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Sitio CpG

En una de las hebras de ADN se indica un sitio CpG, es decir , la secuencia de nucleótidos "5'—C—fosfato—G—3'". En la hebra de ADN opuesta (en azul), se muestra el sitio complem...

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En una de las hebras de ADN se indica un sitio CpG, es decir , la secuencia de nucleótidos "5'—C—fosfato—G—3'". En la hebra de ADN opuesta (en azul), se muestra el sitio complementario 5'—CpG—3'. También se indica un apareamiento de bases CG entre las dos hebras de ADN (a la derecha).

Los sitios CpG o sitios CG son regiones de ADN donde un nucleótido de citosina es seguido por un nucleótido de guanina en la secuencia lineal de bases en dirección 5' → 3' . Los sitios CpG se presentan con alta frecuencia en regiones genómicas denominadas islas CpG . Los CpG son la unidad común de metilación porque su información es de doble cadena (el complemento GpC también se metila). Esto permite que la información de metilación se conserve durante la división celular.

Las citosinas en los dinucleótidos CpG pueden metilarse para formar 5-metilcitosinas . Las enzimas que añaden un grupo metilo se denominan ADN metiltransferasas . En los mamíferos, entre el 70 % y el 80 % de las citosinas CpG están metiladas. [ 1 ] La metilación de la citosina dentro de un gen puede cambiar su expresión , un mecanismo que forma parte de un campo científico más amplio que estudia la regulación génica, denominado epigenética . Las citosinas metiladas a menudo mutan a timinas .

En los seres humanos, aproximadamente el 70% de los promotores ubicados cerca del sitio de inicio de la transcripción de un gen ( promotores proximales ) contienen una isla CpG. [ 2 ] [ 3 ]

Características de CpG

Definición

CpG es la abreviatura de 5'—C—fosfato—G—3' , es decir, citosina y guanina separadas por un solo grupo fosfato ; el fosfato une dos nucleósidos cualesquiera en el ADN. La notación CpG se utiliza para distinguir esta secuencia lineal monocatenaria del apareamiento de bases CG de citosina y guanina en secuencias bicatenarias. Por lo tanto, la notación CpG debe interpretarse como que la citosina se encuentra en la posición 5' prima con respecto a la guanina. No debe confundirse CpG con GpC , que indica que una guanina está seguida por una citosina en la dirección 5' → 3' de una secuencia monocatenaria.

Subrepresentación causada por una alta tasa de mutación

Se ha observado durante mucho tiempo que los dinucleótidos CpG aparecen con una frecuencia mucho menor en la secuencia de los genomas de vertebrados de lo que se esperaría debido al azar. Por ejemplo, en el genoma humano, que tiene un contenido de GC del 42% , [ 4 ] se esperaría que apareciera un par de nucleótidos que consisten en citosina seguida de guanina.0,21×0,21=4.41%{\displaystyle 0.21\times 0.21=4.41\%}del tiempo. La frecuencia de dinucleótidos CpG en los genomas humanos es menos de una quinta parte de la frecuencia esperada. [ 5 ]

Esta subrepresentación es consecuencia de la alta tasa de mutación de los sitios CpG metilados: la desaminación espontánea de una citosina metilada produce una timina , y las bases G:T resultantes, mal emparejadas, a menudo se resuelven incorrectamente a A:T; mientras que la desaminación de una citosina no metilada produce un uracilo , que, como base extraña, es rápidamente reemplazado por una citosina mediante el mecanismo de reparación por escisión de bases . La tasa de transición de C a T en los sitios CpG metilados es aproximadamente 10 veces mayor que en los sitios no metilados. [ 6 ] [ 7 ] [ 8 ] [ 9 ]

Distribución genómica

Los dinucleótidos CpG aparecen frecuentemente en islas CpG (véase la definición de islas CpG más adelante). Hay 28.890 islas CpG en el genoma humano (50.267 si se incluyen las islas CpG en secuencias repetitivas). [ 10 ] Esto concuerda con las 28.519 islas CpG encontradas por Venter et al. [ 11 ] dado que la secuencia del genoma de Venter et al. no incluía el interior de elementos repetitivos muy similares ni las regiones repetitivas extremadamente densas cerca de los centrómeros. [ 12 ] Dado que las islas CpG contienen múltiples secuencias de dinucleótidos CpG, parece haber más de 20 millones de dinucleótidos CpG en el genoma humano.

