Articulo de referencia

serina proteasa

Estructura cristalina de la tripsina , una serina proteasa típica. Las serina proteasas (o serina endopeptidasas ) son enzimas que rompen los enlaces peptídicos de las proteínas...

Estructura cristalina de la tripsina , una serina proteasa típica.

Las serina proteasas (o serina endopeptidasas ) son enzimas que rompen los enlaces peptídicos de las proteínas . La serina actúa como aminoácido nucleofílico en el sitio activo de la enzima . [ 1 ] Se encuentran de forma ubicua tanto en eucariotas como en procariotas . Las serina proteasas se dividen en dos grandes categorías según su estructura: similares a la quimotripsina (o tripsina) o similares a la subtilisina . [ 2 ]

Clasificación

El sistema de clasificación de proteasas MEROPS reconoce 16 superfamilias (a partir de 2013), cada una con numerosas familias . Cada superfamilia utiliza la tríada o díada catalítica en un plegamiento proteico diferente , lo que representa una evolución convergente del mecanismo catalítico . La mayoría pertenece a la familia S1 del clan PA (superfamilia) de proteasas.

Para superfamilias , P: superfamilia, que contiene una mezcla de familias de clases de nucleófilos , S: proteasas de serina puras. superfamilia. Dentro de cada superfamilia, las familias se designan por su nucleófilo catalítico, (S: proteasas de serina).

Movimiento de bisagra en el dominio de activación desordenado del tripsinógeno (PDB ID: 2PTN ). Las bisagras predichas mediante la predicción de bisagras de PACKMAN [ 3 ] están coloreadas en azul (residuos 23:28) y rojo (residuos 175:182). La región coloreada en verde es el sitio activo. El movimiento se genera mediante hdANM [ 4 ] .

Especificidad del sustrato

Las serina proteasas se caracterizan por una estructura distintiva, que consta de dos dominios de barril beta que convergen en el sitio activo catalítico. Estas enzimas se pueden clasificar además según su especificidad de sustrato como similares a la tripsina, similares a la quimotripsina o similares a la elastasa. [ 5 ]

Similar a la tripsina

Las proteasas tipo tripsina escinden los enlaces peptídicos después de un aminoácido con carga positiva ( lisina o arginina ). [ 6 ] Esta especificidad está determinada por el residuo que se encuentra en la base del bolsillo S1 de la enzima (generalmente un ácido aspártico o glutámico con carga negativa ).

similar a la quimotripsina

El bolsillo S1 de las enzimas similares a la quimotripsina es más hidrofóbico que en las proteasas similares a la tripsina. Esto da como resultado una especificidad por residuos hidrofóbicos de tamaño mediano a grande, como la tirosina , la fenilalanina y el triptófano .

Similar a la trombina

Entre ellas se incluyen la trombina , el plasminógeno activador tisular y la plasmina . Se ha descubierto que desempeñan funciones en la coagulación y la digestión, así como en la fisiopatología de trastornos neurodegenerativos como la enfermedad de Alzheimer y la demencia inducida por la enfermedad de Parkinson. En los venenos de serpiente se encuentran muchas isoformas de serina proteasa similares a la trombina, altamente tóxicas. [ 7 ]

Similar a la elastasa

Las proteasas tipo elastasa tienen una hendidura S1 mucho más pequeña que las proteasas tipo tripsina o quimotripsina. En consecuencia, tienden a preferir residuos como la alanina , la glicina y la valina .

similar a la subtilisina

La subtilisina es una serina proteasa presente en procariotas . Si bien no guarda relación evolutiva con la quimotripsina, comparte el mismo mecanismo catalítico, que utiliza una tríada catalítica para generar una serina nucleofílica . Este es el ejemplo clásico que ilustra la evolución convergente , ya que el mismo mecanismo evolucionó de forma independiente en dos ocasiones durante la evolución .

