Pseudomonas es un género de bacterias gramnegativas perteneciente a la familia Pseudomonadaceae en la clase Gammaproteobacteria . Los 348 miembros del género [ 2 ] [ 3 ] demuestran una gran diversidad metabólica y, en consecuencia, son capaces de colonizar una amplia gama de nichos y huéspedes. [ 4 ] [ 5 ] [ 6 ] [ 7 ] [ 8 ] Su facilidad de cultivo in vitro y la disponibilidad de un número creciente de secuencias genómicas de cepas de Pseudomonas han convertido al género en un excelente foco para la investigación científica; las especies mejor estudiadas incluyen P. aeruginosa en su papel como patógeno humano oportunista , el patógeno vegetal P. syringae , la bacteria del suelo P. putida y las promotoras del crecimiento vegetal P. fluorescens , P. lini , P. migulae y P. graminis . [ 9 ] [ 10 ]
Debido a su amplia presencia en el agua y en semillas de plantas como las dicotiledóneas , las pseudomonas se observaron tempranamente en la historia de la microbiología . El nombre genérico Pseudomonas, creado para estos organismos, fue definido en términos bastante vagos por Walter Migula en 1894 y 1900 como un género de bacterias Gram negativas, con forma de bacilo y flageladas polares , con algunas especies esporulantes. [ 11 ] [ 12 ] Esta última afirmación resultó ser incorrecta posteriormente y se debió a gránulos refractivos de materiales de reserva. [ 13 ] A pesar de la descripción vaga, la especie tipo, Pseudomonas pyocyanea ( basiónimo de Pseudomonas aeruginosa ), resultó ser el mejor descriptor. [ 13 ]
Historial de clasificación
Como la mayoría de los géneros bacterianos, el último ancestro común de las pseudomonas [ nota 1 ] vivió hace cientos de millones de años. Fueron clasificadas inicialmente a finales del siglo XIX, cuando Walter Migula las identificó por primera vez . La etimología del nombre no se especificó en ese momento y apareció por primera vez en la séptima edición del Manual de Bacteriología Sistemática de Bergey (la principal autoridad en nomenclatura bacteriana) como el griego pseudes (ψευδής) "falso" y -monas (μονάς/μονάδος) "una sola unidad", que puede significar unidad falsa; sin embargo, es posible que Migula se refiriera a la falsa Monas , un protista nanoflagelado [ 13 ] (posteriormente, el término "monad" se utilizó en los inicios de la microbiología para denotar organismos unicelulares). Pronto, otras especies que coincidían con la descripción original, algo vaga, de Migula fueron aisladas de numerosos nichos naturales y, en aquel momento, muchas fueron asignadas al género . Sin embargo, desde entonces, muchas cepas han sido reclasificadas, basándose en metodologías más recientes y en el uso de enfoques que implican estudios de macromoléculas conservadas. [ 14 ]
El análisis de la secuencia del ARNr 16S ha redefinido la taxonomía de muchas especies bacterianas. [ 15 ] Como resultado, el género Pseudomonas incluye cepas anteriormente clasificadas en los géneros Chryseomonas y Flavimonas . [ 16 ] Otras cepas previamente clasificadas en el género Pseudomonas ahora se clasifican en los géneros Burkholderia y Ralstonia . [ 17 ] [ 18 ]
En 2020, un análisis filogenómico de 494 genomas completos de Pseudomonas identificó dos especies bien definidas ( P. aeruginosa y P. chlororaphis ) y cuatro grupos filogenéticos más amplios ( P. fluorescens, P. stutzeri, P. syringae, P. putida ) con un número suficiente de proteomas disponibles. [ 19 ] Los cuatro grupos evolutivos más amplios incluyen más de una especie, según la definición de especie por los niveles de identidad de nucleótidos promedio. [ 20 ] Además, el análisis filogenómico identificó varias cepas que fueron anotadas erróneamente en la especie o grupo evolutivo incorrecto. [ 19 ] Este problema de anotación errónea también ha sido reportado por otros análisis. [ 21 ] En 2021, un análisis filogenómico amplio sobre este género llevó a la reorganización de las especies incluidas en Pseudomonas , lo que llevó a la creación de varios géneros nuevos para acomodar a algunas de ellas. [ 22 ]
Genómica
En 2000, se determinó la secuencia genómica completa de una especie de Pseudomonas ; más recientemente, se ha determinado la secuencia de otras cepas, incluidas las cepas de P. aeruginosa PAO1 (2000), P. putida KT2440 (2002), P. protegens Pf-5 (2005), P. syringae patovar tomato DC3000 (2003), P. syringae patovar syringae B728a (2005), P. syringae patovar phaseolica 1448A (2005), P. fluorescens Pf0-1 y P. entomophila L48. [ 14 ]
Para 2016, se habían secuenciado más de 400 cepas de Pseudomonas . [ 23 ] La secuenciación de los genomas de cientos de cepas reveló especies altamente divergentes dentro del género. De hecho, muchos genomas de Pseudomonas comparten solo entre el 50 y el 60 % de sus genes; por ejemplo, P. aeruginosa y P. putida comparten solo 2971 proteínas de un total de 5350 (o aproximadamente el 55 %). [ 23 ]
Para 2020, más de 500 genomas completos de Pseudomonas estaban disponibles en NCBI GenBank . Un análisis filogenómico utilizó 494 proteomas completos e identificó 297 ortólogos centrales, compartidos por todas las cepas. [ 19 ] Este conjunto de ortólogos centrales a nivel de género estaba enriquecido con proteínas involucradas en el metabolismo, la traducción y la transcripción, y se utilizó para generar un árbol filogenómico de todo el género, para delinear las relaciones entre los principales grupos evolutivos de Pseudomonas . [ 19 ] Además, se identificaron proteínas centrales específicas de grupo para la mayoría de los grupos evolutivos, lo que significa que estaban presentes en todos los miembros del grupo específico, pero ausentes en otras pseudomonas. Por ejemplo, se identificaron varias proteínas centrales específicas de P. aeruginosa que se sabe que desempeñan un papel importante en la patogenicidad de esta especie, como CntL, CntM, PlcB, Acp1, MucE, SrfA, Tse1, Tsi2, Tse3 y EsrC . [ 19 ]
En 2021, un estudio genómico comparativo con más de 3000 genomas de Pseudomonas ayudó a descubrir genes y funciones relacionados con la adaptación ambiental de estas bacterias. [ 8 ]