Islas CpG

La metilación de los sitios CpG, seguida de una desaminación espontánea, provoca una falta de sitios CpG en el ADN metilado. Como resultado, se crean islas CpG residuales en áreas donde la metilación es escasa y los sitios CpG se mantienen (o donde la mutación de C a T es altamente perjudicial).

Las islas CpG (o islas CG) son regiones con una alta frecuencia de sitios CpG. Si bien las definiciones objetivas de las islas CpG son limitadas, la definición formal habitual es una región con al menos 200 pb , un porcentaje de GC superior al 50 % y una relación CpG observada/esperada superior al 60 %. La "relación CpG observada/esperada" se puede derivar donde la observada se calcula como:(número de dopagGRAMOs){\displaystyle ({\text{número de }}CpGs)}y lo esperado como(número de do∗número de GRAMO)/longitud de la secuencia{\displaystyle ({\text{número de }}C*{\text{número de }}G)/{\text{longitud de la secuencia}}}[ 13 ] o((número de do+número de GRAMO)/2)2/longitud de la secuencia{\displaystyle (({\text{número de }}C+{\text{número de }}G)/2)^{2}/{\text{longitud de la secuencia}}}. [ 14 ]

Muchos genes en los genomas de mamíferos tienen islas CpG asociadas al inicio del gen [ 15 ] ( regiones promotoras ). Por ello, la presencia de una isla CpG se utiliza para ayudar en la predicción y anotación de genes.

En los genomas de mamíferos, las islas CpG suelen tener una longitud de entre 300 y 3000 pares de bases, y se han encontrado en o cerca de aproximadamente el 40 % de los promotores de genes de mamíferos. [ 16 ] Más del 60 % de los genes humanos y casi todos los genes constitutivos tienen sus promotores incrustados en islas CpG. [ 17 ] Dada la frecuencia de secuencias de dos nucleótidos GC, el número de dinucleótidos CpG es mucho menor de lo que cabría esperar. [ 14 ]

Un estudio de 2002 revisó las reglas de predicción de islas CpG para excluir otras secuencias genómicas ricas en GC, como las repeticiones Alu . Basándose en una búsqueda exhaustiva en las secuencias completas de los cromosomas humanos 21 y 22, se encontró que las regiones de ADN mayores de 500 pb tenían más probabilidades de ser las islas CpG "verdaderas" asociadas con las regiones 5' de los genes si tenían un contenido de GC mayor del 55% y una relación CpG observada/esperada del 65%. [ 18 ]

Las islas CpG se caracterizan por un contenido de dinucleótidos CpG de al menos el 60% del que se esperaría estadísticamente (~4–6%), mientras que el resto del genoma tiene una frecuencia de CpG mucho menor (~1%), un fenómeno llamado supresión de CG . A diferencia de los sitios CpG en la región codificante de un gen, en la mayoría de los casos los sitios CpG en las islas CpG de los promotores no están metilados si los genes se expresan. Esta observación llevó a la especulación de que la metilación de los sitios CpG en el promotor de un gen puede inhibir la expresión génica. La metilación, junto con la modificación de histonas , es fundamental para la impronta . [ 19 ] La mayoría de las diferencias de metilación entre tejidos, o entre muestras normales y cancerosas, ocurren a corta distancia de las islas CpG (en las "costas de las islas CpG") en lugar de en las islas mismas. [ 20 ]

Las islas CpG suelen aparecer en o cerca del sitio de inicio de la transcripción de los genes, particularmente los genes constitutivos , en los vertebrados. [ 14 ] La base AC (citosina) seguida inmediatamente de una base G (guanina) (un CpG) es rara en el ADN de los vertebrados porque las citosinas en tal disposición tienden a estar metiladas. Esta metilación ayuda a distinguir la cadena de ADN recién sintetizada de la cadena parental, lo que ayuda en las etapas finales de la corrección de pruebas del ADN después de la duplicación. Sin embargo, con el tiempo, las citosinas metiladas tienden a convertirse en timinas debido a la desaminación espontánea . Hay una enzima especial en los humanos ( timina-ADN glicosilasa , o TDG) que reemplaza específicamente las T de los desajustes T/G. Sin embargo, debido a la rareza de los CpG, se teoriza que es insuficientemente eficaz para prevenir una posible mutación rápida de los dinucleótidos. La existencia de islas CpG se suele explicar por la existencia de fuerzas selectivas que favorecen un contenido relativamente alto de CpG o bajos niveles de metilación en esa región genómica, posiblemente relacionados con la regulación de la expresión génica. Un estudio de 2011 demostró que la mayoría de las islas CpG son resultado de fuerzas no selectivas. [ 21 ]

Metilación, silenciamiento génico, cáncer y envejecimiento.

