ , que ingresa al ciclo de Calvin para que pueda tener lugar la fotosíntesis. [ 8 ]

Beneficios

El beneficio más importante del metabolismo CAM para la planta es la capacidad de mantener la mayoría de los estomas de las hojas cerrados durante el día. [ 9 ] Las plantas que emplean el metabolismo CAM son más comunes en ambientes áridos, donde el agua escasea. Poder mantener los estomas cerrados durante la parte más calurosa y seca del día reduce la pérdida de agua por evapotranspiración , lo que permite que estas plantas crezcan en ambientes que de otro modo serían demasiado secos. Las plantas que utilizan únicamente la fijación de carbono C 3 , por ejemplo, pierden el 97% del agua que absorben a través de las raíces por transpiración, un alto costo que evitan las plantas capaces de emplear el metabolismo CAM. [ 10 ]

Comparación con el metabolismo de C4

CAM recibe su nombre de la familia Crassulaceae , a la que pertenece la planta de jade .

La vía C4 guarda similitud con el CAM; ambas actúan concentrando CO₂ alrededor de la RuBisCO , aumentando así su eficiencia. El CAM lo concentra temporalmente, proporcionando CO₂ durante el día y no por la noche, cuando la respiración es la reacción dominante. Las plantas C4 , en cambio, concentran el CO₂ espacialmente, con un centro de reacción de RuBisCO en una " célula de la vaina vascular " inundado de CO₂ . Debido a la inactividad requerida por el mecanismo CAM, la fijación de carbono C4 tiene una mayor eficiencia en términos de síntesis de PGA .

Existen algunas especies intermedias C4 / CAM , como Peperomia camptotricha , Portulaca oleracea y Portulaca grandiflora . Anteriormente se pensaba que las dos vías de fotosíntesis en estas plantas podían ocurrir en las mismas hojas, pero no en las mismas células, y que no podían acoplarse, sino solo coexistir. [ 11 ] Sin embargo, ahora se sabe que, al menos en algunas especies como Portulaca oleracea , la fotosíntesis C4 y CAM están completamente integradas dentro de las mismas células, y que los metabolitos generados por CAM se incorporan directamente al ciclo C4 . [ 12 ]

Bioquímica

Bioquímica de CAM

Las plantas con metabolismo CAM deben controlar el almacenamiento de CO 2 y su reducción a carbohidratos ramificados en el espacio y el tiempo.

A bajas temperaturas (frecuentemente por la noche), las plantas que utilizan CAM abren sus estomas , las moléculas de CO₂ se difunden en los espacios intracelulares del mesófilo esponjoso y luego en el citoplasma . Allí , pueden encontrarse con fosfoenolpiruvato (PEP), que es una triosa fosforilada . Durante este tiempo, las plantas están sintetizando una proteína llamada PEP carboxilasa quinasa (PEP-C quinasa), cuya expresión puede ser inhibida por altas temperaturas (frecuentemente durante el día) y la presencia de malato . La PEP-C quinasa fosforila su enzima diana , la PEP carboxilasa (PEP-C). La fosforilación aumenta drásticamente la capacidad de la enzima para catalizar la formación de oxalacetato , que puede ser transformado posteriormente en malato por la NAD⁺ malato deshidrogenasa . El malato es luego transportado a través de lanzaderas de malato a la vacuola, donde se convierte en su forma de almacenamiento, el ácido málico . A diferencia de la PEP-C quinasa, la PEP-C se sintetiza continuamente, pero su actividad se ve prácticamente inhibida durante el día, ya sea por desfosforilación mediante la PEP-C fosfatasa o directamente por unión al malato. Esto último no es posible a bajas temperaturas, puesto que el malato se transporta eficazmente a la vacuola, mientras que la PEP-C quinasa revierte fácilmente la desfosforilación.