Mecanismo catalítico

mecanismo de reacción de la serina proteasa
mecanismo de reacción de la serina proteasa

El principal componente del mecanismo catalítico de las serina proteasas es la tríada catalítica. Esta tríada se localiza en el sitio activo de la enzima, donde tiene lugar la catálisis, y se conserva en todas las superfamilias de enzimas serina proteasas. La tríada es una estructura coordinada compuesta por tres aminoácidos : His 57, Ser 195 (de ahí el nombre de "serina proteasa") y Asp 102. Estos tres aminoácidos clave desempeñan un papel esencial en la capacidad de escisión de las proteasas. Si bien los aminoácidos que componen la tríada se encuentran alejados entre sí en la secuencia de la proteína, debido al plegamiento, estarán muy próximos en el núcleo de la enzima. La geometría particular de los miembros de la tríada es altamente característica de su función específica: se ha demostrado que la posición de tan solo cuatro puntos de la tríada caracteriza la función de la enzima que la contiene. [ 8 ]

En caso de catálisis, se produce un mecanismo ordenado en el que se generan varios intermediarios. La catálisis de la escisión del péptido puede considerarse una catálisis de ping-pong , en la que se une un sustrato (en este caso, el polipéptido que se escinde), se libera un producto (la mitad C-terminal del péptido con el grupo amino visible), se une otro sustrato (en este caso, agua) y se libera otro producto (la mitad N-terminal del péptido con el grupo carboxilo visible).

Cada aminoácido de la tríada realiza una tarea específica en este proceso:

La reacción completa se puede resumir de la siguiente manera:

  • El sustrato polipeptídico se une a la superficie de la enzima serina proteasa de tal manera que el enlace escindible se inserta en el sitio activo de la enzima, con el carbono carbonilo de este enlace posicionado cerca de la serina nucleofílica .
  • El grupo -OH de la serina ataca al carbono carbonílico , y el nitrógeno de la histidina acepta el hidrógeno del grupo -OH de la [serina], mientras que un par de electrones del doble enlace del oxígeno carbonílico se desplaza hacia el oxígeno. Como resultado, se genera un intermedio tetraédrico.
  • El enlace que une el nitrógeno y el carbono en el enlace peptídico se rompe. Los electrones covalentes que formaban este enlace atacan el hidrógeno de la histidina , rompiendo la conexión. Los electrones que antes se desplazaban del doble enlace del oxígeno carbonílico regresan del oxígeno negativo para recrear el enlace, generando un intermedio acil-enzima.
  • Ahora, el agua interviene en la reacción. El agua reemplaza el extremo N del péptido escindido y ataca el carbono carbonílico . Una vez más, los electrones del doble enlace se desplazan hacia el oxígeno, dejándolo negativo, al formarse el enlace entre el oxígeno del agua y el carbono. Este enlace es coordinado por el nitrógeno de la histidina , que acepta un protón del agua. En conjunto, esto genera otro intermedio tetraédrico.
  • En la reacción final, el enlace formado en el primer paso entre la serina y el carbono carbonílico ataca al hidrógeno que la histidina acaba de adquirir. El carbono carbonílico, ahora deficiente en electrones, reforma el doble enlace con el oxígeno. Como resultado, el extremo C-terminal del péptido se desprende.

Efectos estabilizadores adicionales

Se descubrió que los aminoácidos adicionales de la proteasa, Gly 193 y Ser 195 , participan en la creación de lo que se denomina un agujero de oxianión . Tanto Gly 193 como Ser 195 pueden donar hidrógenos del esqueleto peptídico para la formación de enlaces de hidrógeno. Cuando se generan los intermedios tetraédricos de los pasos 1 y 3, el ion oxígeno negativo, tras aceptar los electrones del doble enlace carbonilo , encaja perfectamente en el agujero de oxianión. En efecto, las serina proteasas se unen preferentemente al estado de transición y la estructura general se ve favorecida, lo que reduce la energía de activación de la reacción. Esta "unión preferencial" es responsable de gran parte de la eficiencia catalítica de la enzima.

Regulación de la actividad de la serina proteasa

Los organismos hospedadores deben asegurar que la actividad de las serina proteasas esté regulada adecuadamente. Esto se logra mediante la activación inicial de la proteasa y la secreción de inhibidores.

Activación del zimógeno

Los zimógenos son los precursores, generalmente inactivos, de una enzima. Si las enzimas digestivas fueran activas al sintetizarse, comenzarían inmediatamente a degradar los órganos y tejidos en proceso de síntesis. La pancreatitis aguda es una afección en la que se produce una activación prematura de las enzimas digestivas en el páncreas, lo que provoca su autodigestión (autólisis). Esto también complica las investigaciones post mortem , ya que el páncreas suele autodigerirse antes de que pueda evaluarse visualmente.