Características
Los miembros del género presentan estas características definitorias: [ 24 ]
- En forma de varilla
- Gram negativas
- Flagelo uno o más, que proporciona motilidad
- Aerobio
- No forma esporas
- Catalasa positiva
- Oxidasa variable
Otras características que tienden a asociarse con las especies de Pseudomonas (con algunas excepciones) incluyen la secreción de pioverdina , un sideróforo amarillo verdoso fluorescente [ 25 ] en condiciones de limitación de hierro. Ciertas especies de Pseudomonas también pueden producir tipos adicionales de sideróforos, como la piocianina por Pseudomonas aeruginosa [ 26 ] y la tioquinolobactina por Pseudomonas fluorescens . [ 27 ] Las especies de Pseudomonas también suelen dar un resultado positivo en la prueba de oxidasa , la ausencia de formación de gas a partir de glucosa, la glucosa se oxida en la prueba de oxidación/fermentación utilizando la prueba O/F de Hugh y Leifson, beta hemolítica (en agar sangre ), indol negativo, rojo de metilo negativo, prueba de Voges-Proskauer negativa y citrato positivo.
Pseudomonas puede ser el nucleador más común de cristales de hielo en las nubes, siendo por lo tanto de suma importancia para la formación de nieve y lluvia en todo el mundo. [ 28 ]
El género Pseudomonas se caracteriza por su notable diversidad metabólica, que le permite prosperar en una amplia gama de entornos. Estas bacterias producen una gran variedad de metabolitos secundarios , [ 29 ] incluyendo antibióticos, sideróforos y biosurfactantes, que contribuyen a su versatilidad ecológica y potencial biotecnológico.
Formación de biopelículas
Históricamente, todas las especies y cepas de Pseudomonas se han clasificado como aerobios estrictos . Recientemente se han descubierto excepciones a esta clasificación en biopelículas de Pseudomonas . [ 30 ] Un número significativo de células puede producir exopolisacáridos asociados con la formación de biopelículas. La secreción de exopolisacáridos como el alginato dificulta la fagocitosis de las pseudomonas por los glóbulos blancos de los mamíferos . [ 31 ] La producción de exopolisacáridos también contribuye a la formación de biopelículas que colonizan superficies y que son difíciles de eliminar de las superficies de preparación de alimentos. El crecimiento de pseudomonas en alimentos en descomposición puede generar un olor afrutado. [ 32 ]
Resistencia a los antibióticos
La mayoría de las especies de Pseudomonas son naturalmente resistentes a la penicilina y a la mayoría de los antibióticos betalactámicos relacionados , pero algunas son sensibles a la piperacilina , el imipenem , la ticarcilina o la ciprofloxacina . [ 31 ] Los aminoglucósidos como la tobramicina , la gentamicina y la amicacina son otras opciones terapéuticas. [ 33 ]
Esta capacidad para prosperar en condiciones adversas es resultado de sus resistentes paredes celulares que contienen proteínas conocidas como porinas . Su resistencia a la mayoría de los antibióticos se atribuye a las bombas de eflujo , que expulsan algunos antibióticos antes de que puedan actuar. [ 34 ]
Pseudomonas aeruginosa se reconoce cada vez más como un patógeno oportunista emergente de relevancia clínica. Una de sus características más preocupantes es su baja susceptibilidad a los antibióticos. [ 35 ] Esta baja susceptibilidad se atribuye a una acción concertada de bombas de eflujo de múltiples fármacos con genes de resistencia a antibióticos codificados cromosómicamente (p. ej., mexAB-oprM , mexXY , etc. [ 36 ] ) y la baja permeabilidad de las envolturas celulares bacterianas. Además de la resistencia intrínseca, P. aeruginosa desarrolla fácilmente resistencia adquirida ya sea por mutación en genes codificados cromosómicamente o por transferencia horizontal de genes de determinantes de resistencia a antibióticos. El desarrollo de resistencia a múltiples fármacos por aislados de P. aeruginosa requiere varios eventos genéticos diferentes que incluyen la adquisición de diferentes mutaciones y/o transferencia horizontal de genes de resistencia a antibióticos. La hipermutación favorece la selección de resistencia a antibióticos mediada por mutaciones en cepas de P. aeruginosa que producen infecciones crónicas, mientras que la agrupación de varios genes de resistencia a antibióticos diferentes en integrones favorece la adquisición concertada de determinantes de resistencia a antibióticos. Algunos estudios recientes han demostrado resistencia fenotípica asociada a la formación de biopelículas o a la aparición de variantes de colonias pequeñas, lo que puede ser importante en la respuesta de las poblaciones de P. aeruginosa al tratamiento con antibióticos . [ 14 ]
Sensibilidad al galio
Aunque el galio no tiene una función natural en biología, los iones de galio interactúan con los procesos celulares de manera similar al hierro(III). Cuando bacterias como Pseudomonas absorben erróneamente iones de galio en lugar de hierro(III) , estos interfieren con la respiración y las bacterias mueren. Esto sucede porque el hierro es redox-activo, lo que permite la transferencia de electrones durante la respiración, mientras que el galio es redox-inactivo. [ 37 ] [ 38 ]
Patogenicidad
patógenos animales
Las especies infecciosas incluyen P. aeruginosa , P. oryzihabitans y P. plecoglossicida . P. aeruginosa prolifera en entornos hospitalarios y representa un problema particular en este entorno, ya que es la segunda infección más común en pacientes hospitalizados ( infecciones nosocomiales ). [ 39 ] Esta patogénesis puede deberse en parte a las proteínas secretadas por P. aeruginosa . La bacteria posee una amplia gama de sistemas de secreción que exportan numerosas proteínas relevantes para la patogénesis de las cepas clínicas. [ 40 ] Curiosamente, varios genes involucrados en la patogénesis de P. aeruginosa, como CntL, CntM, PlcB, Acp1, MucE, SrfA, Tse1, Tsi2, Tse3 y EsrC, son específicos del grupo central, [ 19 ] lo que significa que son compartidos por la gran mayoría de las cepas de P. aeruginosa , pero no están presentes en otras Pseudomonads .