Una imagen que muestra un mecanismo evolutivo hipotético detrás de la formación de islas CpG.

Islas CpG en promotores

En los humanos, aproximadamente el 70% de los promotores ubicados cerca del sitio de inicio de la transcripción de un gen (promotores proximales) contienen una isla CpG . [ 2 ] [ 3 ]

Los elementos promotores distales también suelen contener islas CpG. Un ejemplo es el gen de reparación del ADN ERCC1 , donde el elemento que contiene la isla CpG se encuentra aproximadamente a 5400 nucleótidos río arriba del sitio de inicio de la transcripción del gen ERCC1 . [ 22 ] Las islas CpG también aparecen con frecuencia en los promotores de ARN no codificantes funcionales, como los microARN . [ 23 ]

La metilación de las islas CpG silencia de forma estable los genes.

En los seres humanos, la metilación del ADN ocurre en la posición 5 del anillo de pirimidina de los residuos de citosina dentro de los sitios CpG para formar 5-metilcitosinas . La presencia de múltiples sitios CpG metilados en las islas CpG de los promotores causa el silenciamiento estable de los genes. [ 24 ] El silenciamiento de un gen puede iniciarse por otros mecanismos, pero a menudo va seguido de la metilación de los sitios CpG en la isla CpG del promotor para causar el silenciamiento estable del gen. [ 24 ]

Hiper/hipometilación de CpG en el promotor del cáncer

En los cánceres, la pérdida de expresión de genes ocurre aproximadamente 10 veces más frecuentemente por hipermetilación de islas CpG promotoras que por mutaciones. Por ejemplo, en un cáncer colorrectal generalmente hay entre 3 y 6 mutaciones conductoras y entre 33 y 66 mutaciones acompañantes o pasajeras. [ 25 ] En contraste, en un estudio de tumores de colon comparados con la mucosa colónica adyacente de apariencia normal, 1734 islas CpG estaban fuertemente metiladas en los tumores, mientras que estas islas CpG no estaban metiladas en la mucosa adyacente. [ 26 ] La mitad de las islas CpG estaban en promotores de genes codificadores de proteínas anotados, [ 26 ] lo que sugiere que alrededor de 867 genes en un tumor de colon han perdido expresión debido a la metilación de islas CpG. Un estudio independiente encontró un promedio de 1549 regiones diferencialmente metiladas (hipermetiladas o hipometiladas) en los genomas de seis cánceres de colon (en comparación con la mucosa adyacente), de las cuales 629 estaban en regiones promotoras conocidas de genes. [ 27 ] Un tercer estudio encontró más de 2000 genes diferencialmente metilados entre cánceres de colon y mucosa adyacente. Mediante análisis de enriquecimiento de conjuntos de genes , 569 de 938 conjuntos de genes estaban hipermetilados y 369 estaban hipometilados en los cánceres. [ 28 ] La hipometilación de islas CpG en promotores da como resultado la sobreexpresión de los genes o conjuntos de genes afectados.

Un estudio de 2012 [ 29 ] enumeró 147 genes específicos con promotores hipermetilados asociados al cáncer de colon, junto con la frecuencia con la que se encontraron estas hipermetilaciones en los cánceres de colon. Al menos 10 de esos genes tenían promotores hipermetilados en casi el 100% de los cánceres de colon. También indicaron 11 microARN cuyos promotores estaban hipermetilados en cánceres de colon con frecuencias entre el 50% y el 100% de los cánceres. Los microARN (miARN) son pequeños ARN endógenos que se emparejan con secuencias en los ARN mensajeros para dirigir la represión postranscripcional. En promedio, cada microARN reprime varios cientos de genes diana. [ 30 ] Por lo tanto, los microARN con promotores hipermetilados pueden estar permitiendo la sobreexpresión de cientos o miles de genes en un cáncer.

La información anterior muestra que, en los cánceres, la hiper/hipometilación de CpG en los promotores de genes y de microARN provoca la pérdida de expresión (o a veces el aumento de la expresión) de muchos más genes que la mutación.