Durante el día, las plantas que utilizan el metabolismo CAM cierran sus células guardianas y liberan malato, que posteriormente se transporta a los cloroplastos. Allí, según la especie vegetal, se hidroliza en piruvato y CO₂ mediante la enzima málica o la PEP carboxiquinasa . El CO₂ se introduce entonces en el ciclo de Calvin, un sistema enzimático acoplado y autorrecuperable , que se utiliza para sintetizar carbohidratos ramificados. El piruvato, un subproducto, puede degradarse aún más en el ciclo del ácido cítrico mitocondrial , proporcionando así moléculas adicionales de CO₂ para el ciclo de Calvin. El piruvato también puede utilizarse para recuperar PEP mediante la piruvato fosfato diquinasa , un paso de alta energía que requiere ATP y un fosfato adicional . Durante la siguiente noche fría, el PEP se exporta finalmente al citoplasma, donde participa en la fijación de dióxido de carbono a través del malato.

Uso por las plantas

Sección transversal de una planta CAM (metabolismo ácido de las crasuláceas), específicamente de una hoja de agave . Se muestran los haces vasculares . Dibujo basado en imágenes microscópicas cortesía del Departamento de Ciencias Vegetales de la Universidad de Cambridge.

Las plantas utilizan el metabolismo CAM en distintos grados. Algunas son "plantas CAM obligadas", es decir , utilizan únicamente el metabolismo CAM en la fotosíntesis, aunque varían en la cantidad de CO₂ que pueden almacenar como ácidos orgánicos; en función de esto, a veces se las divide en plantas "CAM fuertes" y "CAM débiles". Otras plantas presentan un "mecanismo CAM inducible", en el que pueden alternar entre el uso del mecanismo C₃ o C₄ y el metabolismo CAM dependiendo de las condiciones ambientales. Otro grupo de plantas emplea el "ciclo CAM", en el que sus estomas no se abren por la noche; en su lugar, las plantas reciclan el CO₂ producido por la respiración y almacenan parte de él durante el día. [ 5 ]

Las plantas que muestran metabolismo CAM inducible y ciclo CAM se encuentran típicamente en condiciones donde los períodos de escasez de agua se alternan con períodos de agua disponible en abundancia. La sequía periódica, característica de las regiones semiáridas, es una causa de la escasez de agua. Las plantas que crecen sobre árboles o rocas (como epífitas o litófitas ) también experimentan variaciones en la disponibilidad de agua. La salinidad, los altos niveles de luz y la disponibilidad de nutrientes son otros factores que se ha demostrado que inducen el metabolismo CAM. [ 5 ]

Dado que el metabolismo CAM es una adaptación a condiciones áridas, las plantas que lo utilizan suelen presentar otros rasgos xerófitos , como hojas gruesas y reducidas con una baja relación superficie -volumen; cutícula gruesa ; y estomas hundidos en cavidades. Algunas pierden sus hojas durante la estación seca; otras (las suculentas [ 13 ] ) almacenan agua en vacuolas . El metabolismo CAM también provoca diferencias de sabor: las plantas pueden tener un sabor cada vez más ácido durante la noche, pero volverse más dulces durante el día. Esto se debe a que el ácido málico se almacena en las vacuolas de las células de las plantas durante la noche y luego se consume durante el día. [ 14 ]

CAM acuático

La fotosíntesis CAM también se encuentra en especies acuáticas en al menos 4 géneros, incluidos: Isoetes , Crassula , Littorella , Sagittaria y posiblemente Vallisneria , [ 15 ] encontrándose en una variedad de especies, por ejemplo, Isoetes howellii , Crassula aquatica .

Estas plantas siguen el mismo patrón de acumulación ácida nocturna y desacidificación diurna que las especies terrestres CAM. [ 16 ] Sin embargo, la razón del CAM en las plantas acuáticas no se debe a la falta de agua disponible, sino a un suministro limitado de CO 2 . [ 15 ] El CO 2 es limitado debido a la lenta difusión en el agua, 10 000 veces más lenta que en el aire. El problema es especialmente agudo bajo pH ácido, donde la única especie de carbono inorgánico presente es el CO 2 , sin suministro disponible de bicarbonato o carbonato.

Las plantas acuáticas CAM capturan carbono por la noche, cuando este abunda debido a la falta de competencia de otros organismos fotosintéticos. [ 16 ] Esto también resulta en una menor fotorrespiración debido a la menor cantidad de oxígeno generado fotosintéticamente.

