En biología celular , el número de copias de un plásmido es la cantidad de copias de un plásmido determinado en una célula. Para asegurar la supervivencia y, por lo tanto, la propagación continua del plásmido, deben regular su número de copias. Si un plásmido tiene un número de copias demasiado alto, puede sobrecargar excesivamente a su huésped al ocupar demasiada maquinaria celular y consumir demasiada energía. Por otro lado, un número de copias demasiado bajo puede resultar en que el plásmido no esté presente en toda la progenie de su huésped. Los plásmidos pueden ser de bajo, medio o alto número de copias; los mecanismos de regulación entre los plásmidos de bajo y medio número de copias son diferentes. Los plásmidos de bajo número de copias (5 o menos copias por huésped) requieren un sistema de partición o un par toxina-antitoxina como CcdA/CcdB para asegurar que cada célula hija reciba el plásmido. Por ejemplo, el plásmido F, que es el origen de los BAC ( cromosomas artificiales bacterianos ), es un plásmido de copia única con un sistema de partición codificado en un operón justo al lado del origen del plásmido. El sistema de partición interactúa con el aparato de septación para asegurar que cada célula hija reciba una copia del plásmido. Muchas aplicaciones biotecnológicas utilizan plásmidos mutados que se replican a un alto número de copias. Por ejemplo, pBR322 es un plásmido de número de copias medio (~20 copias/célula) a partir del cual se han derivado varios vectores de clonación de alto número de copias (>100 copias/célula) mediante mutagénesis, como la conocida serie pUC. [ 1 ] Esto ofrece la ventaja de obtener altos rendimientos de ADN plasmídico, pero la carga adicional del alto número de copias restringe el tamaño del plásmido. Los plásmidos de alto número de copias más grandes (>30 kb) no son deseables y también son propensos a la reducción de tamaño mediante mutagénesis por deleción.
Regulación
Los plásmidos de número de copias medio, también llamados plásmidos relajados, requieren un sistema que asegure la inhibición de la replicación una vez que el número de plásmidos en la célula alcanza un cierto umbral. Generalmente, los plásmidos relajados se regulan mediante uno de dos mecanismos: ARN antisentido o grupos de unión de iterones . Los plásmidos de número de copias bajo, también llamados plásmidos estrictos, requieren un control más riguroso de la replicación.
Plásmidos derivados de ColE1: ARN antisentido
En los plásmidos derivados de ColE1 , la replicación se regula principalmente mediante un pequeño ARN codificado por el plásmido, denominado ARN I. Un único promotor inicia la replicación en ColE1: el promotor del ARN II. El transcrito del ARN II forma un híbrido estable de ARN-ADN con la cadena molde de ADN cerca del origen de replicación, donde es procesado por la RNasa H para producir el cebador 3' OH que la ADN polimerasa I utiliza para iniciar la síntesis de la cadena conductora de ADN . El ARN I actúa como un importante inhibidor de este proceso, codificado por el plásmido, cuya concentración es proporcional al número de copias del plásmido. El ARN I es exactamente complementario al extremo 5' del ARN II (ya que se transcribe a partir de la cadena opuesta de la misma región de ADN que el ARN II). El ARN I y el ARN II forman un complejo de apareamiento. Este complejo se estabiliza mediante una proteína llamada Rop (represor del cebador) y se forma un dúplex de ARN de doble cadena ARN-I/ARN-II. Esta forma alterada impide que el ARN II se hibride con el ADN y sea procesado por la RNasa H para producir el cebador necesario para el inicio de la replicación del plásmido. Se produce más ARN I a medida que aumenta la concentración del plásmido, lo que inhibe cada vez más la replicación, resultando en la regulación del número de copias. [ 2 ] [ 3 ]
Plásmidos R1 y ColIb-p9: ARN antisentido