patógenos de las plantas
P. syringae es un prolífico patógeno vegetal . Existe en más de 50 patovares diferentes , muchos de los cuales demuestran un alto grado de especificidad de planta hospedante. Numerosas otras especies de Pseudomonas pueden actuar como patógenos vegetales, en particular todos los demás miembros del subgrupo P. syringae , pero P. syringae es la más extendida y mejor estudiada. [ 41 ]
Patógenos fúngicos
P. tolaasii puede ser un problema agrícola importante, ya que puede causar manchas bacterianas en los champiñones cultivados . [ 42 ] De manera similar, P. agarici puede causar láminas goteantes en los champiñones cultivados. [ 43 ]
Utilizar como agentes de biocontrol
Desde mediados de la década de 1980, ciertos miembros del género Pseudomonas se han aplicado a semillas de cereales o directamente al suelo para prevenir el crecimiento o el establecimiento de patógenos de cultivos. Esta práctica se conoce genéricamente como biocontrol . Las propiedades de biocontrol de las cepas de P. fluorescens y P. protegens (CHA0 o Pf-5, por ejemplo) son las mejor comprendidas actualmente, aunque no está claro cómo se logran exactamente las propiedades promotoras del crecimiento vegetal de P. fluorescens . Las teorías incluyen: que las bacterias podrían inducir resistencia sistémica en la planta huésped, de modo que pueda resistir mejor el ataque de un patógeno verdadero; que las bacterias podrían competir con otros microbios del suelo (patógenos), por ejemplo, mediante sideróforos que les otorgan una ventaja competitiva en la captación de hierro; que las bacterias podrían producir compuestos antagonistas de otros microbios del suelo, como antibióticos de tipo fenazina o cianuro de hidrógeno . La evidencia experimental respalda todas estas teorías. [ 44 ]
Otras especies notables de Pseudomonas con propiedades de biocontrol incluyen P. chlororaphis , que produce un agente antibiótico activo de tipo fenazina contra ciertos patógenos fúngicos de plantas, [ 45 ] y la especie estrechamente relacionada P. aurantiaca , que produce di-2,4-diacetilfluoroglucilmetano , un compuesto antibiótico activo contra organismos Gram-positivos . [ 46 ]
Utilizar como agentes de biorremediación
Algunos miembros de este género son capaces de metabolizar contaminantes químicos en el medio ambiente y, como resultado, pueden utilizarse para la biorremediación . Entre las especies destacadas que han demostrado ser adecuadas para su uso como agentes de biorremediación se incluyen:
- P. alcaligenes , que puede degradar hidrocarburos aromáticos policíclicos . [ 47 ]
- P. mendocina , que es capaz de degradar el tolueno . [ 48 ]
- P. pseudoalcaligenes , que es capaz de utilizar cianuro como fuente de nitrógeno . [ 49 ]
- P. resinovorans , que puede degradar el carbazol . [ 50 ]
- P. aeruginosa , P. putida , P. desmolyticum y P. nitroreducens pueden degradar el clorpirifos . [ 51 ]
- P. veronii , que ha demostrado degradar una variedad de compuestos orgánicos aromáticos simples . [ 52 ] [ 53 ]
- P. putida , que tiene la capacidad de degradar disolventes orgánicos como el tolueno . [ 54 ] Al menos una cepa de esta bacteria es capaz de convertir la morfina en solución acuosa en el fármaco hidromorfona (Dilaudid),más potente y algo costoso de fabricar
- La cepa KC de P. stutzeri , que es capaz de degradar el tetracloruro de carbono . [ 55 ]
Riesgos asociados con Pseudomonas
Pseudomonas es un género de bacterias conocido por estar asociado con varias enfermedades que afectan a humanos, plantas y animales.
Humanos y animales
Una de las cepas más preocupantes de Pseudomonas es Pseudomonas aeruginosa , responsable de un número considerable de infecciones nosocomiales. Numerosos hospitales y centros médicos se enfrentan a desafíos constantes para tratar las infecciones por Pseudomonas . Los síntomas de estas infecciones son causados por proteínas secretadas por la bacteria y pueden incluir neumonía , septicemia e infecciones del tracto urinario . [ 56 ] Pseudomonas aeruginosa es altamente contagiosa y ha mostrado resistencia a los tratamientos antibióticos, lo que dificulta su manejo efectivo. Se sabe que algunas cepas de Pseudomonas atacan a los glóbulos blancos en diversas especies de mamíferos , lo que representa un riesgo para humanos, ganado vacuno, ovino y canino. [ 57 ]
Pez
Si bien Pseudomonas aeruginosa parece ser un patógeno que afecta principalmente a los humanos, otra cepa conocida como Pseudomonas plecoglossicida representa un riesgo para los peces. Esta cepa puede causar inflamación gástrica y hemorragias en las poblaciones de peces. [ 57 ]
Plantas y hongos
Se reconocen diversas cepas de Pseudomonas como patógenos en el reino vegetal. En particular, la familia Pseudomonas syringae está relacionada con enfermedades que afectan a una amplia gama de plantas agrícolas, y diferentes cepas muestran adaptaciones a especies hospedadoras específicas. En concreto, la cepa virulenta Pseudomonas tolaasii es responsable de causar tizón y degradación en especies de hongos comestibles. [ 57 ]
Detección de agentes de deterioro de los alimentos en la leche.