Genes de reparación del ADN con promotores hiper/hipometilados en cánceres

Los genes de reparación del ADN se reprimen frecuentemente en los cánceres debido a la hipermetilación de las islas CpG dentro de sus promotores. En los carcinomas de células escamosas de cabeza y cuello, al menos 15 genes de reparación del ADN tienen promotores hipermetilados frecuentemente; estos genes son XRCC1 , MLH3 , PMS1 , RAD51B , XRCC3 , RAD54B , BRCA1 , SHFM1 , GEN1 , FANCE , FAAP20 , SPRTN , SETMAR , HUS1 y PER1 . [ 31 ] Alrededor de diecisiete tipos de cáncer son frecuentemente deficientes en uno o más genes de reparación del ADN debido a la hipermetilación de sus promotores. [ 32 ] Como ejemplo, la hipermetilación del promotor del gen de reparación del ADN MGMT ocurre en el 93% de los cánceres de vejiga, el 88% de los cánceres de estómago, el 74% de los cánceres de tiroides, el 40%-90% de los cánceres colorrectales y el 50% de los cánceres cerebrales. La hipermetilación del promotor de LIG4 ocurre en el 82% de los cánceres colorrectales. La hipermetilación del promotor de NEIL1 ocurre en el 62% de los cánceres de cabeza y cuello y en el 42% de los cánceres de pulmón de células no pequeñas . La hipermetilación del promotor de ATM ocurre en el 47% de los cánceres de pulmón de células no pequeñas . La hipermetilación del promotor de MLH1 ocurre en el 48% de los carcinomas de células escamosas de cáncer de pulmón de células no pequeñas . La hipermetilación del promotor de FANCB ocurre en el 46% de los cánceres de cabeza y cuello .

Por otro lado, los promotores de dos genes, PARP1 y FEN1 , estaban hipometilados y estos genes se sobreexpresaban en numerosos cánceres. PARP1 y FEN1 son genes esenciales en la vía de reparación del ADN propensa a errores y mutagénica de unión de extremos mediada por microhomología . Si esta vía se sobreexpresa, el exceso de mutaciones que causa puede conducir al cáncer. PARP1 se sobreexpresa en leucemias activadas por tirosina quinasa, [ 33 ] en neuroblastoma, [ 34 ] en tumores testiculares y otros tumores de células germinales, [ 35 ] y en sarcoma de Ewing, [ 36 ] FEN1 se sobreexpresa en la mayoría de los cánceres de mama, [ 37 ] próstata, [ 38 ] estómago, [ 39 ] [ 40 ] neuroblastomas, [ 41 ] páncreas, [ 42 ] y pulmón. [ 43 ]

El daño al ADN parece ser la causa subyacente principal del cáncer. [ 44 ] [ 45 ] Si la reparación precisa del ADN es deficiente, los daños al ADN tienden a acumularse. Este exceso de daño al ADN puede aumentar los errores mutacionales durante la replicación del ADN debido a la síntesis translesional propensa a errores . El exceso de daño al ADN también puede aumentar las alteraciones epigenéticas debido a errores durante la reparación del ADN. [ 46 ] [ 47 ] Estas mutaciones y alteraciones epigenéticas pueden dar lugar al cáncer (véase neoplasias malignas ). Por lo tanto, la hiper/hipometilación de las islas CpG en los promotores de los genes de reparación del ADN probablemente sean centrales para la progresión al cáncer.

Metilación de sitios CpG con la edad

Dado que la edad tiene un fuerte efecto en los niveles de metilación del ADN en decenas de miles de sitios CpG, se puede definir un reloj biológico muy preciso (conocido como reloj epigenético o edad de metilación del ADN ) en humanos y chimpancés. [ 48 ]

Sitios no metilados

Los sitios de dinucleótidos CpG no metilados pueden detectarse mediante el receptor tipo Toll 9 ( TLR 9 ) [ 49 ] en células dendríticas plasmocitoides , monocitos , células asesinas naturales (NK) y células B en humanos. Esto se utiliza para detectar infecciones virales intracelulares.