El metabolismo CAM acuático es más pronunciado en los meses de verano, cuando hay mayor competencia por el CO₂ , en comparación con los meses de invierno. Sin embargo, en los meses de invierno el CAM sigue desempeñando un papel importante. [ 17 ]

Distribución ecológica y taxonómica de las plantas que utilizan CAM.

El CAM ha evolucionado convergentemente muchas veces en plantas vasculares y no representa un único linaje evolutivo. [ 18 ] Los estudios comparativos indican que la evolución del CAM generalmente implica modificaciones a las vías fotosintéticas existentes en lugar de la evolución de enzimas completamente nuevas, ya que muchas de las enzimas requeridas para el CAM ya están presentes en las plantas C 3. [ 19 ] Los orígenes repetidos del CAM se asocian comúnmente con cambios en cuándo y dónde se expresan estas enzimas, incluyendo cambios en los patrones circadianos diarios de actividad génica y diferencias en la expresión entre tejidos. [ 20 ] Los estudios genómicos en algunos linajes de CAM muestran que la expansión de familias de genes involucradas en la fijación de carbono y el metabolismo de ácidos orgánicos puede acompañar la evolución del CAM, lo que sugiere que la duplicación génica puede facilitar transiciones evolutivas repetidas a esta vía. [ 21 ] La evolución del CAM también está fuertemente asociada con linajes de plantas que poseen rasgos como la suculencia y grandes vacuolas, que permiten el almacenamiento de ácidos orgánicos producidos durante la fijación nocturna de carbono. [ 22 ]

La mayoría de las plantas que poseen CAM son epífitas (p. ej., orquídeas, bromelias) o xerófitas suculentas (p. ej., cactus, cactoides Euphorbia s), pero la CAM también se encuentra en hemiepífitas (p. ej., Clusia ); litofitas (p. ej., Sedum , Sempervivum ); bromelias terrestres; plantas de humedales (p. ej., Isoetes , Crassula ( Tillaea ), Lobelia ); [ 23 ] y en una halófita , Mesembryanthemum crystallinum ; una planta terrestre no suculenta ( Dodonaea viscosa ) y una asociada de manglar ( Sesuvium portulacastrum ).

Los únicos árboles que pueden realizar CAM son del género Clusia ; [ 24 ] especies que se encuentran en toda América Central , América del Sur y el Caribe . En Clusia , CAM se encuentra en especies que habitan nichos ecológicos más cálidos y secos, mientras que las especies que viven en bosques montanos más fríos tienden a ser C 3 . [ 25 ] Además, algunas especies de Clusia pueden cambiar temporalmente su fisiología fotosintética de C 3 a CAM, un proceso conocido como CAM facultativo. Esto permite que estos árboles se beneficien de las elevadas tasas de crecimiento de la fotosíntesis C 3 , cuando el agua es abundante, y de la naturaleza tolerante a la sequía de CAM, cuando ocurre la estación seca.

Entre las plantas que pueden alternar entre diferentes métodos de fijación de carbono se encuentran Portulacaria afra , más conocida como planta de jade enana, que normalmente utiliza la fijación C3 pero puede utilizar CAM si sufre estrés hídrico, [ 26 ] y Portulaca oleracea , más conocida como verdolaga, que normalmente utiliza la fijación C4 pero también puede cambiar a CAM cuando sufre estrés hídrico. [ 27 ]

El CAM se presenta en aproximadamente 16 000 especies de más de 300 géneros y alrededor de 40 familias, aunque es probable que esta cifra sea una subestimación debido a la presencia de CAM débil o facultativo en muchas especies. [ 28 ] La mayoría de las plantas CAM son plantas con flores, pero el CAM también ha evolucionado de forma independiente en algunos helechos, Gnetopsida y isoetes, incluyendo Isoetes taiwanensis , cuyo genoma proporciona evidencia de un origen independiente del CAM fuera de las angiospermas. [ 29 ]

La siguiente lista resume la distribución taxonómica de las plantas con CAM:

Véase también

Referencias

  1. C. Michael Hogan. 2011. Respiración . Enciclopedia de la Tierra. Eds. Mark McGinley y CJcleveland. Consejo Nacional para la Ciencia y el Medio Ambiente. Washington D. C.
  2. de Saussure T. (1804). Busque chimeneas en la vegetación . París: Nyon.
  3. Bonner W, Bonner J (1948). "El papel del dióxido de carbono en la formación de ácido por plantas suculentas". American Journal of Botany . 35 (2): 113– 117. doi : 10.2307/2437894 . JSTOR 2437894 . 
  4. Ranson SL, Thomas M (1960). "Metabolismo ácido de las crasuláceas" (PDF) . Annual Review of Plant Physiology . 11 (1): 81– 110. doi : 10.1146/annurev.pp.11.060160.000501 . hdl : 10150/552219 .
  5. 1 2 3 Herrera A (2008), "Metabolismo ácido de las crasuláceas y aptitud bajo estrés por déficit hídrico: si no es para la ganancia de carbono, ¿para qué sirve el CAM facultativo?", Annals of Botany , 103 (4): 645– 653, doi : 10.1093/aob/mcn145 , PMC 2707347 , PMID 18708641  
  6. La Enciclopedia de Frutas y Frutos Secos . CABI. 2008. pág. 218. 
  7. Forseth I (2010). "La ecología de las vías fotosintéticas" . Proyecto de conocimiento . Educación sobre la naturaleza . Consultado el 6 de marzo de 2021. En esta vía, los estomas se abren por la noche, lo que permite que el CO2 se difunda en la hoja para combinarse con el PEP y formar malato. Este ácido se almacena en grandes vacuolas centrales hasta el día.
  8. 1 2 3 Lüttge U (junio de 2004). "Ecofisiología del metabolismo ácido de las crasuláceas (CAM)" . Annals of Botany . 93 (6): 629– 652. doi : 10.1093/aob/mch087 . PMC 4242292. PMID 15150072 .  
  9. Ting IP (1985). "Metabolismo ácido de las crasuláceas" (PDF) . Annual Review of Plant Physiology . 36 (1): 595– 622. doi : 10.1146/annurev.pp.36.060185.003115 . hdl : 10150/552219 .
  10. Raven JA, Edwards D (marzo de 2001). "Raíces: orígenes evolutivos y significado biogeoquímico" . Journal of Experimental Botany . 52 (número especial): 381–401 . doi : 10.1093/jexbot/52.suppl_1.381 . PMID 11326045 . 
  11. Lüttge U (junio de 2004). "Ecofisiología del metabolismo ácido de las crasuláceas (CAM)" . Annals of Botany . 93 (6): 629– 652. doi : 10.1093/aob/mch087 . PMC 4242292. PMID 15150072 .  
  12. Moreno-Villena JJ, Zhou H, Gilman IS, Tausta SL, Cheung CY, Edwards EJ (agosto de 2022). " Resolución espacial de un metabolismo fotosintético integrado C 4 +CAM" . Science Advances . 8 (31) eabn2349. Bibcode : 2022SciA....8N2349M . doi : 10.1126/sciadv.abn2349 . PMC 9355352. PMID 35930634 .  
  13. Smith SD, Monson RK, Anderson JE, Smith SD, Monson RK, Anderson JE (1997). "Suculentas CAM". Ecología fisiológica de las plantas del desierto norteamericano . Adaptaciones de los organismos del desierto. págs. 125–140 . doi : 10.1007/978-3-642-59212-6_6 . ISBN  978-3-642-63900-5.
  14. Raven, P & Evert, R & Eichhorn, S, 2005, "Biología de las plantas" (séptima edición), pág. 135 (Figura 7-26), WH Freeman and Company Publishers ISBN 0-7167-1007-2
  15. 1 2 Keeley J (1998). "Fotosíntesis CAM en plantas acuáticas sumergidas" . Botanical Review . 64 (2): 121– 175. Bibcode : 1998BotRv..64..121K . doi : 10.1007/bf02856581 . S2CID 5025861 . 