Una forma de identificar y categorizar múltiples organismos bacterianos en una muestra es mediante el uso de ribotipificación. [ 58 ] En la ribotipificación, se aíslan diferentes longitudes de ADN cromosómico de muestras que contienen especies bacterianas y se digieren en fragmentos. [ 58 ] Los tipos similares de fragmentos de diferentes organismos se visualizan y sus longitudes se comparan entre sí mediante Southern blotting o mediante el método mucho más rápido de reacción en cadena de la polimerasa (PCR) . [ 58 ] Los fragmentos se pueden luego comparar con secuencias encontradas en especies bacterianas. [ 58 ] Se ha demostrado que la ribotipificación es un método para aislar bacterias capaces de causar deterioro. [ 59 ] Alrededor del 51% de las bacterias Pseudomonas encontradas en plantas procesadoras de lácteos son P. fluorescens , y el 69% de estos aislados poseen proteasas, lipasas y lecitinasas que contribuyen a la degradación de los componentes de la leche y su posterior deterioro. [ 59 ] Otras especies de Pseudomonas pueden poseer cualquiera de las proteasas, lipasas o lecitinasas, o ninguna en absoluto. [ 59 ] Las Pseudomonas del mismo ribotipo realizan una actividad enzimática similar , y cada ribotipo muestra diversos grados de deterioro de la leche y efectos en el sabor. [ 59 ] El número de bacterias afecta la intensidad del deterioro, y las especies de Pseudomonas no enzimáticas contribuyen al deterioro en grandes cantidades. [ 59 ]
El deterioro de los alimentos es perjudicial para la industria alimentaria debido a la producción de compuestos volátiles por parte de organismos que metabolizan los diversos nutrientes presentes en el producto alimenticio. [ 60 ] La contaminación produce riesgos para la salud debido a la producción de compuestos tóxicos, así como olores y sabores desagradables. [ 60 ] La tecnología de nariz electrónica permite la medición rápida y continua del deterioro microbiano de los alimentos al detectar los olores producidos por estos compuestos volátiles. [ 60 ] La tecnología de nariz electrónica puede aplicarse para detectar trazas de deterioro de la leche por Pseudomonas y aislar la especie de Pseudomonas responsable . [ 61 ] El sensor de gas consta de una parte nasal compuesta por 14 sensores de polímero modificables que pueden detectar productos específicos de degradación de la leche producidos por microorganismos. [ 61 ] Los datos del sensor se producen por cambios en la resistencia eléctrica de los 14 polímeros cuando están en contacto con su compuesto objetivo, mientras que cuatro parámetros del sensor pueden ajustarse para especificar aún más la respuesta. [ 61 ] Las respuestas pueden luego ser preprocesadas por una red neuronal que puede diferenciar entre microorganismos que deterioran la leche, como P. fluorescens y P. aureofaciens . [ 61 ]
Especies
Pseudomonas comprende las siguientes especies, [ 62 ] organizadas en grupos de afinidad genómica: [ 63 ] [ 64 ] [ 65 ] [ 66 ] [ 67 ] [ 68 ] [ 69 ]
Grupo P. aeruginosa
- P. aeruginosa (Schroeter 1872) Migula 1900 (Listas aprobadas 1980)
- P. citronellolis Seubert 1960 (Listas aprobadas 1980)
- P. delhiensis Prakash et al. 2007
- P. denitrificans Bergey et al. 1961
- P. jinjuensis Kwon et al. 2003
- P. knackmussii Stolz et al. 2007
- P. nicosulfuronedens Li et al. 2021
- P. nitroreducens Iizuka y Komagata 1964 (Listas aprobadas 1980)
- P. panipatensis Gupta et al. 2008
Grupo P. anguilsiseptica
- P. anguilliseptica Wakabayashi y Egusa 1972 (Listas aprobadas 1980)
- P. benzenivorans Lang et al. 2012
- P. borbori Vanparys et al. 2006
- P. campi Timsy et al. 2021
- P. cuatrocienegasensis Escalante et al. 2009
- P. glareae Romanenko et al. 2015
- P. guineae Bozal et al. 2007
- P. guryensis Kim et al. 2021
- P. lalucatii Busquets et al. 2021
- P. leptonychotis Nováková et al. 2020
- P. marincola Romanenko et al. 2008
- P. peli Vanparys et al. 2006
- P. segitis Park et al. 2006
- P. taeanensis Lee et al. 2010
- P. ullengensis Kim et al. 2021
Grupo P. fluorescens
Subgrupo P. asplenii
- P. agarici Young 1970 (Listas aprobadas 1980)
- P. asplenii (Ark y Tompkins 1946) Savulescu 1947 (Listas aprobadas 1980)
- P. batumici Kiprianova et al. 2011