Función de los sitios CpG en la memoria

En los mamíferos, las ADN metiltransferasas (que añaden grupos metilo a las bases del ADN) muestran preferencia de secuencia por las citosinas dentro de los sitios CpG. [ 50 ] En el cerebro del ratón, el 4,2 % de todas las citosinas están metiladas, principalmente en el contexto de los sitios CpG, formando 5mCpG. [ 51 ] La mayoría de los sitios 5mCpG hipermetilados aumentan la represión de los genes asociados. [ 51 ]

Como revisaron Duke et al., la metilación del ADN neuronal (que reprime la expresión de genes específicos) se ve alterada por la actividad neuronal. La metilación del ADN neuronal es necesaria para la plasticidad sináptica ; se modifica por las experiencias; y la metilación y desmetilación activas del ADN son necesarias para la formación y el mantenimiento de la memoria. [ 52 ]

En 2016, Halder et al. [ 53 ] utilizando ratones, y en 2017 Duke et al. [ 52 ] utilizando ratas, sometieron a los roedores a un condicionamiento de miedo contextual, lo que provocó la formación de una memoria a largo plazo especialmente fuerte . A las 24 horas después del condicionamiento, en la región cerebral del hipocampo de las ratas, la expresión de 1048 genes se reguló negativamente (generalmente asociada con 5mCpG en los promotores de genes ) y la expresión de 564 genes se reguló positivamente (a menudo asociada con hipometilación de sitios CpG en los promotores de genes). A las 24 horas después del entrenamiento, el 9,2% de los genes en el genoma de la rata de las neuronas del hipocampo estaban metilados diferencialmente. Sin embargo, aunque el hipocampo es esencial para aprender nueva información, no almacena información por sí mismo. En los experimentos con ratones de Halder, se observaron 1206 genes con metilación diferencial en el hipocampo una hora después del condicionamiento de miedo contextual, pero estas metilaciones alteradas se revirtieron y desaparecieron después de cuatro semanas. En contraste con la ausencia de cambios a largo plazo en la metilación de CpG en el hipocampo, se pudo detectar una metilación diferencial sustancial de CpG en las neuronas corticales durante el mantenimiento de la memoria. Se encontraron 1223 genes con metilación diferencial en la corteza cingulada anterior de los ratones cuatro semanas después del condicionamiento de miedo contextual.

La desmetilación en los sitios CpG requiere la actividad de ROS.

Inicio de la desmetilación del ADN en un sitio CpG.

En las células somáticas adultas, la metilación del ADN suele ocurrir en el contexto de dinucleótidos CpG ( sitios CpG ), formando 5-metilcitosina -pG, o 5mCpG. Las especies reactivas de oxígeno (ROS) pueden atacar la guanina en el sitio del dinucleótido, formando 8-hidroxi-2'-desoxiguanosina (8-OHdG), lo que resulta en un sitio de dinucleótido 5mCp-8-OHdG. La enzima de reparación por escisión de bases OGG1 se dirige a 8-OHdG y se une a la lesión sin escisión inmediata. OGG1, presente en un sitio 5mCp-8-OHdG, recluta a TET1 , y TET1 oxida la 5mC adyacente a la 8-OHdG. Esto inicia la desmetilación de 5mC. [ 54 ]

Desmetilación de la 5-metilcitosina (5mC) en el ADN neuronal.

Como se revisó en 2018, [ 55 ] en las neuronas cerebrales, la 5mC es oxidada por la familia de dioxigenasas de translocación diez-once (TET) ( TET1 , TET2 , TET3 ) para generar 5-hidroximetilcitosina (5hmC). En pasos sucesivos, las enzimas TET hidroxilan aún más la 5hmC para generar 5-formilcitosina (5fC) y 5-carboxilcitosina (5caC). La timidina-ADN glicosilasa (TDG) reconoce las bases intermedias 5fC y 5caC y escinde el enlace glucosídico dando como resultado un sitio apirimidínico ( sitio AP ). En una vía de desaminación oxidativa alternativa, el 5hmC puede ser desaminado oxidativamente por desaminasas del complejo de edición de ARNm de la citidina inducida por actividad/apolipoproteína B (AID/APOBEC) para formar 5-hidroximetiluracilo (5hmU) o el 5mC puede convertirse en timina (Thy). El 5hmU puede ser escindido por TDG, la uracilo-ADN glicosilasa 1 monofuncional selectiva de cadena simple ( SMUG1 ), la ADN glicosilasa 1 tipo Nei ( NEIL1 ) o la proteína de unión a metil-CpG 4 ( MBD4 ). Los sitios AP y los desajustes T:G son luego reparados por enzimas de reparación por escisión de bases (BER) para producir citosina (Cyt).