La mayoría de los plásmidos requieren una proteína codificada por el plásmido, generalmente llamada Rep, para separar las hebras de ADN en el origen de replicación ( oriV ) e iniciar la replicación del ADN. Rep se une a secuencias de ADN específicas en oriV que son únicas para cada tipo de plásmido. La síntesis de la proteína Rep está controlada para limitar la replicación del plásmido y, por lo tanto, regular el número de copias. En los plásmidos R1, RepA puede transcribirse a partir de dos promotores diferentes. Se sintetiza a partir del primer promotor hasta que el plásmido alcanza su número de copias, momento en el que la proteína CopB reprime este promotor primario. [ 3 ] La expresión de RepA también está regulada postranscripcionalmente desde el promotor secundario por un ARN antisentido llamado CopA . CopA interactúa con su ARN diana en el ARNm de RepA y forma un complejo de apareamiento y luego un dúplex de ARN-ARN. El ARN bicatenario resultante es escindido por la RNasa III , lo que impide la síntesis de RepA. Cuanto mayor sea la concentración del plásmido, mayor será la cantidad de ARN CopA que se produce y menor la cantidad de proteína RepA que se puede sintetizar, lo que aumenta la inhibición de la replicación del plásmido. [ 4 ]
Col1b-P9: ARN antisentido
La replicación del gen ColIb-P9 de bajo número de copias depende de Rep, que se produce mediante la expresión del gen repZ . La expresión de repZ requiere la formación de un pseudonudo en el ARNm. RepZ es reprimido por un pequeño ARN antisentido Inc, que se une al ARNm de repZ , forma un dúplex de ARN Inc-ARNm e impide la formación del pseudonudo para inhibir la traducción de repZ a Rep. En este caso, la replicación ya no puede ocurrir. [ 5 ]
pSC101: Plásmido Iteron
Los plásmidos iteron, incluidos los plásmidos relacionados con F y RK2 , tienen regiones oriV que contienen múltiples (~3-7) repeticiones de secuencias iteron de 17-22 pb. [ 3 ] pSC101 representa un modelo simple de un plásmido iteron. Los plásmidos iteron controlan el número de copias a través de dos métodos combinados, adecuados para plásmidos estrictos de bajo número de copias. Un método es el control de la síntesis de RepA. RepA es la única proteína codificada por el plásmido necesaria para la replicación en pSC101. La proteína RepA reprime su propia síntesis al unirse a su propia región promotora y bloquear su transcripción ( autorregulación transcripcional ). Por lo tanto, cuanta más RepA se produce, más se reprime su síntesis y, posteriormente, se limita la replicación del plásmido. [ 3 ] La hipótesis de acoplamiento propone que el segundo método es el acoplamiento de plásmidos a través de la proteína Rep y las secuencias iteron. Cuando la concentración de plásmidos es alta, los plásmidos RepA unidos a iterones forman dímeros entre dos plásmidos, "esposándolos" en el origen de replicación e inhibiendo la replicación. [ 6 ]
Incompatibilidad
Los plásmidos pueden ser incompatibles si comparten el mismo mecanismo de control de replicación. En estas circunstancias, ambos plásmidos contribuyen al número total de copias y se regulan juntos. No se reconocen como plásmidos distintos. Por lo tanto, es mucho más probable que uno de los plásmidos sea copiado en exceso por el otro y se pierda durante la división celular (la célula se "cura" del plásmido). [ 3 ] Esto es particularmente probable con plásmidos de bajo número de copias. Los plásmidos también pueden ser incompatibles debido a sistemas de partición compartidos .
Referencias
- ↑ Boros, I; Pósfai, G; Venetianer, P (octubre de 1984). "Derivados de alto número de copias del vector de clonación de plásmido pBR322". Gene . 30 ( 1–3 ): 257–60 . doi : 10.1016/0378-1119(84)90130-6 . PMID 6096220 .
- ↑ Cesareni, G; Helmer-Citterich, M; Castagnoli, L (1991). "Control de la replicación del plásmido ColE1 mediante ARN antisentido". Trends in Genetics . 7 (7): 230– 235. doi : 10.1016/0168-9525(91)90370-6 . PMID 1887504 .
- 1 2 3 4 5 Snyder, Larry; Peters, Joseph E.; Henkin, Tina M.; Champness, Wendy (2013). Genética molecular de bacterias (4.ª ed.). ASM Press. ISBN 978-1555816278.
- ↑ Blomberg, P; Nordström, K; Wagner, EG (1992). "Control de la replicación del plásmido R1: la síntesis de RepA está regulada por el ARN CopA a través de la inhibición de la traducción del péptido líder" . The EMBO Journal . 11 (7): 2675– 2683. doi : 10.1002/j.1460-2075.1992.tb05333.x . PMC 556743. PMID 1378398 .
- ↑ Asano, K; Mizobuchi, K (1998). "Control del número de copias del plásmido IncIalpha ColIb-P9 mediante competencia entre la formación de pseudonudos y la unión de ARN antisentido en un sitio de ARN específico" . The EMBO Journal . 17 (17): 5201– 5213. doi : 10.1093/ emboj /17.17.5201 . PMC 1170848. PMID 9724656 .
- ^ Kunnimalaiyaan, S; Inman, RB; Rakowski, SA; Filutowicz, M (2005). "Papel de los dímeros π en el acoplamiento ("esposar") de los iterons γ ori del plásmido R6K" . Revista de Bacteriología . 187 (11): 3779– 3785. doi : 10.1128/JB.187.11.3779-3785.2005 . PMC 1112066 . PMID 15901701 .
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