  16. 1 2 Keeley JE, Busch G (octubre de 1984). " Características de asimilación de carbono de la planta acuática CAM, Isoetes howellii" . Plant Physiology . 76 (2): 525– 530. doi : 10.1104/pp.76.2.525 . PMC 1064320. PMID 16663874 .  
  17. Klavsen SK, Madsen TV (septiembre de 2012). "Variación estacional en el metabolismo ácido de las crasuláceas por el isoétido acuático Littorella uniflora". Photosynthesis Research . 112 (3): 163– 173. Bibcode : 2012PhoRe.112..163K . doi : 10.1007/s11120-012-9759-0 . PMID 22766959 . S2CID 17160398 .  
  18. Keeley, Jon E.; Rundel, Philip W. (2003). "Evolución de los mecanismos CAM y C₄ de concentración de carbono". International Journal of Plant Sciences . 164 (S3): S55– S77. doi : 10.1086/374192 .
  19. Dodd, Andrew N.; Borland, Anne M.; Haslam, Rachael P.; Griffiths, Howard; Maxwell, Kate (2002). "Metabolismo ácido de las crasuláceas: plástico, fantástico". Journal of Experimental Botany . 53 (369): 569– 580. doi : 10.1093/jexbot/53.369.569 .
  20. Edwards, Erika J. (2019). "Trayectorias evolutivas, accesibilidad y otras metáforas: el caso de la fotosíntesis CAM". New Phytologist . 223 (4): 1742– 1755. doi : 10.1111/nph.15839 . PMID 30972836 . 
  21. Groot Crego, Clara; Hess, Jaqueline; Yardeni, Gil; de La Harpe, Marylaure; Priemer, Clara; Beclin, Francesca; Saadain, Sarah; Cauz-Santos, Luiz A.; Temsch, Eva M.; Weiss-Schneeweiss, Hanna; Barfuss, Michael HJ; Till, Walter; Weckwerth, Wolfram; Heyduk, Karolina; Lexer, Christian (2024). "La evolución CAM está asociada con la expansión de la familia de genes en una radiación explosiva de bromelias" . The Plant Cell . 36 (10): 4109– 4131. doi : 10.1093/plcell/koae130 . PMC 11449062 . 
  22. Dodd, Andrew N.; Borland, Anne M.; Haslam, Rachael P.; Griffiths, Howard; Maxwell, Kate (2002). "Metabolismo ácido de las crasuláceas: plástico, fantástico". Journal of Experimental Botany . 53 (369): 569– 580. doi : 10.1093/jexbot/53.369.569 .
  23. Keddy PA (2010). Ecología de los humedales: principios y conservación . Cambridge, Reino Unido: Cambridge University Press. pág. 26. ISBN  978-0-521-73967-2.
  24. Lüttge, Ulrich (2006). "Flexibilidad fotosintética y plasticidad ecofisiológica: preguntas y lecciones de Clusia, el único árbol CAM, en el neotrópico" . New Phytologist . 171 (1): 7– 25. Bibcode : 2006NewPh.171....7L . doi : 10.1111/j.1469-8137.2006.01755.x . ISSN 0028-646X . PMID 16771979 .  
  25. Leverett A, Hurtado Castaño N, Ferguson K, Winter K, Borland AM (junio de 2021). "El metabolismo ácido de las crasuláceas (CAM) reemplaza el punto de pérdida de turgencia (TLP) como una adaptación importante a través de un gradiente de precipitación, en el género Clusia". Functional Plant Biology . 48 (7): 703–716 . doi : 10.1071/FP20268 . PMID 33663679. S2CID 232121559 .  
  26. Guralnick LJ, Ting IP (octubre de 1987). "Cambios fisiológicos en Portulacaria afra (L.) Jacq. durante una sequía estival y posterior riego" . Plant Physiology . 85 (2): 481–486 . doi : 10.1104/pp.85.2.481 . PMC 1054282. PMID 16665724 .  