Los zimógenos son estructuras grandes e inactivas que pueden descomponerse o transformarse en enzimas activadas más pequeñas. La diferencia entre los zimógenos y las enzimas activadas radica en que el sitio activo de catálisis de los zimógenos está distorsionado. Como resultado, el polipéptido sustrato no puede unirse eficazmente y no se produce la proteólisis . La proteólisis solo puede ocurrir tras la activación, durante la cual la conformación y la estructura del zimógeno cambian y el sitio activo se abre .

Como se puede observar, la activación del tripsinógeno a tripsina es esencial, ya que activa su propia reacción, así como la reacción tanto de la quimotripsina como de la elastasa . Por lo tanto, es fundamental que esta activación no ocurra prematuramente. El organismo adopta diversas medidas de protección para prevenir la autodigestión:

  • La activación del tripsinógeno por la tripsina es relativamente lenta.
  • Los zimógenos se almacenan en gránulos de zimógeno, cápsulas cuyas paredes se consideran resistentes a la proteólisis.

Inhibición

Existen ciertos inhibidores que se asemejan al intermediario tetraédrico y, por lo tanto, ocupan el sitio activo, impidiendo que la enzima funcione correctamente. La tripsina, una potente enzima digestiva, se genera en el páncreas. Los inhibidores impiden la autodigestión del propio páncreas.

Las serina proteasas se combinan con inhibidores de serina proteasas , que desactivan su actividad cuando ya no son necesarios. [ 9 ]

Las serina proteasas son inhibidas por un grupo diverso de inhibidores , incluidos inhibidores químicos sintéticos para fines de investigación o terapéuticos, y también inhibidores proteínicos naturales. Una familia de inhibidores naturales llamados "serpinas" (abreviatura de inhibidores de serina proteasa ) pueden formar un enlace covalente con la serina proteasa, inhibiendo su función. Las serpinas mejor estudiadas son la antitrombina y la alfa 1-antitripsina , estudiadas por su papel en la coagulación / trombosis y el enfisema / A1AT , respectivamente. Los inhibidores artificiales irreversibles de molécula pequeña incluyen AEBSF y PMSF .

Se ha identificado una familia de inhibidores de serina peptidasas de artrópodos , llamados pacifastina , en langostas y cangrejos de río , y puede funcionar en el sistema inmunitario de los artrópodos . [ 10 ]

Papel en la enfermedad

Las mutaciones pueden provocar una disminución o un aumento de la actividad de las enzimas. Esto puede tener diferentes consecuencias, dependiendo de la función normal de la serina proteasa. Por ejemplo, las mutaciones en la proteína C pueden provocar una deficiencia de proteína C y predisponer a la trombosis . Además, algunas proteasas desempeñan un papel vital en la activación de la fusión célula huésped-virus al preparar la proteína Spike del virus para mostrar la proteína denominada "proteína de fusión" ( TMPRSS2 activa la fusión del SARS-CoV-2 ). Las serina proteasas exógenas del veneno de serpiente causan una amplia gama de coagulopatías cuando se inyectan en un huésped debido a la falta de regulación de su actividad. [ 7 ]

Uso diagnóstico

La determinación de los niveles de serina proteasa puede ser útil en el contexto de determinadas enfermedades.

efecto antimicrobiano

Debido a su actividad catalítica, algunas serina proteasas poseen potentes propiedades antimicrobianas. Diversos estudios in vitro han demostrado la eficacia de algunas proteasas para reducir la virulencia mediante la escisión de proteínas de la superficie viral. La entrada del virus en las células huésped está mediada por la interacción de estas proteínas de superficie con la célula huésped. Cuando estas proteínas se fragmentan o inactivan en la superficie viral, la entrada del virus se ve afectada, lo que conlleva una reducción de la infectividad de un amplio espectro de microorganismos patológicamente relevantes como la influenza , el VRS humano y otros. [ 11 ] [ 12 ]