- P. fuscovaginae (ex Tanii et al. 1976) Miyajima et al. 1983
- P. gingeri Cutri et al. 1984
- P. vanderleydeniana Girard et al. 2022
Subgrupo P. chlororaphis
- P. aurantiaca Nakhimovskaya 1948 (Listas aprobadas 1980)
- P. aureofaciens Kluyver 1956 (Listas aprobadas 1980)
- P. chlororaphis (Guignard y Sauvageau 1894) Bergey et al. 1930 (Listas aprobadas 1980)
- P. piscium (Burr et al. 2010) Chen et al. 2018
Subgrupo P. corrugata
- P. alvandae Girard et al. 2022
- P. bijieensis Liang et al. 2021
- P. brassicacearum Achouak et al. 2000
- P. canavaninivorans Hauth et al. 2022
- P. corrugata Roberts y Scarlett 1981
- P. kilonensis Sikorski et al. 2001
- P. marvdashtae Girard et al. 2022
- P. mediterránea Catara et al. 2002
- P. ogarae Garrido-Sanz et al. 2022
- P. tehranensis Girard et al. 2022
- P. thivervalensis Achouak et al. 2000
- P. viciae Zhao et al. 2020
- P. zanjanensis Girard et al. 2022
- P. zarinae Girard et al. 2022
Subgrupo P. fluorescens
- P. allii Sawada et al. 2021
- P. antarctica Reddy et al. 2004
- P. asgharzadehiana Girard et al. 2022
- P. aylmerensis corrig. Tchagang et al. 2021
- P. azadiae Girard et al. 2022
- P. azotoformans Iizuka y Komagata 1963 (Listas aprobadas 1980)
- P. canadensis Tambong et al. 2017
- P. carnis Lick et al. 2020
- P. cedrina corrig. Dabboussi et al. 2002
- P. costantinii Munsch et al. 2002
- P. cremoris Hofmann et al. 2021
- P. cyclaminis Sawada et al. 2021
- P. edaphica Ramírez-Bahena et al. 2019
- P. extremaustralis López et al. 2010
- P. extremoorientalis Ivanova et al. 2002
- P. fildesensis Pavlov et al. 2020
- P. fluorescens Migula 1895 (Listas aprobadas 1980)
- P. fulgida Naureen et al. 2005
- P. grimontii Baïda et al. 2002
- P. haemolytica Hofmann et al. 2020
- P. kairouanensis Oueslati et al. 2020
- P. karstica Švec et al. 2020
- P. khavaziana Girard et al. 2022
- P. kitaguniensis Sawada et al. 2020
- P.lactis von Neubeck et al. 2017
- P. lactucae Sawada et al. 2021
- P. libanensis Dabboussi et al. 1999
- P. lurida Behrendt et al. 2007
- P. marginalis (Brown 1918) Stevens 1925 (Listas aprobadas 1980)
- P. nabeulensis Oueslati et al. 2020
- P. orientalis Dabboussi et al. 2002
- P. palleroniana Gardan et al. 2002
- P. panacis Park et al. 2005
- P. paracarnis Lick et al. 2021
- P. paralactis von Neubeck et al. 2017
- P. pisciculturae Duman et al. 2021
- P. poae Behrendt et al. 2003
- P. rhodesiae Coroler et al. 1997
- P. salmasensis Girard et al. 2022
- P. salomonii Gardan et al. 2002
- P. simiae Vela et al. 2006
- P. sivasensis Duman et al. 2020
- P. spelaei Švec et al. 2020
- P. synxantha (Ehrenberg 1840) Holanda 1920 (Listas aprobadas 1980)
- P. tolaasii Paine 1919 (Listas aprobadas 1980)
- P. tritici Girard et al. 2022
- P. trivialisBehrendt et al. 2003
- P. veronii Elomari et al. 1996
- P. yamanorum Arnau et al. 2015
Subgrupo P. fragi
- P. bubulae Lick et al. 2020
- P. deceptionensis Carrión et al. 2011
- P. endophytica Ramírez-Bahena et al. 2015
- P. fragi (Eichholz 1902) Gruber 1905 (Listas aprobadas 1980)
- P. helleri von Neubeck et al. 2016
- P. lundensis Molin et al. 1986
- P. paraversuta Lick et al. 2021
- P. psychrophila Yumoto et al. 2002
- P. saxonica Hofmann et al. 2020
- P. taetrolens Haynes 1957 (Listas aprobadas 1980)
- P. versuta See-Too et al. 2017
- P. weihenstephanensis von Neubeck et al. 2016
Subgrupo P. gessardii
- P. brenneri Baïda et al. 2002
- P. gessardii Verhille et al. 1999
- P. meridiana Reddy et al. 2004
- P. mucidolens Levine y Anderson 1932 (Listas aprobadas 1980)
- P. proteolytica Reddy et al. 2004
- P. shahriarae Girard et al. 2022
Subgrupo P. jessenii
- P. azerbaijanoccidentalis corrig. Girard et al. 2022
- P. azerbaijanorientalis corrig. Girard et al. 2022
- P. izuensis Lu et al. 2020
- P. jessenii Verhille et al. 1999
- P. laurylsulfatiphila corrig. Furmanczyk et al. 2019
- P. laurylsulfativorans corrig. Furmanczyk et al. 2019
- P. mohnii Cámara et al. 2007
- P. moorei Cámara et al. 2007
- P. reinekei Cámara et al. 2007
- P. umsongensis Kwon et al. 2003
- P. vancouverensisMohn et al. 1999
Subgrupo P. koreensis
- P. allokribbensis Morimoto et al. 2021
- P. anatoliensis Duman et al. 2021
- P. atacamensis Poblete-Morales et al. 2021
- P. atagonensis corrig. Morimoto et al. 2020