  27. Koch KE, Kennedy RA (abril de 1982). "Metabolismo ácido de las crasuláceas en la dicotiledónea suculenta C(4), Portulaca oleracea L. bajo condiciones ambientales naturales" . Plant Physiology . 69 (4): 757–761 . doi : 10.1104/pp.69.4.757 . PMC 426300. PMID 16662291 .  
  28. Dodd AN, Borland AM, Haslam RP, Griffiths H, Maxwell K (2002). "Metabolismo ácido de las crasuláceas: plástico, fantástico". Journal of Experimental Botany . 53 (369): 569– 580. doi : 10.1093/jexbot/53.369.569 .
  29. Wickell D, Kuo LY, Yang HP, Dhabalia Ashok A, Irisarri I, Dadras A, de Vries S, de Vries J, Huang YM, Li Z, Barker MS, Hartwick NT, Michael TP, Li FW (2021). "Fotosíntesis CAM subacuática dilucidada por el genoma de Isoetes" . Nature Communications . 12 (1): 6348. doi : 10.1038/s41467-021-26644-7 . PMC 8566536 . 
  30. 1 2 Boston HL, Adams MS (1983). "Evidencia de metabolismo ácido de crustáceos en dos isoétidos norteamericanos" . Aquatic Botany . 15 (4): 381– 386. Bibcode : 1983AqBot..15..381B . doi : 10.1016/0304-3770(83)90006-2 .
  31. Holtum JA, Winter K (1999). "Grados de metabolismo ácido de las crasuláceas en helechos epífitos y litófitos tropicales". Australian Journal of Plant Physiology . 26 (8): 749. Bibcode : 1999FunPB..26..749H . doi : 10.1071/PP99001 .
  32. Wong SC, Hew CS (1976). "Resistencia difusiva, acidez titulable y fijación de CO2 en dos helechos epífitos tropicales" . American Fern Journal . 66 (4): 121– 124. Bibcode : 1976AmFJ...66..121W . doi : 10.2307/1546463 . JSTOR 1546463 . 
  33. 1 2 Metabolismo ácido de las crasuláceas Archivado el 9 de junio de 2007 en Wayback Machine
  34. "Resumen de Carter & Martin, La ocurrencia del metabolismo ácido de las crasuláceas entre epífitas en una región de alta pluviosidad de Costa Rica, Selbyana 15(2): 104-106 (1994)" . Archivado del original el 18 de junio de 2009. Consultado el 24 de febrero de 2008 .
  35. Martin SL, Davis R, Protti P, Lin TC, Lin SH, Martin CE (2005). "La ocurrencia del metabolismo ácido de las crasuláceas en helechos epífitos, con énfasis en las Vittariaceae". International Journal of Plant Sciences . 166 (4): 623– 630. Bibcode : 2005IJPlS.166..623M . doi : 10.1086/430334 . hdl : 1808/9895 . S2CID 67829900 . 
  36. ^ Vovides AP, Etherington JR, Dresser PQ, Groenhof A, Iglesias C, Ramírez JF (2002). "Ciclo CAM en la cícada Dioon edule Lindl. En su hábitat natural de bosque tropical caducifolio en el centro de Veracruz, México" . Revista botánica de la Sociedad Linneana . 138 (2): 155– 162. doi : 10.1046/j.1095-8339.2002.138002155.x .
  37. Schulze ED, Ziegler H, Stichler W (diciembre de 1976). "Control ambiental del metabolismo ácido de las crasuláceas en Welwitschia mirabilis Hook. Fil. en su área de distribución natural en el desierto de Namib". Oecologia . 24 (4): 323– 334. Bibcode : 1976Oecol..24..323S . doi : 10.1007/BF00381138 . PMID 28309109 . S2CID 11439386 .  
  38. ^ Eller, BM; von Willert, DJ; Brinckmann, E.; Baasch, R. (1983). "Estudios ecofisiológicos sobre Welwitschia mirabilis en el desierto de Namib" . Revista Sudafricana de Botánica . 2 (3): 209– 223. Bibcode : 1983SAJB....2..209E . doi : 10.1016/S0022-4618(16)30110-3 .