Dos revisiones [ 56 ] [ 57 ] resumen la gran cantidad de evidencia sobre el papel crítico y esencial de las ROS en la formación de la memoria . La desmetilación del ADN de miles de sitios CpG durante la formación de la memoria depende de la iniciación por ROS. En 2016, Zhou et al., [ 54 ] demostraron que las ROS tienen un papel central en la desmetilación del ADN .

TET1 es una enzima clave involucrada en la desmetilación de 5mCpG. Sin embargo, TET1 solo puede actuar sobre 5mCpG si un ROS ha actuado previamente sobre la guanina para formar 8-hidroxi-2'-desoxiguanosina (8-OHdG), lo que resulta en un dinucleótido 5mCp-8-OHdG (ver la primera figura de esta sección). [ 54 ] Después de la formación de 5mCp-8-OHdG, la enzima de reparación por escisión de bases OGG1 se une a la lesión 8-OHdG sin escisión inmediata. La adhesión de OGG1 al sitio 5mCp-8-OHdG recluta a TET1 , lo que permite que TET1 oxide la 5mC adyacente a 8-OHdG, como se muestra en la primera figura de esta sección. Esto inicia la vía de desmetilación que se muestra en la segunda figura de esta sección.

La expresión alterada de proteínas en las neuronas, controlada por la desmetilación dependiente de ROS de los sitios CpG en los promotores genéticos dentro del ADN neuronal, es fundamental para la formación de la memoria. [ 58 ]

Pérdida de CpG

Se ha observado una disminución de CpG en el proceso de metilación del ADN de los elementos transponibles (ET), donde los ET no solo son responsables de la expansión del genoma, sino también de la pérdida de CpG en el ADN del huésped. Los ET pueden considerarse "centros de metilación", donde, una vez dentro del ADN del huésped, el proceso de metilación provoca que los ET se extiendan al ADN adyacente. Esta propagación puede resultar posteriormente en la pérdida de CpG a lo largo del tiempo evolutivo. En épocas evolutivas más antiguas se observa una mayor pérdida de CpG en el ADN adyacente, en comparación con épocas evolutivas más recientes. Por lo tanto, la metilación del ADN puede conducir finalmente a una pérdida notable de sitios CpG en el ADN vecino. [ 59 ]

El tamaño del genoma y la proporción de CpG están correlacionados negativamente.

La metilación de CpG contribuye a la expansión del genoma y, por consiguiente, al agotamiento de CpG. Esta imagen muestra un genoma sin elementos transponibles (ET) y con sitios CpG no metilados; la inserción y transposición de un ET conducen a su metilación y silenciamiento. Mediante el proceso de metilación de CpG se observa una disminución de CpG. [ 60 ]

Generalmente existe una correlación inversa entre el tamaño del genoma y el número de islas CpG, ya que los genomas más grandes suelen tener un mayor número de elementos transponibles. La presión selectiva contra los TE se reduce sustancialmente si la expresión se suprime mediante metilación; además, los TE pueden actuar como "centros de metilación", facilitando la metilación del ADN flanqueante. Dado que la metilación reduce la presión selectiva sobre la secuencia de nucleótidos, la metilación a largo plazo de los sitios CpG aumenta la acumulación de transiciones espontáneas de citosina a timina, lo que resulta en una pérdida de sitios Cp. [ 59 ]

Elementos Alu como promotores de la pérdida de CpG

Los elementos Alu son conocidos como el tipo más abundante de elementos transponibles. Algunos estudios han utilizado elementos Alu para estudiar los factores responsables de la expansión del genoma. Los elementos Alu son ricos en CpG en una mayor cantidad de secuencia, a diferencia de los LINE y los ERV. Los Alu pueden funcionar como centros de metilación, y su inserción en un ADN huésped puede producir metilación del ADN y provocar una propagación hacia el área de ADN flanqueante. Esta propagación es la razón por la que hay una pérdida considerable de CpG y expansión del genoma. [ 59 ] Sin embargo, este es un resultado que se analiza a lo largo del tiempo porque los elementos Alu más antiguos muestran una mayor pérdida de CpG en sitios de ADN vecinos en comparación con los más jóvenes.

Véase también

Referencias

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