- P. baetica López et al. 2012
- P. bananamidigenes Girard et al. 2021
- P. botevensis Girard et al. 2021
- P. crudilactis Schlusselhuber et al. 2021
- P. ekonensis Girard et al. 2022
- P. glycinae Jia et al. 2021
- P. gozinkensis Morimoto et al. 2021
- P. granadensis Pascual et al. 2015
- P. hamedanensis Girard et al. 2022
- P. helmanticensis Ramírez-Bahena et al. 2014
- P.iranensis Girard et al. 2022
- P. iridis Duman et al. 2021
- P. khorasanensis Girard et al. 2022
- P. koreensis Kwon et al. 2003
- P. kribbensis Chang et al. 2016
- P. monsensis Girard et al. 2022
- P. moraviensis Tvrzová et al. 2006
- P. neuropathica Duman et al. 2021
- P. siliginis Girard et al. 2022
- P. tensinigenes Girard et al. 2022
- P. triticicola Girard et al. 2022
- P. zeae Girard et al. 2022
Subgrupo P. mandelii
- P. arsenicoxydans Campos et al. 2011
- P. Farris Girard et al. 2022
- P. frederiksbergensis Andersen et al. 2000
- P. gregormendelii Kosina et al. 2016
- P. lini Delorme et al. 2002
- P. mandeliiVerhille et al. 1999
- P. migulae Verhille et al. 1999
- P. mucoides Duman et al. 2021
- P. piscicola Duman et al. 2021
- P. prosekii Kosina et al. 2014
- P. silesiensis Kaminski et al. 2018
Subgrupo P. protegens
- P. aestus Vasconcellos et al. 2017
- P. piscis Liu et al. 2020
- P. protegens Ramette et al. 2012
- P. saponiphila Lang et al. 2012
- P. sessilinigenes Girard et al. 2021
incertae sedis
- P. blatchfordae Blatchford y Schuster 1980
- P. kielensis Gieschler et al. 2021
Grupo P. linyingensis
- P. guangdongensis Yang et al. 2013
- P. linyingensis He et al. 2015
- P. oryzae Yu et al. 2013
- P. sagittaria Lin et al. 2013
Grupo P. lutea
- P. abietaniphila Mohn et al. 1999
- P. bohemica Saati-Santamaría et al. 2018
- P. graminisBehrendt et al. 1999
- P. lutea Peix et al. 2004
Grupo P. massiliensis
- P. massiliensis Bardet et al. 2018
- P. typographi Peral-Aranega et al. 2021
Grupo P. oleovorans
- P. alcaliphila Yumoto et al. 2001
- P. chaetocerotis Girard et al.
- P. chengduensis Tao et al. 2014
- P. composti Gibello et al. 2011
- P. guguanensis Liu et al. 2013
- P. hidrolytica Zhou et al. 2020
- P. indoloxydans Manickam et al. 2008
- P. khazarica Tarhriz et al. 2020
- P. mendocina Palleroni 1970 (Listas aprobadas 1980)
- P. oleovorans Lee y Chandler 1941 (Listas aprobadas 1980)
- P. sediminisBehera et al. 2018
- P. sihuiensis Wu et al. 2014
- P. toyotomiensis Hirota et al. 2011
Grupo P. oryzihabitans
- P. asuensis Reddy y García-Pichel 2015
- P. duriflava Liu et al. 2008
- P. luteola Kodama et al. 1985
- P. oryzihabitans Kodama et al. 1985
- P. rhizoryzae Wang et al. 2020
Grupo P. pohangensis
- P. mangrovi Ye et al. 2019
- P. pohangensis Weon et al. 2006
Grupo P. putida
- P. akappageensis corrig. Morimoto et al. 2020
- P. alquilfenolica Mulet et al. 2015
- P. alloputida Keshavarz-Tohid et al. 2020
- P. anuradhapurensis Girard et al. 2022
- P. arcuscaelestis Mulet et al. 2021
- P. asiatica Tohya et al. 2019
- P. brassicae Sawada et al. 2020
- P. capeferrum Berendsen et al. 2015
- P. cremoricolorata Uchino et al. 2002
- P. defluvii Qin et al. 2020
- P. donghuensis Gao et al. 2015
- P. entomophila Mulet et al. 2012
- P. fakonensis Girard et al. 2022
- P. farsensis Girard et al. 2022
- P. fulva Iizuka y Komagata 1963 (Listas aprobadas 1980)
- P. guariconensis Toro et al. 2013
- P. huaxiensis Qin et al. 2019
- P. hunanensis Gao et al. 2014
- P. hutmensis Xiang et al. 2019
- P. inefficax Keshavarz-Tohid et al. 2019
- P. japonica Pungrasmi et al. 2008
- P. juntendi Tohya et al. 2019
- P. kermanshahensis Girard et al. 2022
- P. kurunegalensis Girard et al. 2022
- P. laurentiana Wright et al. 2019
- P. maumuensis Girard et al. 2022
- P. monteilii Elomari et al. 1997
- P. mosselii Dabboussi et al. 2002
- P. muyukensis Girard et al. 2022
- P. oryzicola Girard et al. 2022
- P. oryziphila Yang et al. 2021
- P. palmensis Gutiérrez-Albanchez et al. 2022
- P. parafulva Uchino et al. 2002
- P. peradeniyensis Girard et al. 2022
- P. persica Keshavarz-Tohid et al. 2020
- P. plecoglossicida Nishimori et al. 2000
- P. promysalinigenes Girard et al. 2022
- P. putida (Trevisan 1889) Migula 1895 (Listas aprobadas 1980)
- P. pyomelaminifaciens Chakraborty et al.