  39. Sipes DL, Ting IP (enero de 1985). "Metabolismo ácido de las crasuláceas y modificaciones del metabolismo ácido de las crasuláceas en Peperomia camptotricha" . Plant Physiology . 77 (1): 59– 63. doi : 10.1104/pp.77.1.59 . PMC 1064456. PMID 16664028 .  
  40. Chu C, Dai Z, Ku MS, Edwards GE (julio de 1990). "Inducción del metabolismo ácido de las crasuláceas en la halófita facultativa Mesembryanthemum crystallinum por ácido abscísico" . Plant Physiology . 93 (3): 1253–1260 . doi : 10.1104/pp.93.3.1253 . PMC 1062660. PMID 16667587 .  
  41. Nobel PS, Hartsock TL (abril de 1986). "Absorción de CO(2) en hojas y tallos en las tres subfamilias de las Cactáceas" . Plant Physiology . 80 (4): 913– 917. doi : 10.1104/pp.80.4.913 . PMC 1075229. PMID 16664741 .  
  42. Winter K, Garcia M, Holtum JA (julio de 2011). "Regulación positiva del CAM inducida por estrés hídrico en plántulas de un cactus tropical, Opuntia elatior, que opera predominantemente en el modo C3" . Journal of Experimental Botany . 62 (11): 4037–4042 . doi : 10.1093/jxb/err106 . PMC 3134358. PMID 21504876 .  
  43. Guralnick LJ, Jackson MD (2001). "La ocurrencia y filogenia del metabolismo ácido de las crasuláceas en las Portulacaceae". International Journal of Plant Sciences . 162 (2): 257– 262. Bibcode : 2001IJPlS.162..257G . doi : 10.1086/319569 . S2CID 84007032 . 
  44. 1 2 3 4 5 6 7 Cockburn W (septiembre de 1985). "TANSLEY REVIEW No 1.: VARIACIÓN EN EL METABOLISMO DE ÁCIDOS FOTOSINTÉTICOS EN PLANTAS VASCULARES: CAM Y FENÓMENOS RELACIONADOS" . The New Phytologist . 101 (1): 3– 24. doi : 10.1111/j.1469-8137.1985.tb02815.x . PMID 33873823 . 
  45. 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 Nelson EA, Sage TL, Sage RF (julio de 2005). "Anatomía funcional de la hoja de plantas con metabolismo ácido de las crasuláceas". Functional Plant Biology . 32 (5): 409– 419. Bibcode : 2005FunPB..32..409N . doi : 10.1071/FP04195 . PMID 32689143 . 
  46. 1 2 3 Bender MM (noviembre de 1973). "Cambios en la relación C/C en plantas con metabolismo ácido de las crasuláceas" . Plant Physiology . 52 (5): 427– 430. doi : 10.1104/pp.52.5.427 . PMC 366516. PMID 16658576 .  
  47. 1 2 Szarek SR (1979). "La ocurrencia del metabolismo ácido de las crasuláceas: una lista suplementaria durante 1976 a 1979". Photosynthetica . 13 (4): 467– 473.
  48. ^ Jones CS, Cardon ZG, Czaja AD (enero de 2003). "Una visión filogenética de CAM de bajo nivel en Pelargonium (Geraniaceae)". Revista americana de botánica . 90 (1): 135– 142. Código bibliográfico : 2003AmJB...90..135J . doi : 10.3732/ajb.90.1.135 . PMID 21659089 . 
  49. Kluge M, Ting IP (2012). Metabolismo ácido de las crasuláceas: Análisis de una adaptación ecológica . de Estudios Ecológicos. Vol. 30. Springer Science & Business Media. p. 24. ISBN   978-3-642-67038-1.
  50. Bastide B, Sipes D, Hann J, Ting IP (diciembre de 1993). "Efecto del estrés hídrico severo en aspectos del metabolismo ácido de las crasuláceas en Xerosicyos" . Plant Physiology . 103 (4): 1089–1096 . doi : 10.1104/pp.103.4.1089 . PMC 159093. PMID 12232003 .  
  51. Gibson AC (2012). Relaciones estructura-función de las plantas del desierto cálido: Adaptaciones de los organismos del desierto . Springer Science & Business Media. pág. 118. ISBN  978-3-642-60979-4.