Véase también

Referencias

  1. Hedstrom L (diciembre de 2002). "Mecanismo y especificidad de la serina proteasa". Chemical Reviews . 102 (12): 4501– 4524. doi : 10.1021/cr000033x . PMID 12475199 . 
  2. Madala PK, Tyndall JD, Nall T, Fairlie DP (junio de 2010). "Actualización 1 de: Las proteasas reconocen universalmente las hebras beta en sus sitios activos". Chemical Reviews . 110 (6): PR1– P31. doi : 10.1021/cr900368a . PMID 20377171 . 
  3. Khade PM, Kumar A, Jernigan RL (enero de 2020). "Caracterización y predicción de bisagras de proteínas para una comprensión mecanicista" . Journal of Molecular Biology . 432 (2): 508– 522. doi : 10.1016/j.jmb.2019.11.018 . PMC 7029793. PMID 31786268 .  
  4. ^ Khade PM, Scaramozzino D, Kumar A, Lacidogna G, Carpinteri A, Jernigan RL (noviembre de 2021). "hdANM: un nuevo modelo dinámico integral para bisagras de proteínas" . Revista Biofísica . 120 (22): 4955– 4965. Código bibliográfico : 2021BpJ...120.4955K . doi : 10.1016/j.bpj.2021.10.017 . PMC 8633836 . PMID 34687719 .  
  5. Ovaere P, Lippens S, Vandenabeele P, Declercq W (septiembre de 2009). "Los roles emergentes de las cascadas de serina proteasas en la epidermis". Trends in Biochemical Sciences . 34 (9): 453– 463. doi : 10.1016/j.tibs.2009.08.001 . PMID 19726197 . 
  6. Evnin LB, Vásquez JR, Craik CS (septiembre de 1990). "Especificidad del sustrato de la tripsina investigada mediante selección genética" . Actas de la Academia Nacional de Ciencias de los Estados Unidos de América . 87 (17): 6659– 6663. Bibcode : 1990PNAS...87.6659E . doi : 10.1073 / pnas.87.17.6659 . JSTOR 2355359. PMC 54596. PMID 2204062 .   
  7. ^ Oliveira AL, Viegas MF, da Silva SL, Soares AM, Ramos MJ, Fernandes PA (10 de junio de 2022) . "La química del veneno de serpiente y su potencial medicinal" . Reseñas de la naturaleza. Química . 6 (7): 451– 469. doi : 10.1038/s41570-022-00393-7 . PMC 9185726 . PMID 35702592 .  
  8. Iván G, Szabadka Z, Ordög R, Grolmusz V, Náray-Szabó G (junio de 2009). "Cuatro puntos espaciales que definen familias de enzimas". Biochemical and Biophysical Research Communications . 383 (4): 417– 420. Bibcode : 2009BBRC..383..417I . CiteSeerX 10.1.1.150.1086 . doi : 10.1016/j.bbrc.2009.04.022 . PMID 19364497 .  
  9. Almonte, Antoine G.; Sweatt, J. David (agosto de 2011). "Serina proteasas, inhibidores de serina proteasas y receptores activados por proteasas: funciones en la función sináptica y el comportamiento" . Brain Research . 1407 : 107–122 . doi : 10.1016/j.brainres.2011.06.042 . PMC 3148282. PMID 21782155 .  
  10. Breugelmans B, Simonet G, van Hoef V, Van Soest S, Vanden Broeck J (marzo de 2009). "Péptidos relacionados con la pacifastina: características estructurales y funcionales de una familia de inhibidores de la serina peptidasa". Peptides . 30 (3): 622– 632. doi : 10.1016/j.peptides.2008.07.026 . PMID 18775459 . S2CID 8797134 .  
  11. Lopes BR, da Silva GS, de Lima Menezes G, de Oliveira J, Watanabe AS, Porto BN, et al. (mayo de 2022). "Las serina proteasas en las trampas extracelulares de neutrófilos exhiben actividad anti-virus sincitial respiratorio". International Immunopharmacology . 106 108573. doi : 10.1016/j.intimp.2022.108573 . hdl : 11449/223465 . PMID 35183035 .  
  12. Sakai K, Ami Y, Tahara M, Kubota T, Anraku M, Abe M, et al. (mayo de 2014). Dermody TS (ed.). "La proteasa del huésped TMPRSS2 desempeña un papel importante en la replicación in vivo de los virus emergentes H7N9 y de la gripe estacional" . Journal of Virology . 88 (10): 5608– 5616. doi : 10.1128/JVI.03677-13 . PMC 4019123. PMID 24600012 .