- P. qingdaonensis Wang et al. 2019
- P. reidholzensis Frasson et al. 2017
- P. shirazensis Girard et al. 2022
- P. shirazica Keshavarz-Tohid et al. 2020
- P. sichuanensis Qin et al. 2019
- P. soli Pascual et al. 2015
- P. taiwanensis Wang et al. 2010
- P. tructae Oh et al. 2019
- P. urmiensis Girard et al. 2022
- P. vlassakiae Girard et al. 2021
- P. vranovensis Tvrzová et al. 2006
- P. wadenswilerensis Frasson et al. 2017
- P. wayambapalatensis Girard et al. 2021
- P. xantholysinigenes Girard et al. 2022
- P. xanthosomatis corrig. Girard et al. 2022
Grupo P. resinovorans
- P. furukawaii Kimura et al. 2018
- P. lalkuanensis Thorat et al. 2020
- P. mangiferae Anurat et al. 2019
- P. otitidis Clark et al. 2006
- P. resinovorans Delaporte et al. 1961 (Listas aprobadas 1980)
Grupo P. rhizosphaerae
- P. baltica Gieschler et al. 2021
- P. coleopterorum Menéndez et al. 2015
- P. eucalypticola Liu et al. 2021
- P. rhizosphaerae Peix et al. 2003
Grupo P. straminea
- P. argentinensis Peix et al. 2005
- P. daroniae Bueno-González et al. 2019
- P. dryadis Bueno-González et al. 2019
- P. flavescens Hildebrand et al. 1994
- P. punonensis Ramos et al. 2013
- P. seleniipraecipitans corrig. Cazador y Manter 2011
- P. straminea correg. Iizuka y Komagata 1963 (Listas aprobadas 1980)
Grupo P. stutzeri
- P. azotifigens Hatayama et al. 2005
- P. balearica Bennasar et al. 1996
- P. chloritidismutans Wolterink et al. 2002
- P. kirkiae Bueno-González et al. 2020
- P. nitrititolerans Peng et al. 2019
- P. nosocomialis Mulet et al. 2019
- P. saudiphocaensis Azhar et al. 2017
- P. songnenensis Zhang et al. 2015
- P. stutzeri (Lehmann y Neumann 1896) Sijderius 1946 (Listas aprobadas 1980)
- P. urumqiensis Zou et al. 2019
- P. xanthomarina Romanenko et al. 2005
- P. zhaodongensis Zhang et al. 2015
Grupo P. syringae
- P. alliivorans Zhao et al. 2021
- P. amygdali Psallidas y Panagopoulos 1975 (Listas aprobadas 1980)
- P. asturiensis González et al. 2013
- P. avellanae Janse et al. 1997
- P. cannabina (ex Šutič y Dowson 1959) Gardan et al. 1999
- P. capsici Zhao et al. 2021
- P. caricapayae Robbs 1956 (Listas aprobadas 1980)
- P. caspiana Busquets et al. 2017
- P. cerasi Kałuzna et al. 2017
- P. cichorii (Swingle 1925) Stapp 1928 (Listas aprobadas 1980)
- P. congelans Behrendt et al. 2003
- P. coronafaciens (Elliott 1920) Stevens 1958
- P. ficuserectae Goto 1983
- P. floridensis Timilsina et al. 2018
- P. foliumensis Tambong et al. 2021
- P. helianthi Elasri et al. 2001
- P. meliae Ogimi 1981
- P. ovata Rao et al. 2021
- P. savastanoi (Janse 1982) Gardan et al. 1992
- P. syringae van Hall 1902 (Listas aprobadas 1980)
- P. tomato Gardan et al. 1999
- P. tremae Gardan et al. 1999
- P. triticumensis Tambong et al. 2021
- P. viridiflava (Burkholder 1930) Dowson 1939 (Listas aprobadas 1980)
- P. acephalitica Tapia-Paniagua et al. 2014
- P. acidophila Imada et al. 1981
- " Ca. P. adelgestsugas " von Dohlen et al. 2013
- P. alcaligenes Monias 1928 (Listas aprobadas 1980)
- P. alginovora Boyen et al. 1990
- P. alkanolytica Nakao y Kuno 1972
- P. amyloderamosa Norrman y Wober 1975
- P. andersonii Han et al. 2001
- P. bathycetes Quigley y Colwell 1968
- P. borealis Wilson et al. 2006
- P. cavernae Zhu et al. 2022
- P. cavernicola Zhu et al. 2022
- P. cellulosa Andrews et al. 2000
- P. clemancea Rahman et al. 2010
- P. coenobios ZoBell y Upham 1944
- P. diazotrophicus Watanabe et al. 1987
- P. diterpeniphila Morgan y Wyndham 2002
- P. elodea Fialho et al. 1991
- P. excibis Steinhaus
- P. flexibilis (Hespell 1977) Shin et al. 2016
- P. fluvialis Sudán et al. 2018
- P. gelidicola Kadota 1951 (Listas aprobadas 1980)
- P. guezennei Simon-Colin et al. 2008
- P. halodenitrificans Alonso et al. 2001
- P. halodurans Cuhel et al. 1981
- P. halosaccharolytica Ohno et al. 1976
- P. halosensibilis Zou y Cai 1994
- P. hydrogenothermophila Goto et al. 1978
- P. hidrogenovora Igarashi et al. 1980
- P. indica Pandey et al. 2002
- P. jinanensis Cai et al. 1989
- P. kuykendallii Hunter y Manter 2012
- P. lopnurensis Mamtimin et al. 2021
- P. lubricantes Rehman et al. 2010
- P. matsuisoli Lin et al. 2015
- " P. melophthora Allen y Riker 1932
- P. mesoacidophila Kintaka et al. 1981
- P. multiresinovorans Hernández et al. 2008
- P. perolens Szybalski 1950
- P. pharmacofabricae corrig. Yu et al. 2019
- P. pratensis Zhang et al. 2021
- P. quercus Li et al. 2021
- P. raguenesii Simon-Colin et al. 2009
- P. reactans Preece y Wong 1982
- P. reptilivora Caldwell y Ryerson 1940
- P. rhizophila Hassen et al. 2018
- P. rhizovicinus He et al. 2021