  52. "Momordica charantia (melón amargo): 111016801" . Enciclopedia de Genes y Genomas de Kioto .
  53. Bareja BG (2013). "Tipos de plantas: III. Plantas CAM, ejemplos y familias de plantas" . Cropsreview .
  54. 1 2 3 4 5 6 7 Sayed OH (2001). "Metabolismo ácido de las crasuláceas 1975–2000, una lista de verificación" . Photosynthetica . 39 (3): 339– 352. Bibcode : 2001Phsyn..39..339S . doi : 10.1023/A:1020292623960 . S2CID 1434170 . 
  55. 1 2 Ogburn RM, Edwards EJ (enero de 2010). "Estrategias ecológicas de uso del agua en plantas suculentas" ( PDF) . Advances in Botanical Research . Vol. 55. Academic Press. pp. 179–225 vía Brown University.  
  56. " Prosopis juliflora " . The Plant List . Consultado el 11 de septiembre de 2015 .
  57. Martin CE, Lubbers AE, Teeri JA (1982). "Variabilidad en el metabolismo ácido de las crasuláceas: un estudio de especies suculentas de Carolina del Norte". Botanical Gazette . 143 (4): 491– 497. doi : 10.1086/337326 . hdl : 1808/9891 . JSTOR 2474765. S2CID 54906851 .  
  58. Lange OL, Zuber M (1977). " Frerea indica , una planta CAM suculenta de tallo con hojas caducas C 3 " . Oecologia . 31 (1): 67– 72. Bibcode : 1977Oecol..31...67L . doi : 10.1007/BF00348709 . PMID 28309150 . S2CID 23514785 .  
  59. ^ Rao IM, Swamy PM, Das VS (1979). "Algunas características del metabolismo del ácido crasuláceo en cinco especies de matorrales no suculentos en condiciones semiáridas naturales" . Zeitschrift für Pflanzenphysiologie . 94 (3): 201– 210. doi : 10.1016/S0044-328X(79)80159-2 .
  60. Houérou HN (2008). Bioclimatología y biogeografía de África. Ciencias de la Tierra y del medio ambiente . Springer Science & Business Media. pág. 52. ISBN  978-3-540-85192-9.
  61. Guralnick LJ, Ting IP, Lord EM (1986). "Metabolismo ácido de las crasuláceas en las Gesneriaceae" . American Journal of Botany . 73 (3): 336– 345. Bibcode : 1986AmJB...73..336G . doi : 10.1002 / j.1537-2197.1986.tb12046.x . JSTOR 2444076. S2CID 59329286 .  
  62. Fioretto A, Alfani A (1988). "Anatomía de la suculencia y CAM en 15 especies de Senecio " . Botanical Gazette . 149 (2): 142– 152. doi : 10.1086/337701 . JSTOR 2995362. S2CID 84302532 .  
  63. Holtum JA, Winter K, Weeks MA, Sexton TR (octubre de 2007). "Metabolismo ácido de las crasuláceas en la planta ZZ, Zamioculcas zamiifolia (Araceae)" . American Journal of Botany . 94 (10): 1670– 1676. Bibcode : 2007AmJB...94.1670H . doi : 10.3732/ajb.94.10.1670 . PMID 21636363 . 
  64. Crayn DM, Winter K, Smith JA (marzo de 2004). "Orígenes múltiples del metabolismo ácido de las crasuláceas y el hábito epífito en la familia neotropical Bromeliaceae" . Actas de la Academia Nacional de Ciencias de los Estados Unidos de América . 101 (10): 3703–3708 . Bibcode : 2004PNAS..101.3703C . doi : 10.1073/pnas.0400366101 . PMC 373526. PMID 14982989 .  
  65. Silvera K, Neubig KM, Whitten WM, Williams NH, Winter K, Cushman JC (octubre de 2010). "Evolución a lo largo del continuo del metabolismo ácido de las crasuláceas" . Functional Plant Biology . 37 (11): 995–1010 . Bibcode : 2010FunPB..37..995S . doi : 10.1071/FP10084 vía ResearchGate.
  • Khan Academy, videoclase