- P. rubescens Pivnick 1955
- P. schmalbachii Shelomi et al. 2021
- P. septica Bergey et al. 1930
- P. sésami Madhaiyan et al. 2017
- P. siderocapsa Falamin y Pinevich 2006
- P. suis Woods 1930
- P. tamsuii Liang et al. 2015
- P. tarimensis Anwar et al. 2017
- P. teessidea Rahman et al. 2010
- P. thermocarboxydovorans Lyons et al. 1984
- P. termotolerantes Manaia y Moore 2002
- P. tianjinensis Chen et al. 2018
- P. tohonis Yamada et al. 2021
- P. turbinallae Sreenivasan 1956
- P. turukhanskensis Korshunova et al. 2016
- P. tuticorinensis Sreenivasan 1956
- P. wenzhouensis Zhang et al. 2021
- P. xionganensis Zhao et al. 2020
- P. yangonensis Tohya et al. 2020
Especies previamente clasificadas en el género
Recientemente, el análisis de la secuencia del ARNr 16S redefinió la taxonomía de muchas especies bacterianas previamente clasificadas dentro del género Pseudomonas . [ 15 ] Las especies eliminadas de Pseudomonas se enumeran a continuación; al hacer clic en una especie, se mostrará su nueva clasificación. El término «pseudomonad» no se aplica estrictamente solo al género Pseudomonas , y también puede usarse para incluir miembros anteriores como los géneros Burkholderia y Ralstonia .
α proteobacterias: P. abikonensis , P. aminovorans , P. azotocolligans , P. carboxydohydrogena , P. carboxidovorans , P. compransoris , P. diminuta , P. echinoides , P. extorquens , P. lindneri , P. mesophilica , P. paucimobilis , P. radiora , P. rhodos , P. riboflavina , P. rosea , P. vesicularis .
Proteobacterias β: P. acidovorans , P. alliicola , P. antimicrobica , P. avenae , P. butanovora , P. caryophylli , P. Cattleyae , P. cepacia , P. cocovenenans , P. delafieldii , P. facilis , P. flava , P. gladioli , P. glathei , P. glumae , P. huttiensis , P. indigofera , P. lanceolata , P. lemoignei , B. mallei , P. mephitica , P. mixta , P. palleronii , P. phenazinium , P. pickettii , P. plantarii , P. pseudoflava , B. pseudomallei , P. pyrrocinia , P. rubrilineans , P. rubrisubalbicans , P. saccharophila , P. solanacearum , P. spinosa , P. syzygii , P. taeniospiralis , P. terrigena , P. testosteroni .
Proteobacterias γ-β: P. boreopolis , P. cissicola , P. geniculata , P. hibiscicola , P. maltophilia , P. pictorum .
γ proteobacterias: P. beijerinckii , P. diminuta , P. doudoroffii , P. elongata , P. flectens , P. marinus , P. halophila , P. iners , P. marina , P. nautica , P. nigrifaciens , P. pavonacea , [ 70 ] P. piscicida , P. stanieri .
δ proteobacterias: P. formicans .
Filogenética
Las siguientes relaciones entre grupos de afinidad genómica se han determinado mediante análisis filogenético : [ 71 ] [ 72 ]
Bacteriófagos
Hay varios bacteriófagos que infectan a Pseudomonas , por ejemplo
- Fago Φ6 de Pseudomonas
- Fago ΦCTX de Pseudomonas
- Fago EL de Pseudomonas aeruginosa [ 73 ]
- Fago ΦKMV de Pseudomonas aeruginosa (un Phikmvvirus ) [ 74 ]
- Fago LKD16 de Pseudomonas aeruginosa (un Phikmvvirus ) [ 75 ]
- Fago LKA1 de Pseudomonas aeruginosa (un Phikmvvirus ) [ 75 ]
- Fago LUZ19 de Pseudomonas aeruginosa (un Phikmvvirus )
- Fago ΦKZ de Pseudomonas aeruginosa [ 73 ]
- Pseudomonas putida fago gh-1 [ 76 ]
- Virus Pseudomonas 42 [ 77 ]
Véase también
- Colección cultural para una lista de colecciones culturales
Notas a pie de página
- ↑ Para facilitar la fluidez de la prosa en inglés, los nombres de los géneros pueden "trivializarse" para formar un nombre vernáculo que se refiera a un miembro del género: para el género Pseudomonas es "pseudomonad" (plural: "pseudomonads"), una variante de los casos no nominativos en la declinación griega de monas, monada . [ 78 ] Por razones históricas, los miembros de varios géneros que antes se clasificaban como especies de Pseudomonas pueden denominarse pseudomonads, mientras que el término "pseudomonad fluorescente" se refiere estrictamente a los miembros actuales del género Pseudomonas , ya que estos producen pioverdina , un sideróforo fluorescente . [ 4 ] Este último término, pseudomonad fluorescente, es distinto del término grupo P. fluorescens , que se utiliza para distinguir un subconjunto de miembros de Pseudomonas sensu stricto y no como un todo.
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Enlaces externos
General
- Pseudomonas en el origen de la lluvia y la nieve del mundo.
- Las bacterias del género Pseudomonas sobreviven en reactores nucleares.
- Base de datos del genoma de Pseudomonas
- Pseudomonas
- Vídeo de Pseudomonas fluorescentes
- Pseudomonadales
- géneros de bacterias
- psicrófilos
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- Bacterias patógenas